Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)
Invitrogen™

Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G)

Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G) ermöglicht eine schnelle und sanfte magnetische Isolierung von Exosomproteinen, wodurch das Zielprotein nur minimal belastetWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
10612D1 ml
Katalognummer 10612D
Preis (EUR)
175,33
Exklusiv online
197,00
Ersparnis 21,67 (11%)
Each
Menge:
1 ml
Preis (EUR)
175,33
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Each
Exosome Immunoprecipitation Reagent (Protein G) ermöglicht eine schnelle und sanfte magnetische Isolierung von Exosomproteinen, wodurch das Zielprotein nur minimal belastet wird und mehrere Proben auf demselben Gel verglichen werden können.

• Aufrechterhalten intakter Exosom-Proteinkomplexe
• Deutliche Verringerung des Hintergrunds – geringe unspezifische Bindung
• Kurze Protokolldauer – nur 30 Minuten
• Maximale Vergleichbarkeit – extreme Empfindlichkeit ermöglicht viele Proben auf demselben Gel

Dynabeads™, die mit Protein G gekoppelt sind, werden häufig für die Immunpräzipitation (IP), die Chromatin-Immunpräzipitation (ChIP) und die Proteinisolierung verwendet. Ihre magnetischen Eigenschaften machen Dynabeads™ zu einer überlegenen Alternative zu Sepharose oder Agarose-Suspension für die Immunpräzipitation, da die magnetische Trennungstechnologie schneller und sanfter als andere Methoden ist und die Zielproteine minimal belastet Dies ermöglicht eine Isolierung und Konzentration labiler Komposita, die andernfalls bei langen Inkubationszeiten von Proteasen geschädigt werden könnten. Native Proteinkonformationen und große Proteinkomplexe bleiben erhalten.

Die Exosom-Immunopräzipitation (Protein G) nutzt Dynabeads™ Protein G für die Antikörperbindung und anschließende Immunpräzipitation von Exosomproteinen. Antikörper werden der Dynabeads™ Suspension hinzugefügt, wo eine Bindung über die Fc-Region des Antikörpers erfolgt. Die Mischung wird dann in der Nähe eines Magneten platziert, wodurch die Beads zur Seite des Röhrchens wandern, sodass der Überstand leicht entfernt werden kann. Der beadgebundene Antikörper kann jetzt für die Immunpräzipitation von Exomproteinen verwendet werden. Die Immunpräzipitation ermöglicht eine 10- bis 50-fache Konzentration von Exosomproteinen vor der Proteinanalyse, wie z. B. Western Blotting.

Die durch die Exosom-Immunpräzipitation (Protein G) gebundene Ig-Menge hängt von der Konzentration von Ig in der Ausgangsprobe ab. Die Bindungskapazität beträgt ca. 240 µg humanes Ig pro ml Beads.

Zur Isolierung von Ig über Protein A empfehlen wir die Exosome Immunoprecipitation (Protein A).

Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke bei Menschen oder Tieren vorgesehen.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
EndprodukttypProteinkomplexe, Protein (nativ)
FormatBeads in Suspension
Hochdurchsatz-KompatibilitätNicht mit hohen Durchsatz kompatibel (manuell)
IsolierungstechnikMagnetische Beads
LigandentypProtein G
ProduktlinieDynabeads
Menge1 ml
ProbentypExosomen
VersandbedingungRaumtemperatur
ZielspeziesAlle Spezies
Durchmesser (metrisch)2,8 μm
ProdukttypExosom-Immunpräzipitationsreagenz
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei 2 bis 8 °C lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What is the best way to store my exosomes?

For the short-term, exosomes can be stored at 4 degrees C for up to 1 week. For the long-term, exosomes can be stored at -20 degrees C or -80 degrees C. When storing exosomes for the long term, it is important to consider whether they will need to be thawed more than once for the target application. If multiple applications (and thus multiple thaws) will be used for analysis, then we recommend aliquoting the exosome resuspensions into multiple tubes so that each tube will only undergo one freeze/thaw cycle. We have found that multiple freeze thaw cycles can cause damage to the exosomes and reduce their numbers.

There are two protocol options for exosome isolation from plasma samples, which one should I choose?

Unlike serum, plasma contains numerous clotting factors and some additional proteins that can make it difficult to work with. We‘ve provided two protocol options, one with proteinase K (PK) and one without, in order to ease this difficulty. The protocol using PK is most useful when the end goal is analysis of the RNA or protein cargo contained inside the exosomes. It can also be used to isolate exosomes for use in other downstream applications, but it is most useful for RNA and protein analysis. The protocol without PK also isolates good quality exosomes, just not quite as pure as the PK protocol. The “no PK” protocol is more useful for isolating exosomes that will be used for surface protein analysis or electron microscopy identification.

My Westerns do not seem to work after exosome isolation. Can you help?

There are several possible reasons why Western blotting analysis is challenging:

1. Not enough sample volume added. Exosomes can contain a fairly low amount of protein cargo, so for an initial experiment we recommend adding as much of the sample as possible.
2. Antibody concentration should be titrated. Also, they should ideally be used fresh and need to be stored properly.
3. Depending on the exosomal surface marker, certain gel conditions might be more optimal for the target antibody (e.g., reducing/nonreducing and denaturing/nondenaturing). We suggest checking with the manufacturer and exosome community about which Western blotting conditions are recommended for the specific marker you are targeting and the specific antibody you are using.
4. General Western techniques. Westerns can be tricky so we recommend the use of a positive control for initial testing to make sure the entire workflow is functioning as it should. Any protein or antibody can be used as long as they meet the conditions you need (e.g., denaturing vs. non-denaturing). In addition, when picking the protein, try to steer clear of those that are present at very high or very low concentrations in your sample to prevent overloading the blot or total absence of signal.

How much RNA can be recovered from the exosomes?

This can vary depending on the sample type, volume of sample, isolation method, and exosome content/concentration. Listed below are some examples:

1) When exosomes are isolated from 30 mL of HeLa cell culture medium using the Total Exosome Isolation Reagent, it is possible to recover approximately 8 ng exosomal RNA.
2) For exosomes recovered from 4 mL serum, approximately 2 ng exosomal RNA can be obtained.

In both cases, these amounts of RNA are sufficient for RNA library prep for Ion PGM or Ion Proton sequencing. For real-time PCR analysis, substantially smaller amounts of RNA are needed and much lower sample volumes can be used. For example, RNA recovered from 3 µL serum or 30 µL medium is enough for one qRT-PCR reaction.

I'm using the Total Exosome RNA & Protein Isolation Kit. When ethanol is added to buffer 2/3, the solution turns turbid. Does this affect the efficiency of RNA recovery?

No, the described effect does not have a negative impact on the RNA recovery.