Click-iT™ EdU-Proliferationsassay für Mikrotiterplatten
Der Click-iT EdU-Proliferationsassay für Mikrotiterplatten stellt eine einfachere und robustere Methode zur Messung der Zellproliferation von Säugetieren im Vergleich zuWeitere Informationen
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Katalognummer
Menge
C10499
400 Assays
Katalognummer C10499
Preis (EUR)
742,65
Exklusiv online
782,00
Ersparnis 39,35 (5%)
Each
Menge:
400 Assays
Preis (EUR)
742,65
Exklusiv online
782,00
Ersparnis 39,35 (5%)
Each
Der Click-iT EdU-Proliferationsassay für Mikrotiterplatten stellt eine einfachere und robustere Methode zur Messung der Zellproliferation von Säugetieren im Vergleich zu herkömmlichen BrdU-basierten Methoden dar. Nach dem Einbau von EdU (einem modifizierten Thymidin-Analogon) in die neu synthetisierte DNA wird Meerrettich-Peroxidase (HRP) über die hochspezifische Click-Reaktion kovalent angehängt. Amplex UltraRed Reagenz, ein HRP-Substrat, wird hinzugefügt und das resultierende Fluoreszenzsignal wird erkannt. Aufgrund der hochspezifischen Bindung von HRP an EdU ermöglicht dieser Assay eine hochempfindliche und zuverlässige Messung der Zellproliferation von Säugetieren in einem Mikrotiterplattenformat.
Der Click-iT EdU-Proliferationsassay für Mikrotiterplatten bietet folgende Funktionen: • Besseres Leistungsverhalten—Die direkte Konjugation von HRP an inkorporiertes EdU verbessert die Empfindlichkeit und Genauigkeit des Assays • Höhere Zuverlässigkeit—Das Assay-Format hat eine geringe Well-to-Well-Variabilität zur Folge • Vereinfachtes Protokoll—kürzere Zeit bis zur Datenerfassung; einfacheres Befolgen des Protokolls • Multiplex-fähig—Der Assay kann leicht mit anderen Zellgesundheitsreagenzien gemultiplext werden, was zu mehr Daten pro Probe führt
Die Messung der Zellproliferation ist eine grundlegende Methode zur Beurteilung der Zellgesundheit, zur Bestimmung der Genotoxizität und zur Bewertung von Krebsmedikamenten. Die genaueste Methode zur Messung der Proliferation ist der direkte Nachweis der DNA-Synthese. Früher wurde dies durch die Einbindung eines radioaktiven Nukleosids (z. B. 3H-Thymidin) erreicht. Diese Methode wurde durch die Antikörper-basierte Erkennung des Nukleosid-Analogons Bromdesoxyuridin (BrdU) ersetzt. Nach der Einbindung von BrdU in die frisch synthetisierte DNA ist eine Denaturierung erforderlich, um die BrdU-Moleküle dem Anti-BrdU-Antikörper auszusetzen. Die Denaturierung umfasst rauhe Verfahren (HCl, Hitze oder Enzyme), ist zeitaufwändig und schwierig konsistent durchzuführen.
Der Click-iT EdU-Proliferationsassay ist eine Alternative zum BrdU-Assay. Das nukleosidanaloge EdU (5-Ethynyl-2´-desoxyuridin) wird lebenden Zellen hinzugefügt und während der aktiven DNA-Synthese in die DNA integriert. Das integrierte EdU enthält eine Alkin-Gruppe, die kovalent mit der in HRP vorhandenen Azid-Gruppe verbunden ist, wobei eine hochspezifische kupferkatalysierte kovalente Reaktion („Klick-Reaktion“) zum Einsatz kommt. Dann wird Amplex UltraRed Reagenz hinzugefügt und seine Umwandlung durch HRP in ein stark fluoreszierendes Produkt mit einem Fluoreszenz-Mikrotiterplatten-Lesegerät aufgezeichnet (Anregung: 568 nm, Emission: 585 nm). Mit seinem hohen Extinktionskoeffizienten, seiner guten Quanteneffizienz und seiner Resistenz gegen Autooxidation sorgt das Amplex UltraRed Reagenz für eine höhere Empfindlichkeit und einen breiteren Assay-Bereich als andere fluorogene oder kolorimetrische HRP-Substrate. Es ist außerdem vielseitig, da der Nachweis entweder durch Fluoreszenz- oder durch Absorptionsmessung erfolgen kann.
Im Vergleich zu Anti-BrdU-basierten Mikrotiterplatten-Proliferationsassays verwendet der Click-iT EdU-Proliferationsassay kleine Reaktionseinheiten und erfordert keine Antikörper oder DNA-Denaturierung, die beide die Assayleistung mindern können. Außerdem ist keine Streptavidin-Biotin-Bindung erforderlich, wodurch die erforderlichen Biotin-Blockierschritte entfallen, die bei Zellen mit hohem endogenen Biotin erforderlich sind.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
NachweisverfahrenFluoreszent
Format96-Well Platte
Menge400 Assays
VersandbedingungZugelassen für den Versand bei Raumtemperatur oder auf nassem Eis
Zur Verwendung mit (Anwendung)Proliferationsassay
Zur Verwendung mit (Geräte)Mikrotiterplatten-Lesegerät
ProduktlinieCyQUANT
ProdukttypProliferationsassay
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -20 °C trocken und vor Licht geschützt lagern.
Häufig gestellte Fragen (FAQ)
I am not getting any signal with the Click-iT EdU Cell Proliferation Assay for Microplates. What can cause this?
If the Amplex UltraRed reagent was spontaneously oxidized, all samples would have high levels of signal. The lack of any signal indicates that some component in the reaction is non-functional or little or no EdU was incorporated by the cells. The HRP-azide (Component B), the Click-iT EdU reaction additive (Component F), and the hydrogen peroxide (Component J) are the most labile components in the kit. HRP can be denatured and inhibited by sodium azide. The Click-iT Edu reaction additive (Component F) should be diluted only shortly before use and dilute solutions should not be stored. Hydrogen peroxide does spontaneously degrade over time, but more readily when diluted; prepare the hydrogen peroxide stock solution shortly before use and do not store.
With the Click-iT EdU Cell Proliferation Assay for Microplates, can we use another HRP substrate other than the Amplex UltraRed reagent provided in the kit?
This may be possible, but the final working concentrations and incubation steps would have to be optimized by the user. Be advised that chromogenic substrates are not as sensitive as the fluorogenic Amplex UltraRed reagent.
Can endogenous peroxidase activity interfere with the Click-iT EdU Cell Proliferation Assay for Microplates?
The Click-iT EdU Cell Proliferation Assay for Microplates protocol requires samples to be fixed and permeabilized prior to the click reaction. Most endogenous peroxidases may be inactivated after fixation/permeabilization and after the click reaction. If this is of concern, apply the Amplex UltraRed reaction mixture without added H2O2 to the samples after fixation, but before the click reaction (i.e., no HRP-azide added to the sample). In the absence of added H2O2 and HRP-azide, if you see any change in Amplex UltraRed fluorescence intensity, this is indicative of endogenous peroxidase activity.