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Silencer™ Select GAPDH Positive Control siRNA

L’ARNsi de contrôle positif Ambion™ Silencer™ SelectGAPDH est largement validé et constitue un contrôle idéal pour de nombreux aspects d’uneAfficher plus
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RéférenceQuantité
43908495 nmol
439085040 nmol
Référence 4390849
Prix (EUR)
316,80
Offre spéciale
Offre exceptionnelle en ligne
termine: 08-May-2026
396,00
Économisez 79,20 (20%)
Each
Quantité:
5 nmol
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L’ARNsi de contrôle positif Ambion™ Silencer™ SelectGAPDH est largement validé et constitue un contrôle idéal pour de nombreux aspects d’une expérience utilisant les ARNsi. 5 nmol sont fournis.

• ARNsi de qualité supérieure, hautement purifié et prêt à l’emploi
• Testé fonctionnellement dans plusieurs lignées cellulaires courantes
• Incluez les modifications Silencer™ Select pour une spécificité accrue
• À utiliser dans les cellules humaines, de souris et de rat

Que sont les ARNsi Silencer™ Select ?
Les ARNsi Silencer™ Select intègrent les toutes dernières améliorations en termes de conception des ARNsi, d’algorithmes de prévision des effets hors cible et de modifications chimiques, afin de produire des ARNsi d’une efficacité, d’une puissance et d’une spécificité inégalées. Résultats : moins d’expériences ratées en raison d’inhibition médiocre, et données phénotypiques plus propres et plus constantes.

ARNsi de contrôle positif GAPDH Silencer ™Select :
Le ARNsi de contrôle positif GAPDH Silencer™ Select est largement validé et est un “test” d’ARNsi idéal pour ceux qui commencent tout juste des expériences de ARNsi, car il est validé pour fonctionner dans plusieurs lignées cellulaires. Parce qu’il cible l’ARNm GAPDH (un contrôle interne courant), de nombreux tests sont disponibles pour mesurer ses effets, notamment la RT-PCR en temps réel ainsi que le kit de dosage de GAPDH Ambion™ KDalert™.

Contrôle qualité :
les ARNsi Silencer™ Select sont fabriqués sur un site de pointe selon les normes de qualité les plus élevées. Les procédures rigoureuses de contrôle qualité comprennent l’analyse par spectrométrie de masse MALDI-TOF et la HPLC analytique pour surveiller la pureté. Chaque ARNsi est également évalué par électrophorèse sur gel pour confirmer l’hybridation des brins.

Produit accessoire : agent de transfection siPORT™ NeoFX™ (n° cat. AM4510 et AM4511)
L’agent de transfection siPORT™ NeoFX™ est un agent de transfection polyvalent à base de lipides pour la transfection efficace de ARNsi dans des cellules de culture. Le protocole peut être adapté à un large éventail de cellules et de conceptions expérimentales, y compris des applications à haut débit. Les contrôles de siARN Silencer™ Select ont des modifications chimiques spécifiques ; ils sont conçus pour être utilisés avec les siARN Silencer™ Select. Si vous utilisez d’autres produits ARNsi, comme les ARNsi BLOCK-iT™, les ARNsi Ambion™ Silencer™ ou les ARNsi STEALTH RNAi™, nous vous recommandons d’utiliser des ARNsi de contrôle conçus pour utilisation avec ces ARNsi pour des résultats expérimentaux plus fiables.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
À utiliser avec (application)ARNi, Transfection
Marqueur ou colorantNon conjugué(e)
Gamme de produitsSilencer, Silencer Select, Ambion
Type de produitARNsi
PuretéHPLC
Quantité5 nmol
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
Type de contrôleContrôle positif
RNAi TypesiARN
TargetGAPDH
Unit SizeEach
Contenu et stockage
L’ARNsi est fourni sous forme sèche dans un tube unique, avec de l’eau exempte de nucléase pour la remise en suspension, et doit être conservé à -20°C.

Foire aux questions (FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

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