La ADN polimerasa Taq es una enzima termoestable que sintetiza el ADN a partir de plantillas monocatenarias en presencia deMás información
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18038026
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La ADN polimerasa Taq es una enzima termoestable que sintetiza el ADN a partir de plantillas monocatenarias en presencia de dNTP y un primer. La solución del detergente W-1 al 1 % que se incluye puede mejorar la termoestabilidad de la enzima cuando se añade a una concentración final del 0,05 % (v/v).
La ADN polimerasa Taq ADN consiste en un solo polipéptido con un peso molecular de 94 kDa. Tiene una actividad de ADN polimerasa de 5´→3´ y una actividad de exonucleasa de 5´→3´ (ver figura). Con la ADN polimerasa Taq, obtendrá lo siguiente:
Posibilidad de seleccionar la enzima nativa o recombinante
Amplificación de productos de PCR con un tamaño máximo de 5 kb
Una enzima que está autorizada y calificada para aplicaciones de PCR
Amplificación de ADN de plantillas genómicas, víricas y plasmídicas complejas, RT-PCR, ADNss de secuenciación y secuenciación de ciclos
Fuente La enzima nativa se purifica a partir de Thermus aquaticus YT1. Definición de la unidad Una unidad de ADN de polimerasa Taq es la cantidad de enzima necesaria para incorporar 10 nmol de desoxirribonucleótido en ADN en 30 min a 74 °C.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Actividad exonucleasa5 in - 3 in
Fidelidad (frente a Taq)1 X
Inicio en calienteNo
Sobrante3'-A
PolimerasaADN polimerasa Taq
Cantidad500 unidad
Formato de reacciónComponentes separados
Condiciones de envíoAprobado para su envío en hielo húmedo o seco
Tamaño (producto final)5 kb o menos
Para utilizar con (aplicación)Standard PCR
GC-Rich PCR PerformanceBajo
Velocidad de reacciónEstándar
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Contiene: ADN polimerasa Taq (100 µl) Tampones de PCR 10X sin magnesio (2,5 ml) 50 mM cloruro de magnesio (1 ml) 1 % W-1 (1 ml)
Almacenar a −20 °C en un congelador sin escarcha.
Preguntas frecuentes
My oligonucleotide does not appear to be the right length when I checked by gel electrophoresis. Why is this?
Oligos should be run on a polyacrylamide gel containing 7 M urea and loaded with a 50% formamide solution to avoid compressions and secondary structures. Oligos of the same length and different compositions can electrophorese differently. dC's migrate fastest, followed by dA's, dT's, and then dG's. Oligos containing N's tend to run as a blurry band and generally have a problem with secondary structure.
The primers I am using worked for PCR initially, but over time, have stopped working. What happened?
Primers should be aliquoted for single use before PCR set-up. Heat just the aliquoted primers to 94 degrees for 1 min. Quick chill the primer on ice before adding to the PCR reaction. Some primers may anneal to themselves or curl up on themselves.
I don't see a pellet in my oligo tube order. Should I ask for a replacement?
The drying method dries the primer in a thin layer along the sidewalls of the tube instead of the bottom, therefore a pellet is not always visible and should still be ready to use.
There is a ball-shaped pellet at the bottom of my oligo tube. What is this and can I still use my oligo?
If the oligo was overheated, it will appear as a ball-shaped pellet attached to the bottom of the tube. This should not affect the quality of the oligo, and the oligo should be readily soluble in water.
There is a green color in my lyophilized oligo. Can I still use it?
If an oligo appears green in color, this is most likely due to ink falling into the tube. The oligo should still be fully functional. The color can be removed by doing an ethanol precipitation.