Competent Cell Sampler
Invitrogen™

Competent Cell Sampler

Das Probenahmekit für kompetente Zellen enthält ein Paar von vier unterschiedlichen Strängen chemisch kompetenter E. coli-Zellen in bequemen One Shot-Formaten.Weitere Informationen
Have Questions?
KatalognummerMenge
A104698 x 50 μl
Katalognummer A10469
Preis (EUR)
85,00
Each
Menge:
8 x 50 μl
Preis (EUR)
85,00
Each
Das Probenahmekit für kompetente Zellen enthält ein Paar von vier unterschiedlichen Strängen chemisch kompetenter E. coli-Zellen in bequemen One Shot-Formaten. Jedes Einwegfläschchen mit Zellen ist gebrauchsfertig und erfordert keine weiteren Pipettierschritte oder Auftauzyklen, die die Transformationseffizienz verringern würden. Verwenden Sie dieses Kit zur Evaluierung, welche Stränge sich am besten für die unterschiedlichen, in Ihrem Labor verwendeten DNA-Typen eignen.

One Shot Mach1 T1-Phagen-resistente, chemisch kompetente E. coli-Zellen haben eine schnellere Verdopplungszeit als typische E. coli-Zellen. Das führt dazu, dass Mach1-Kolonien innerhalb von 8 Stunden nach Plattierung Ihrer Transformation auf Ampicillin-Selektionsplatten deutlich sichtbar sind. Aus einer Übernachtkolonie können nach nur vier Stunden Wachstum Minipreps durchgeführt werden.

Mach1-kompetente E. coli-Zellen sind erhältlich im One Shot-Format (Best.- Nr. C862003) und unsere MultiShot StripWell- und FlexPlate-Formate für Anwendungen mit mittlerem und hohem Durchsatz (C869601 und C8681201).

Die One Shot OmniMAX2 T1-Phagen-resistenten, chemisch kompetenten E. coli-Zellen eignen sich ideal für alle Klonierungsanwendungen, einschließlich der Gateway-Technologie. Sie bieten die höchste Transformationseffizienz in einem chemisch kompetenten One Shot-Format mit 5 x 109 Transformanten mit 1 µg Kontroll-DNA. Die Kopplung der hohen Transformationseffizienz an die Elimination der mcrA-, mrr-, mcrBC- und hsdRMS-Restriktionssysteme ermöglicht die Konstruktion von repräsentativeren Genombibliotheken in einem praktischen chemisch kompetenten Format.

OmniMAX 2-Zellen werden in unserem One Shot-Format (C854003) und in unserem MultiShot FlexPlate Format für Anwendung mit mittlerem bis hohem Durchsatz (C8581201) angeboten.

Die chemisch kompetenten OneShot Stbl3-Zellen reduzieren die Häufigkeit unerwünschter homologer Rekombination und eignen sich ideal für die Klonierung instabiler DNA wie lentiviraler DNA, die lange terminale Wiederholungen (long terminal repeats, LTRs) enthält. Die DNA-Ausbeute aus Stbl3-Zellen ist oft um > als das Zehnfache höher als bei herkömmlichen Klonierungsstämmen.

Die chemisch kompetenten Stbl3-Zellen sind im One Shot-Format (C737303) und im MultiShot StripWell- und FlexPlate-Format (C739601 und C7381201) für Anwendungen mit mittlerem bis hohem Durchsatz verfügbar.

One Shot TOP10-Zellen eignen sich ideal für einen weiten Bereich von Klonverfahren. Sie sind in vielen unserer Klonierungs- und Expressionskits, wie den TOPO- und Gateway-Klonierungskits, enthalten und ergänzen unsere GeneArt High-Q Strings und Strings DNA-Fragmente und -Bibliotheken. One Shot TOP10 kompetente E. coli liefern einen Transformationswirkungsgrad von 1 x 109 KbE/µg superspiralisierter DNA und sind ideal für die hochgradig effiziente Klonierung sowie die Plasmid-Propagation geeignet. Sie ermöglichen eine stabile Replikation einer hohen Anzahl an Plasmid-Kopien.

Die chemisch kompetenten TOP10-Zellen sind im One Shot-Format (C404003) und im MultiShot StripWell- und FlexPlate-Format (C409601 und C4081201) für Anwendungen mit mittlerem bis hohem Durchsatz verfügbar.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Bakterien- oder HefenstammMach1, OmniMAX2, TOP10, Stbl3
Konzentration1 x 10^9 Zellen/ml
Effizienz> 1 x 10^9
ProduktlinieOne Shot
ProdukttypProben-Kit für kompetente Zellen
Menge8 x 50 μl
VersandbedingungTrockeneis
FormatRörchen
SpeziesE. coli
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Der Probenehmer für kompetente Zellen enthält zwei Transformationen von je vier Stämmen chemisch kompetenter Zellen im One-Shot™ Format. Bei -80°C lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

How do you recommend that I prepare my DNA for successful electroporation of E. coli?

For best results, DNA used in electroporation must have a very low ionic strength and a high resistance. A high-salt DNA sample may be purified by either ethanol precipitation or dialysis.

The following suggested protocols are for ligation reactions of 20ul. The volumes may be adjusted to suit the amount being prepared.

Purifying DNA by Precipitation: Add 5 to 10 ug of tRNA to a 20ul ligation reaction. Adjust the solution to 2.5 M in ammonium acetate using a 7.5 M ammonium acetate stock solution. Mix well. Add two volumes of 100 % ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at 4C. Remove the supernatant with a micropipet. Wash the pellet with 60ul of 70% ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at room temperature. Remove the supernatant with a micropipet. Air dry the pellet. Resuspend the DNA in 0.5X TE buffer [5 mM Tris-HCl, 0.5 mM EDTA (pH 7.5)] to a concentration of 10 ng/ul of DNA. Use 1 ul per transformation of 20 ul of cell suspension.

Purifying DNA by Microdialysis: Float a Millipore filter, type VS 0.025 um, on a pool of 0.5X TE buffer (or 10% glycerol) in a small plastic container. Place 20ul of the DNA solution as a drop on top of the filter. Incubate at room temperature for several hours. Withdraw the DNA drop from the filter and place it in a polypropylene microcentrifuge tube. Use 1ul of this DNA for each electrotransformation reaction.

When should DMSO, formamide, glycerol and other cosolvents be used in PCR?

Cosolvents may be used when there is a failure of amplification, either because the template contains stable hairpin-loops or the region of amplification is GC-rich. Keep in mind that all of these cosolvents have the effect of lowering enzyme activity, which will decrease amplification yield. For more information see P Landre et al (1995). The use of co-solvents to enhance amplification by the polymerase chain reaction. In: PCR Strategies, edited by MA Innis, DH Gelfand, JJ Sninsky. Academic Press, San Diego, CA, pp. 3-16.

Additionally, when amplifying very long PCR fragments (greater than 5 kb) the use of cosolvents is often recommended to help compensate for the increased melting temperature of these fragments.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our PCR and cDNA Synthesis Support Center.