mMESSAGE mMACHINE™ T3 Transcription Kit
mMESSAGE mMACHINE™ T3 Transcription Kit
Invitrogen™

mMESSAGE mMACHINE™ T3 Transcription Kit

Ambion™ のmMESSAGE mMACHINE™ High Yield Capped RNA Transcription Kitは、Ambionが特許を取得した高収量転写テクノロジーを用い詳細を見る
製品番号(カタログ番号)製品タイプ反応数
AM1348T3 In Vitro転写キット25反応
製品番号(カタログ番号) AM1348
価格(JPY)
146,400
Each
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製品タイプ:
T3 In Vitro転写キット
反応数:
25反応
Ambion™ のmMESSAGE mMACHINE™ High Yield Capped RNA Transcription Kitは、Ambionが特許を取得した高収量転写テクノロジーを用い、1 µgのテンプレートDNAから、7-メチルグアノシンキャップ構造を持つRNA 15–35 µgをルーチンに合成します。本キットには25回の反応分の試薬が含まれています。
• 高収量でキャップRNAを合成—1反応あたり最大39 µg のRNA が得られます
• 高い簡便性—キャップアナログおよびヌクレオチドは混合済みです
• シンプルなリアクションフォーマット
• 合成した転写産物は、マイクロインジェクション、in vitro翻訳、またはトランスフェクションに最適。mMESSAGE mMACHINE™ High Yield Capped RNA Transcriptionは20 µL量の反応液、2時間のインキュベーションで、最大35 µg のキャップRNAを合成します。
これは従来のin vitro 転写反応で得られる収量の10–50倍に相当する収量です。キャップアナログとGTPの割合は、収量(15–35 µg)およびキャップ構造をもつ転写産物の割合(80%)のバランスを配慮して至適化されています。また、mMESSAGE mMACHINE™ kitにはLiCl沈殿用の溶液が含まれており、LiCl沈殿によって、反応液中に残存するタンパク質および取り込まれなかったヌクレオチド(フリーのキャップアナログを含む)を効果的に除去し、翻訳の効率を上げることができます。mMESSAGE mMACHINE™ Kitは、キットに含まれるポリメラーゼを使用した場合に対してのみ至適化されています。 キットに付属する酵素以外のポリメラーゼを使用した場合、収量が低下する可能性があります。mMESSAGE mMACHINE™ Kitには 57A260 Unitsのキャップアナログが含まれており、非常にコストパフォーマンスに優れた製品です。
研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
使用対象(アプリケーション)In Vitro転写、合成mRNA、mRNA、トランスフェクション、LNP、GENEart、線形化DNAプラスミド、導入、PCR産物
反応数25反応
製品ラインAmbion、mMESSAGE mMACHINE
製品タイプT3 In Vitro転写キット
プロモーターT3
数量25反応
出荷条件ドライアイス
原料PCR産物、線形化DNAプラスミド
収量20
最終産物タイプ合成mRNA、mRNA, 合成mRNA、mRNA
フォーマットキット
サンプルタイプmRNA, 合成mRNA
Unit SizeEach
組成および保存条件
T3酵素ミックス、10X反応バッファー2XNTP⁄CAP溶液、GTP溶液、pTRI-Xef、TURBO DNase、酢酸アンモニウム停止液、塩化リチウム沈殿溶液、およびゲルローディングバッファーは、すべて-20°Cで保管します。ヌクレアーゼフリーの水は、何度で保管してもかまいません。

よくあるご質問(FAQ)

I am using the mMESSAGE mMACHINE T3 Transcription Kit for in vitro transcription. I ran my reaction product on a denaturing gel and got a smear. Can you offer some advice?

If the RNA appears degraded (e.g. smeared), remove residual RNase from the DNA template preparation before in vitro transcription. Do this by digesting the DNA prep with proteinase K (100-200 µg/mL) in the presence of 0.5% SDS for30 min at 50°C, follow this with phenol/chloroform extraction. The RNase Inhibitor that is present in the transcription reaction, can only inactivate trace RNase contamination. Large amounts of RNase contamination will compromise the size and amount of transcription products.