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¿Se puede utilizar la espectrometría UV-Vis para analizar la clorofila en el aceite de canola?

By 05.01.2025

Por Jennifer Empey-Kohl, especialista en aplicaciones de productos

El aceite de canola es un tipo de aceite vegetal derivado de las semillas de la planta de canola, que es un cultivar de colza. Es conocido por su sabor ligero, alto punto de humo y beneficios para la salud, incluyendo bajos niveles de grasas saturadas y altos niveles de ácidos grasos omega-3.22 El aceite de canola se utiliza comúnmente para cocinar, freír y como ingrediente en aderezos para ensaladas y margarina. También se utiliza en algunas aplicaciones industriales, como la producción de biodiésel.

La clorofila está presente en varios aceites vegetales, incluidos el de oliva y el de canola. En el aceite de oliva, la clorofila y sus derivados contribuyen al color verde, con picos de absorción a 420 nm, 456 nm, 484 nm y 670 nm, principalmente debido a los derivados de la feofitina. 17, 19

Por el contrario, el aceite de canola suele carecer de un espectro de absorción similar, lo que indica la eliminación de la clorofila durante el procesamiento. La presencia de clorofila en el aceite de canola puede reducir su calidad al dificultar la hidrogenación y promover la oxidación.5–7 Existen procesos de eliminación de clorofila para el aceite de canola, pero la clorofila restante debe medirse para el control de calidad. La American Oil Chemists Society (AOCS) tiene un método espectrofotométrico (Método Cc 13d – 55) para determinar el contenido de clorofila en los aceites refinados.

Analizamos muestras de estos aceites utilizando un espectrofotómetro UV-Visible para ver si la técnica cumplía con los estándares y compartimos los resultados.

Acerca de UV-Vis

La espectroscopia UV-Vis es una técnica utilizada para medir la cantidad de luz ultravioleta (UV) y visible (Vis) que absorbe una sustancia. En este método, se dirige un haz de luz UV o visible a una muestra, que puede ser un líquido o un sólido. La luz es absorbida por la muestra o la atraviesa. Midiendo la intensidad de la luz que puede atravesar la muestra y la intensidad de la luz sin la muestra presente, se puede determinar la absorbancia y se registra en función de la longitud de onda. Diferentes sustancias absorben la luz a diferentes longitudes de onda, creando un espectro de absorción único. Analizando este espectro, se puede identificar la sustancia y, mediante la ley de Beer, determinar su concentración en la muestra.

La espectroscopia de absorción UV-Visible es una técnica utilizada para medir la cantidad de luz ultravioleta (UV) y visible (Vis) que absorbe una sustancia. Se dirige un haz de luz UV o visible a una muestra. La luz atraviesa la muestra, que puede ser un líquido o un sólido. Al otro lado de la muestra, un detector mide la intensidad de la luz que ha atravesado. Se registra la cantidad de luz absorbida por la muestra a diferentes longitudes de onda. Las diferentes sustancias absorben la luz a diferentes longitudes de onda, creando un espectro de absorción único. Al analizar este espectro, se puede identificar la sustancia y determinar su concentración en la muestra.

Estudio y resultados del análisis del aceite de canola

Se midió una muestra de aceite de canola utilizando una cubeta de cuarzo de 5 cm para cuantificar el contenido de clorofila restante. El espectro no mostró características significativas en la región espectral roja, lo que indica una presencia mínima de clorofila. Se utilizó una versión modificada del método AOCS Cc 15d – 55, que utiliza la ley de Beer, para determinar el coeficiente de extinción (e) de la clorofila a (Chl a) en el aceite de canola, que resultó ser de 0,11 ± 0,01 ppm-1 cm-1 a 666 nm. Utilizando este coeficiente, se calculó que el contenido de clorofila era de 0,01 ppm, lo que indica una presencia insignificante de clorofila. Esta baja concentración es típica de los aceites de canola refinados comercialmente.

Puede leer más detalles sobre las muestras de aceite en nuestra nota de aplicación, Análisis del contenido de clorofila en productos alimenticios mediante mediciones de absorción UV-Visible. En ella se describen detalladamente la preparación, la instrumentación, los espectros de absorción, las tablas de máximos de longitud de onda, los resultados y las referencias.

De esos resultados concluimos que la espectroscopia de absorción UV-visible proporciona información valiosa sobre la calidad del producto, los métodos de procesamiento y el desarrollo, lo que ayuda a garantizar que los productos alimenticios que contienen clorofila, incluidos los aceites de canola, cumplan con los más altos estándares.

Recursos y referencias adicionales

Referencias utilizadas anteriormente y en la nota de aplicación:

  1. Björn, L.O.; Papageorgiou, G.C.; Blankship, R.E.; Govindjee, A Viewpoint: Why Chlorophyll a?, Photosynth. Res., 2009, 99, 85 – 98.
  2. Chen, M.; Blankenship, R.E., Expanding the Solar Spectrum Used by Photosynthesis, Trends Plant Sci., 2011, 16, 427 – 431.
  3. Miazek, K.; Ledakowicz, S., Chlorophyll Extraction from Leaves, Needles and Microalgae: A Kinetic Approach, Int. J. Agric. Biol., 2013, 6, 107-115.
  4. Daun, J.K, Análisis espectrofotométrico de pigmentos de clorofila en aceites de canola y colza, Lipid Technol., 2012, 24, 134-136.
  5. Endo, Y.; Thorsteinson, C.T.; Daun, J.K., Caracterización de los pigmentos de clorofila presentes en la semilla, la harina y el aceite de canola, JAOCS, 1992, 69, 564-568.
  6. Mag, T.K.; Canola Oil Processing in Canada, JAOCS, 1983, 60, 380 – 384.
  7. Daun, J.K.; Thorsteinson, C.T., Determinación de pigmentos de clorofila en aceites de canola crudos y desgomados mediante HPLC y espectrofotometría, JAOCS, 1989, 66, 1124-1128.
  8. Hsu, C.-Y.; Chao, P.-Y.; Hu, S.-P.; Yang, C.-M., The Antioxidant and Free Radical Scavenging Activities of Chlorophylls and Pheophytins, Food Sci. Nutr., 2013, 4, 1 – 8.
  9. Sociedad Americana de Químicos del Petróleo. Método oficial Cc 13d-55 Pigmentos de clorofila en aceites refinados y blanqueados. En: Métodos oficiales y prácticas recomendadas de la AOCS, 7.ª edición. Urbana, IL: AOCS.
  10. Porra, R.J.; Thompson, W.A.; Kriedemann, P.E., Determinación de coeficientes de extinción precisos y ecuaciones simultáneas para el ensayo de clorofilas a y b extraídas con cuatro disolventes diferentes: Verificación de la concentración de estándares de clorofila mediante espectroscopia de absorción atómica, Biochim. Biophys. Acta. Bioenerg. BBA-Bioenergetics, 1989, 975, 384 – 394.
  11. Hashimoto, T.; Chow, Y.-K.; Nakano, H., Hirao, K., Theoretical Study of the Q and B Bands of Free-Base, Magnesium, and Zinc Porphyrins, and their Derivatives, J. Phys. Chem. A, 1999, 103, 1894 – 1904.
  12. Croce, R.; Cinque, G.; Holzwarth, A.R.; Bassi, R., The Soret Absorption Properties of Carotenoids and Chlorophylls in Antenna Complexes of Higher Plants.
  13. Nigam, S.; Rutan, S., Principles and Applications of Solvatochromism, Appl. Spectrosc., 2001, 55, 362A – 370A.
  14. Khalyfa, A.; Kermasha; S., Alli, I., Extraction, Purification, and Characterization of Chlorophylls from Spinach Leaves, J. Agric. Food Chem., 1992, 40, 215 – 220.
  15. Domenici, V.; Ancora, D.; Cifelli, M.; Serani, A.; Veracini, C.A.; Zandomeneghi, M., Extraction of Pigment Information from Near-UV Vis Absorption Spectra of Extra Virgin Olive Oils, J. Agric. Food Chem., 2014, 62, 9317 – 9325.
  16. Scott, K.J., Detection and Measurement of Carotenoids by UV/VIS Spectrophotometry, Curr. Protoc. Food Anal. Chem., 1, 2001, F2 – 2.
  17. Alves, F.C.G.B.S.; Coqueiro, A.; Março, P.H.; Valderrama, P., Evaluation of Olive Oils from the Mediterranean Region by UV-Vis Spectroscopy and Independent Comonent Analysis, Food Chem., 2019, 273, 124 – 129.
  18. Gandul-Rojas, B.; Cepero, M.R.-L.; Minguez-Mosquera, M.I., Uso de la composición de pigmentos de clorofila y carotenoides para determinar la autenticidad del aceite de oliva virgen, JAOCS, 2000, 77, 853 – 858.
  19. Minguez-Mosquera, M.I.; Rejano-Navarro, L.; Gandul-Rojas, B.; Sánchez-Gómez, A.H.; Garrido-Fernandez, J., Color-Pigment Correlation in Virgin Olive Oil, JAOCS, 1991, 68, 332 – 336.
  20. Niewiadomski, H.; Bratkowska, I.; Mossakowska, E., Content of Chlorophylls and Carotenes in Rapeseed Oil, JAOCS, 1965, 42, 731 – 734.
  21. Sitio web de National Geographic Education, © 1996-2025 National Geographic Society, https://education.nationalgeographic.org/resource/chlorophyll/
  22. Universidad Estatal de Colorado, sitio web del Centro de Nutrición Kendall Reagan, © 2025 Facultad de Ciencias de la Salud y Humanas, https://www.chhs.colostate.edu/krnc/monthly-blog/cooking-with-fats-and-oils/

 

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