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A espectrometria UV-Vis pode ser usada para analisar a clorofila no óleo de canola?

By 05.08.2025

Por Jennifer Empey-Kohl, Especialista em Aplicações de Produtos 

O óleo de canola é um tipo de óleo vegetal derivado das sementes da planta de canola,  que é uma variedade melhorada da colza. É conhecido por seu sabor leve, alto ponto de fumaça e benefícios à saúde, incluindo baixos níveis de gordura saturada e altos níveis de ácidos graxos ômega-3.22 O óleo de canola é comumente usado para cozinhar, fritar e como ingrediente em molhos para salada e margarina. Ele também é usado em algumas aplicações industriais, como na produção de biodiesel.

A clorofila está presente em vários óleos vegetais, inclusive no óleo de oliva e de canola. No azeite de oliva, a clorofila e seus derivados contribuem para a cor verde, com picos de absorção em 420 nm, 456 nm, 484 nm e 670 nm, principalmente devido aos derivados da feofitina.17,19

Em contraste, o óleo de canola normalmente não apresenta um espectro de absorção semelhante, indicando a remoção da clorofila durante o processamento. A presença de clorofila no óleo de canola pode diminuir sua qualidade ao impedir a hidrogenação e promover a oxidação.5-7 Existem processos de remoção de clorofila para o óleo de canola, mas a clorofila restante deve ser medida para o controle de qualidade. A American Oil Chemists Society (AOCS) tem um método espectrofotométrico (Método Cc 13d – 55) para determinar o teor de clorofila em óleos refinados.

Analisamos amostras desses óleos usando um espectrofotômetro UV-Visível para verificar se a técnica atendia aos padrões e estamos compartilhando os resultados.

Sobre o UV-Vis

A espectroscopia UV-Vis é uma técnica usada para medir a quantidade de luz ultravioleta (UV) e visível (Vis) que uma substância absorve. Nesse método, um feixe de luz UV ou visível é direcionado a uma amostra, que pode ser um líquido ou um sólido. A luz é absorvida pela amostra ou passa por ela. Ao medir a intensidade da luz que consegue atravessar a amostra e a intensidade da luz sem a presença da amostra, a absorbância pode ser determinada e é registrada como uma função do comprimento de onda. Diferentes substâncias absorvem a luz em diferentes comprimentos de onda, criando um espectro de absorção exclusivo. Ao analisar esse espectro, você pode identificar a substância e, por meio da lei de Beer, determinar sua concentração na amostra.

A espectroscopia de absorção UV-Visível é uma técnica usada para medir a quantidade de luz ultravioleta (UV) e visível (Vis) que uma substância absorve. Um feixe de luz UV ou visível é direcionado a uma amostra. A luz passa pela amostra, que pode ser um líquido ou um sólido. Do outro lado da amostra, um detector mede a intensidade da luz que passou por ela. A quantidade de luz absorvida pela amostra em diferentes comprimentos de onda é registrada. Diferentes substâncias absorvem a luz em diferentes comprimentos de onda, criando um espectro de absorção exclusivo. Ao analisar esse espectro, você pode identificar a substância e determinar sua concentração na amostra.

Estudo e resultados da análise do óleo de canola

Uma amostra de óleo de canola foi medida usando uma cubeta de quartzo de 5 cm para quantificar o conteúdo restante de clorofila. O espectro não mostrou características significativas na região espectral vermelha, indicando presença mínima de clorofila. Uma versão modificada do método AOCS Cc 15d – 55, utilizando a lei de Beer, foi usada para determinar o coeficiente de extinção (e) da clorofila a (Chl a) no óleo de canola, que foi de 0,11 ± 0,01 ppm-1 cm-1 a 666 nm. Usando este coeficiente, o conteúdo de clorofila foi calculado como 0,01 ppm, indicando uma presença insignificante de clorofila. Essa baixa concentração é típica de óleos de canola refinados comercialmente.

Você pode ler mais detalhes sobre as amostras de óleo em nossa nota de aplicação, Analysis of chlorophyll content in food products through UV-Visible absorption measurements. Ela descreve em detalhes a preparação, a instrumentação, os espectros de absorção, as tabelas de máximos de comprimento de onda, os resultados e as referências.

Concluímos, a partir desses resultados, que a espectroscopia de absorção UV-Visível fornece informações valiosas sobre a qualidade do produto, os métodos de processamento e o desenvolvimento, ajudando a garantir que os produtos alimentícios que contêm clorofila, inclusive os óleos de canola, atendam aos mais altos padrões.

Recursos e referências adicionais

 

Referências usadas acima e na nota de aplicação:

  1. Björn, L.O.; Papageorgiou, G.C.; Blankship, R.E.; Govindjee, A Viewpoint: Why Chlorophyll a?, Photosynth. Res., 2009, 99, 85 – 98.
  2. Chen, M.; Blankenship, R.E., Expanding the Solar Spectrum Used by Photosynthesis, Trends Plant Sci., 2011, 16, 427 – 431.
  3. Miazek, K.; Ledakowicz, S., Chlorophyll Extraction from Leaves, Needles and Microalgae: A Kinetic Approach (Uma abordagem cinética), Int. J. Agric. Biol., 2013, 6, 107 – 115.
  4. Daun, J.K., Spectrophotometric Analysis of Chlorophyll Pigments in Canola and Rapeseed Oils (Análise espectrofotométrica de pigmentos de clorofila em óleos de canola e colza), Lipid Technol, 2012, 24, 134 – 136.
  5. Endo, Y.; Thorsteinson, C.T.; Daun, J.K., Characterization of Chlorophyll Pigments Present in Canola Seed, Meal and Oil, JAOCS, 1992, 69, 564 – 568.
  6. Mag, T.K.; Canola Oil Processing in Canada, JAOCS, 1983, 60, 380 – 384.
  7. Daun, J.K.; Thorsteinson, C.T., Determination of Chlorophyll Pigments in Crude and Degummed Canola Oils by HPLC and Spectrophotometry, JAOCS, 1989, 66, 1124 – 1128.
  8. Hsu, C.-Y.; Chao, P.-Y.; Hu, S.-P.; Yang, C.-M., The Antioxidant and Free Radical Scavenging Activities of Chlorophylls and Pheophytins, Food Sci. Nutr., 2013, 4, 1 – 8.
  9. Sociedade Americana de Químicos de Petróleo. Official Method Cc 13d-55 Chlorophyll Pigments in Refined and Bleached Oils (Método oficial Cc 13d-55: pigmentos de clorofila em óleos refinados e branqueados). In: Official Methods and Recommended Practices of the AOCS (Métodos oficiais e práticas recomendadas da AOCS), 7ª edição. Urbana, IL: AOCS.
  10. Porra, R.J.; Thompson, W.A.; Kriedemann, P.E., Determination of Accurate Extinction Coefficients and Simultaneous Equations for Assaying Chlorophylls a and b Extracted with Four Different Solvents: Verification of the Concentration of Chlorophyll Standards by Atomic Absorption Spectroscopy (Verificação da concentração de padrões de clorofila por espectroscopia de absorção atômica), Biochim. Biophys. Acta. Bioenerg. BBA-Bioenergetics, 1989, 975, 384 – 394.
  11. Hashimoto, T.; Chow, Y.-K.; Nakano, H., Hirao, K., Theoretical Study of the Q and B Bands of Free-Base, Magnesium, and Zinc Porphyrins, and their Derivatives, J. Phys. Chem. A, 1999, 103, 1894 – 1904.
  12. Croce, R.; Cinque, G.; Holzwarth, A.R.; Bassi, R., The Soret Absorption Properties of Carotenoids and Chlorophylls in Antenna Complexes of Higher Plants.
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  19. Minguez-Mosquera, M.I.; Rejano-Navarro, L.; Gandul-Rojas, B.; Sánchez-Gómez, A.H.; Garrido-Fernandez, J., Color-Pigment Correlation in Virgin Olive Oil, JAOCS, 1991, 68, 332 – 336.
  20. Niewiadomski, H.; Bratkowska, I.; Mossakowska, E., Content of Chlorophylls and Carotenes in Rapeseed Oil, JAOCS, 1965, 42, 731 – 734.
  21. Site da National Geographic Education, © 1996 – 2025 National Geographic Society, https://education.nationalgeographic.org/resource/chlorophyll/
  22. Site do Centro de Nutrição da Universidade Estadual do Colorado, Kendall Reagan, © 2025 College of Health and Human Sciences, https://www.chhs.colostate.edu/krnc/monthly-blog/cooking-with-fats-and-oils/

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