Invitrogen™

ElectroMAX™ DH5α-E kompetente Zellen:

ElectroMAX DH5α-E kompetente Zelle sind vom DH5α-Stamm abgeleitet und für die Transformation durch Elektroporation geeignet. Sie können in Verfahren verwendetWeitere Informationen

Katalognummer	Menge
11319019	5 x 100 μl

Katalognummer 11319019

Preis (EUR)

379,65

Exklusiv online

417,00

Ersparnis 37,35 (9%)

Menge:

5 x 100 μl

Preis (EUR)

379,65

Exklusiv online

417,00

Ersparnis 37,35 (9%)

ElectroMAX DH5α-E kompetente Zelle sind vom DH5α-Stamm abgeleitet und für die Transformation durch Elektroporation geeignet. Sie können in Verfahren verwendet werden, die eine hohe Effizienz der Transformation erfordern, z. B. die Erstellung von cDNA-Bibliotheken oder Transformationen mit begrenzten Ausgangsmaterial. ElectroMAX DH5α-E-Zellen bieten folgende Eigenschaften:

• >1 x 10¹⁰ Transformanten/µg Effizienz mit Elektroporation
• Stark gesteigerte Plasmidausbeute und hohe Qualität dank endA1-Mutation
• Hocheffiziente Transformation mit 30 kb großen Plasmiden
• Blau-Weiß-Screening rekombinanter Klone dank lacZΔM15
• Gesicherte Insert-Stabilität durch recA1-Mutation

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.

Specifications

Bakterielle AntibiotikaresistenzNo

Blau-Weiß-ScreeningJa

Klonierung methylierter DNANein

Klonierung instabiler DNANicht geeignet zum Klonen instabiler DNA

Enthält F'-EpisomF'-Episom fehlt

Hochdurchsatz-KompatibilitätNicht mit hohen Durchsatz kompatibel (manuell)

Verbessert die PlasmidqualitätJa

PlasmidKann für Plasmide >20 kb verwendet werden

Vorbereitung von nicht methylierter DNANicht geeignet für die Vorbereitung von nicht methylierter DNA

ProduktlinieDH5a, ElectroMAX

ProdukttypKompetente Zelle

Menge5 x 100 μl

Reduziert RekombinationJa

VersandbedingungTrockeneis

T1-Phage – resistent (TonA)Nein

TransformationsleistungsgradHoher Wirkungsgrad (> 10^9 cfu⁄µg)

FormatRörchen

SpeziesE. coli

Unit SizeEach

Inhalt und Lagerung

Enthält:
• ElectroMAX DH5α-E kompetente Zellen: 5 Fläschchen, je 100 µl
• pUC19 DNA (10 pg/µl): 1 Fläschchen, 50 µl
• S.O.C.-Medium: 2 Flaschen, je 6 ml

Kompetente Zellen bei -80 °C lagern. pUC19-DNA bei -20 °C lagern. S.O.C.-Medium bei 4 °C oder Raumtemperatur lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

How do you recommend that I prepare my DNA for successful electroporation of E. coli?

For best results, DNA used in electroporation must have a very low ionic strength and a high resistance. A high-salt DNA sample may be purified by either ethanol precipitation or dialysis.

The following suggested protocols are for ligation reactions of 20ul. The volumes may be adjusted to suit the amount being prepared.

Purifying DNA by Precipitation: Add 5 to 10 ug of tRNA to a 20ul ligation reaction. Adjust the solution to 2.5 M in ammonium acetate using a 7.5 M ammonium acetate stock solution. Mix well. Add two volumes of 100 % ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at 4C. Remove the supernatant with a micropipet. Wash the pellet with 60ul of 70% ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at room temperature. Remove the supernatant with a micropipet. Air dry the pellet. Resuspend the DNA in 0.5X TE buffer [5 mM Tris-HCl, 0.5 mM EDTA (pH 7.5)] to a concentration of 10 ng/ul of DNA. Use 1 ul per transformation of 20 ul of cell suspension.

Purifying DNA by Microdialysis: Float a Millipore filter, type VS 0.025 um, on a pool of 0.5X TE buffer (or 10% glycerol) in a small plastic container. Place 20ul of the DNA solution as a drop on top of the filter. Incubate at room temperature for several hours. Withdraw the DNA drop from the filter and place it in a polypropylene microcentrifuge tube. Use 1ul of this DNA for each electrotransformation reaction.

When should DMSO, formamide, glycerol and other cosolvents be used in PCR?

Cosolvents may be used when there is a failure of amplification, either because the template contains stable hairpin-loops or the region of amplification is GC-rich. Keep in mind that all of these cosolvents have the effect of lowering enzyme activity, which will decrease amplification yield. For more information see P Landre et al (1995). The use of co-solvents to enhance amplification by the polymerase chain reaction. In: PCR Strategies, edited by MA Innis, DH Gelfand, JJ Sninsky. Academic Press, San Diego, CA, pp. 3-16.

Additionally, when amplifying very long PCR fragments (greater than 5 kb) the use of cosolvents is often recommended to help compensate for the increased melting temperature of these fragments.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our PCR and cDNA Synthesis Support Center.