Alexa Fluor™ 532 C5 Maleimide
Alexa Fluor&trade; 532 C<sub>5</sub> Maleimide
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 532 C5 Maleimide

Alexa Fluor™ 532 ein leuchtend gelber Fluoreszenzfarbstoff mit einer Anregung, die sich ideal für die frequenzverdoppelte Nd:YAG-Laserlinie eignet. Der FarbstoffWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
A102551 mg
Katalognummer A10255
Preis (EUR)
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Alexa Fluor™ 532 ein leuchtend gelber Fluoreszenzfarbstoff mit einer Anregung, die sich ideal für die frequenzverdoppelte Nd:YAG-Laserlinie eignet. Der Farbstoff Alexa Fluor™ 532, der für eine stabile Signalerzeugung in der Bildgebung und Durchflusszytometrie verwendet wird, ist wasserlöslich und pH-unempfindlich im Bereich von pH 4 bis 10. Zusätzlich zu reaktiven Farbstoffformulierungen bieten wir Alexa Fluor™ 532-Farbstoff an, der mit einer Vielzahl von Antikörpern, Peptiden, Proteinen, Tracern und Amplifikationssubstraten konjugiert und für die Zellmarkierung und den Nachweis optimiert ist (mehr erfahren).

Das Alexa Fluor™ 532-Maleimidderivat ist das beliebteste Hilfsmittel zur Konjugation dieses Farbstoffs mit einem Protein oder Antikörper. Die daraus resultierenden Alexa Fluor™ 532 Konjugate weisen eine hellere Fluoreszenz und eine größere Photostabilität auf als die Konjugate anderer spektral ähnlicher Fluorophore.

Ausführliche Informationen zu diesem AlexaFluor™ Maleimid:

Fluorophormarkierung: Alexa Fluor™ 532-Farbstoff
Reaktive Gruppe: Maleimid
Reaktivität: Thiolgruppen auf Proteinen und Liganden, Oligonukleotid-Thiophosphate
Ex/Em des Konjugats: 528/552 nm
Extinktionskoeffizient: 78.000 cm-1M-1
Molekulargewicht: 812,88

Typische Konjugationsreaktion
Das Protein sollte bei einer Konzentration von 50 bis -100 µM in einem geeigneten Puffer (10 bis 100 mM Phosphat, Tris oder HEPES) bei pH-Wert 7,0 bis 7,5 aufgelöst werden. In diesem pH-Bereich sind die Thiolgruppen des Proteins so nukleophil, dass sie trotz zahlreich vorhandener Proteinamingruppen, die protoniert und relativ unreaktiv sind, fast ausschließlich mit dem Reagenz reagieren. Wir empfehlen, an diesem Punkt jegliche Disulfidbrücken mit einem Reduktionsmittel 10-fachen molaren Überschusses, wie DTT oder TCEP, zu reduzieren. Überschüssiges DTT muss durch Dialyse entfernt werden. Nachfolgende Thiol-Modifikationen sollten unter sauerstofffreien Bedingungen durchgeführt werden, um eine Neubildung der Disulfid-Verbindungen zu verhindern. Diese Vorsichtsmaßnahmen sind bei der Verwendung von TCEP vor der Maleimid-Konjugation nicht erforderlich.

Das Alexa Fluor™-Maleimid wird in der Regel unmittelbar vor der Verwendung in hochwertigem, wasserfreiem Dimethylsulfoxid (DMSO) mit einer Konzentration von 1 bis 10 mM aufgelöst, und Stammlösungen sollten möglichst vor Licht geschützt werden. Im Allgemeinen wird diese Stammlösung der Proteinlösung tropfenweise unter Rühren hinzugefügt, um rund 10 bis 20 Mol Reagenz pro Mol Protein zu erzielen. Die Reaktion kann bei Raumtemperatur für 2 Stunden oder bei 4 °C über Nacht und vor Licht geschützt erfolgen. Alle unreagierten Thiol-reaktiven Reagenzien können durch Hinzufügen von überschüssigem Glutathion, Mercaptoethanol oder von anderem löslichen niedermolekularen Thiol verbraucht werden.

Konjugataufreinigung
Markierte Antikörper werden normalerweise vom freien Alexa Fluor™-Farbstoff in einer Gel-Filtrationssäule, z. B. Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o.ä., getrennt. Wählen Sie bei sehr großen bzw. kleinen Proteinen ein Gelfiltrationsmedium mit geeigneter molekularer Ausschlussgrenze (MWCO), oder entscheiden Sie sich für eine Reinigung per Dialyse. Wir bieten verschiedene Aufreinigungskits, die für unterschiedliche Mengen von Antikörperkonjugat optimiert sind:
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 0,5 – 1 mg (A33086)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 20 – 50 µg (A33087)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 50 – 100 µg (A33088)

Weitere Informationen zur Protein- und Antikörpermarkierung
Wir bieten eine breite Auswahl an Molecular Probes™ Antikörper- und Proteinmarkierungskits, passend zu Ihrem Ausgangsmaterial und Ihrer Experimentanordnung. Weitere Optionen finden Sie unter Antikörper-Markierungskits, oder nutzen Sie unser Auswahlwerkzeug für die Markierungschemie. Weitere Informationen zu unseren Markierungskits finden Sie unter Protein- und Nukleinsäuremarkierungskits—Kapitel 1.2 im Molecular Probes™ Handbuch.


’’’Wenn Sie in unserem Online-Katalog das Gesuchte nicht finden, erstellen wir gern für Sie ein Antikörper- oder Proteinkonjugat nach Ihren individuellen Vorgaben. Unser individualisierter Konjugationsservice arbeitet effizient und absolut vertraulich, und wir verbürgen uns für die Qualität unserer Arbeit. Wir sind ISO 9001:2000 zertifiziert.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Chemische ReaktivitätThiol
Emission552 nm
Anregung528 nm
Marker oder FarbstoffAlexa Fluor™ 532
ProdukttypFarbstoff
Menge1 mg
Reaktiver TeilMaleimid
VersandbedingungRaumtemperatur
MarkertypAlexa Fluor Farbstoffe
ProduktlinieAlexa Fluor
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.

Zitierungen und Referenzen (7)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Dependence of fluorescence intensity on the spectral overlap between fluorophores and plasmon resonant single silver nanoparticles.
Authors:Chen Y, Munechika K, Ginger DS
Journal:Nano Lett
PubMed ID:17315937
'We investigate the fluorescence from dyes coupled to individual DNA-functionalized metal nanoparticles. We use single-particle darkfield scattering and fluorescence microscopy to correlate the fluorescence intensity of the dyes with the localized surface plasmon resonance (LSPR) spectra of the individual metal nanoparticles to which they are attached. For each of three ... More
Structural plasticity of an acid-activated chaperone allows promiscuous substrate binding.
Authors:Tapley TL, Körner JL, Barge MT, Hupfeld J, Schauerte JA, Gafni A, Jakob U, Bardwell JC,
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:19321422
'HdeA has been shown to prevent acid-induced aggregation of proteins. With a mass of only 9.7 kDa, HdeA is one of the smallest chaperones known. Unlike other molecular chaperones, which are typically complex, multimeric ATP-dependent machines, HdeA is known to undergo an acid-induced dimer to monomer transition and functions at ... More
Reversible transition between the surface trimer and membrane-inserted monomer of annexin 12.
Authors:Ladokhin AS, Haigler HT
Journal:Biochemistry
PubMed ID:15736950
'Under mildly acidic conditions, annexin 12 (ANX) inserts into lipid membranes to form a transbilayer pore [Langen, R., et al. (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 14060]. In this study, we have addressed the question of the oligomeric state of ANX in this transbilayer conformation by means of Forster-type ... More
Chaperoning of insertion of membrane proteins into lipid bilayers by hemifluorinated surfactants: application to diphtheria toxin.
Authors:Palchevskyy SS, Posokhov YO, Olivier B, Popot JL, Pucci B, Ladokhin AS
Journal:Biochemistry
PubMed ID:16489756
'Hemifluorinated compounds, such as HF-TAC, make up a novel class of nondetergent surfactants designed to keep membrane proteins soluble under nondissociating conditions [Breyton, C., et al. (2004) FEBS Lett. 564, 312]. Because fluorinated and hydrogenated chains do not mix well, supramicellar concentrations of these surfactants can coexist with intact lipid ... More
The conserved core domains of annexins A1, A2, A5, and B12 can be divided into two groups with different Ca2+-dependent membrane-binding properties.
Authors:Patel DR, Isas JM, Ladokhin AS, Jao CC, Kim YE, Kirsch T, Langen R, Haigler HT
Journal:Biochemistry
PubMed ID:15723527
'The hallmark of the annexin super family of proteins is Ca(2+)-dependent binding to phospholipid bilayers, a property that resides in the conserved core domain of these proteins. Despite the structural similarity between the core domains, studies reported herein showed that annexins A1, A2, A5, and B12 could be divided into ... More