No-Stain™ Proteinmarkierungsreagenz
No-Stain™ Proteinmarkierungsreagenz
Invitrogen™

No-Stain™ Proteinmarkierungsreagenz

Das Invitrogen No-Stain Proteinmarkierungsreagenz bietet eine flexible, genaue, schnelle und zuverlässige Methode zur Visualisierung und Normalisierung von Proteinen in einemWeitere Informationen
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KatalognummerAnzahl ReaktionenGel Compatibility
A44449Ein Standard-Kit kann 40 Mini-Gele oder 40 Membranen in Mini-Gel-Größe markierenAlle Geltypen und Gel-Chemien
A44717Ein Standard-Kit kann 10 Mini-Gele oder 10 Membranen in Mini-Gel-Größe markierenMini-Fertigproteingele, Midi-Fertigproteingele
Katalognummer A44449
Preis (EUR)
168,65
Exklusiv online
187,00
Ersparnis 18,35 (10%)
Each
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Anzahl Reaktionen:
Ein Standard-Kit kann 40 Mini-Gele oder 40 Membranen in Mini-Gel-Größe markieren
Gel Compatibility:
Alle Geltypen und Gel-Chemien
Preis (EUR)
168,65
Exklusiv online
187,00
Ersparnis 18,35 (10%)
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Das Invitrogen No-Stain Proteinmarkierungsreagenz bietet eine flexible, genaue, schnelle und zuverlässige Methode zur Visualisierung und Normalisierung von Proteinen in einem Gel oder auf einer Membran (nach dem Transfer). Es bildet innerhalb von 10 Minuten kovalente Bindungen zu Proteinen in Gelen oder auf Membranen, benötigt keine Entfärbungsschritte und kann mit jedem gängigen Bildgeber sofort visualisiert werden. Das No-Stain Reagenz erfordert keine speziellen Gele oder andere Reagenzien und ist mit Gelfärbungen und Western-Abläufen kompatibel.

Sofortige Visualisierung von Proteinen in Gelen
Coomassie und anderen Gelfärbungs- und Entfärbungsschritte können sehr zeitaufwändig und umständlich sein. Das No-Stain Proteinmarkierungsreagenz bildet innerhalb von 10 Minuten kovalente Bindungen mit den Lysin-Aminosäure-Seitenketten an allen Proteinen in einem Gel. Da Lysin eine der am häufigsten vorkommenden Aminosäuren ist, ermöglicht das Färbereagenz den Nachweis aller Proteine in einem Gel oder auf einer Membran, und die starke Signalabgabe des kovalent gebundenen Reagenz sorgt für eine Empfindlichkeit auf Nanogrammebene.

Alternative zu herkömmlichen Gel-Färbereagenzien—Ermöglicht eine genauere Normalisierung über einen breiten Bereich von Proteinlysatkonzentrationen (1–80 µg)
Empflindlich—Niedrige Nachweisgrenze von 20 ng pro Band
Spezifisch—Bildet Verbindungen nur mit den Lysin-seitigen Proteinketten. Ungebundenes Reagenz emittiert nicht und ermöglicht so ein hervorragendes Signal-Rausch-Verhältnis
Flexibel — Kein Gelaustausch für den Komfort von ungefärbtem Material erforderlich. Das No-Stain Reagenz ermöglicht die bequeme farbfreie Bearbeitung aller Geltypen (vorgefertigte oder selbst vorbereitete Gele)

Goldstandard bei quantitativem Western Blotting
Proteinnormalisierung ist ein entscheidender Schritt für ein zuverlässiges und reproduzierbares quantitatives Western Blotting. Die Gesamtproteinnormalisierung gilt als Goldstandard für das quantitative Western Blotting. Viele führende Zeitschriften haben Richtlinien für das Einreichen der Western-Blotting-Forschung entwickelt, von denen einige nachfolgend aufgeführt sind.

• “Für quantitative Vergleiche sollten geeignete Reagenzien, Kontrollen und Bildgebungsverfahren mit linearen Signalbereichen verwendet werden” – Natur
• “Aufzeichnung der Datenerfassung, Linearität der Signalintensität mit der Antigenbeladung und Normalisierung der Proteinbeladung” – Journal of Biological Chemistry
• “Normalisierung der Signalintensität auf die Gesamtproteinladung (bewertet durch Einfärbung der Membranen für Gesamtprotein), wann immer möglich” – Journal of Biological Chemistry
• “Haushaltsproteine sollten zur Normalisierung nicht verwendet werden, wenn nicht belegt ist, dass die Manipulationen die Expression nicht beeinflussen” – Journal of Biological Chemistry

Eine genaue Belastungskontrolle sollte unter allen experimentellen Bedingungen ein lineares Verhältnis zwischen Signalintensität und Probenlast aufweisen. Die Signalintensität, die durch die Markierung von Gesamtproteinen auf einer Membran mit No-Stain Reagenz erzielt wird, gewährleistet unter allen experimentellen Bedingungen ein lineares Verhältnis zwischen Signalintensität und Probenlast (siehe Abbildung unten). Daher ermöglicht die Verwendung von No-Stain Reagenz im quantitativen Western Blotting die Verwendung von Gesamtprotein als eine ideale Beladungskontrolle.

Anwenderfreundliches Protokoll: Markierung von Proteinen auf Nitrozellulose- oder PVDF-Membranen in nur 10 Minuten
Schnelle Visualisierung: mit unterschiedlichsten Bildgebungsgeräten auf der Basis von UV- oder Fluoreszenzlichtquellen
Präzise Gesamtproteinnormalisierung: Der breite lineare Proteinnachweisbereich von 1 bis 80 μg ermöglicht den Nachweis von No-Stain-Signalen sowie von Signalen des Zielproteins für eine präzise Gesamtproteinnormalisierung.
Hohe Empfindlichkeit und Stabilität: Empfindlichkeit im Nanogrammbereich und hohe, mit nachgelagerten Immundetektionsschritten kompatible Signalstabilität
Erstklassige Analyse: Haushaltsproteine sind anfällig für Signalsättigung und sonstige biologische Schwankungen, die bei Verwendung des No-Stain-Reagenz bei der Gesamtproteinnormalisierung nicht entstehen.

Weitere Informationen zum No-Stain Proteinmarkierungsreagenz ›

Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
BeschreibungDas No-Stain Proteinmarkierungsreagenz bildet kovalente Bindungen mit den Lysin-Aminosäure-Seitenketten an allen Proteinen
Zur Verwendung mit (Anwendung)Kompatibel mit allen nachfolgenden Immundetektionsschritten (Blockierung, Antikörperbindung, chemilumineszierende oder fluoreszierende Nachweismethoden)
Zur Verwendung mit (Geräte)Kompatibel mit einer Vielzahl von Bildgebern mit UV- oder Fluoreszenz-Lichtquellen, z. B. dem iBright Bildgebungssystem
Anzahl ReaktionenEin Standard-Kit kann 40 Mini-Gele oder 40 Membranen in Mini-Gel-Größe markieren
Menge1 kit
Laufzeit10 min
HaltbarkeitMindestens 2 Jahre ab Eingang
VersandbedingungTrockeneis
NachweisverfahrenChemilumineszierend, fluoreszierend
Gel CompatibilityAlle Geltypen und Gel-Chemien
Membrane CompatibilityPVDF, Nitrozellulose
ProduktlinieInvitrogen
ProdukttypKennzeichnungsreagenz für Proteine
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
• No-Stain Aktivator, 800 µl, bei -20 °C lagern
• No-Stain Derivatisierungsmittel, 800 µl, bei -20 °C lagern
• 2 × No-Stain Markierungspuffer, 20 ml, bei 15 bis 30 °C lagern

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Do the iBright imagers support total protein normalization?

iBright Imaging Systems support total lane protein-based normalization and housekeeping gene (HKP)-based normalization. To support the methods best suited for your experiment, iBright Imaging Systems and iBright Analysis Software provide multiple quantitation and normalization options to monitor or mathematically compensate for experimental or sample variability.

To learn more about total lane protein normalization, explore our application note.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Electrophoresis and Western Blotting Support Center.

What is the shelf life of the No-Stain Protein Labeling Reagent (Cat. No. A44717, A44449)?

The shelf life of the No-Stain Protein Labeling Reagent is at least 2 years from the date of receipt of the product.

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After staining a membrane using the No-Stain Protein Labeling Reagent (Cat. No. A44717), is it possible to store the membrane and detect the protein of interest later?

Even though the No-Stain Protein Labeling Reagent (Cat. No. A44717) is light sensitive, membranes can be kept wet in the dark for at least 3 days with minimal effect on the signal. So, yes, it is possible.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Gel Electrophoresis Chambers, Power Supplies, and Accessories Support Center.

Can I get uniform labeling of proteins when using the No-Stain Protein Labeling Reagent?

Yes, the No-Stain Protein Labeling Reagent provides uniform labeling of proteins in gels or on membranes, provided they are imaged the same way.

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Can I get a similar signal intensity from two same-type gels or two same-type membranes that I label using the No-Stain Protein Labeling Reagent?

Yes, reproducible signal intensity will be obtained when using the No-Stain Protein Labeling Reagent to label either the same type, identically loaded gels or the same type membranes from the transfer of identically loaded, same-type gels: quantitation results will be similar between the gel pairs and the membrane pairs.

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