ChromaTide™ Alexa Fluor™ 594-5-dUTP
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ChromaTide™ Alexa Fluor™ 594-5-dUTP

Les nucléotides dUTP, OBEA-dCTP et UTP marqués au ChromaTide™ Molecular Probes™ peuvent être utilisés pour synthétiser des sondes d’ADN marquéesAfficher plus
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RéférenceQuantité
C1140025 μl
Référence C11400
Prix (EUR)
914,00
Each
Quantité:
25 μl
Prix (EUR)
914,00
Each
Les nucléotides dUTP, OBEA-dCTP et UTP marqués au ChromaTide™ Molecular Probes™ peuvent être utilisés pour synthétiser des sondes d’ADN marquées sans avoir besoin de nucléotides marqués avec des radioisotopes dangereux et coûteux. Ces nucléotides peuvent être incorporés à l’aide de techniques de biologie moléculaire standard ; les sondes marquées peuvent ensuite être utilisées dans le cadre de protocoles d’hybridation in situ, de microarray ou de transfert. Les nucléotides marqués au colorant ChromaTide™ sont disponibles en différentes couleurs de fluorescence pour faciliter l’analyse multicolore.

Spécifications des nucléotides marqués au ChromaTide™ :
• Ex / Em du colorant : Alexa Fluor™ 594-5-dUTP (590 / 615 nm)
• Longueur du liant alkynylamino : 5 atomes


Méthodes pour incorporer les nucléotides ChromaTide™ dans les sondes
• Traduction de coupure
• Marquage aléatoire des amorces
• Marquage de l’extrémité avec une désoxyribonucléotidyl transférase terminale
• Transcription inverse
• Amplification par PCR


Voir Méthodes pour incorporation enzymatique des dUTP ChromaTide™ pour prendre connaissance des directives spécifiques à chaque méthode.

Les colorants fluorescents Alexa Fluor™ et BODIPY™ constituent d’excellentes sondes
Les sondes fabriquées avec des nucléotides marqués peuvent être utilisées pour des techniques multicolores telles que l’hybridation in situ et les puces d’hybridation. Nos conjugués colorants exclusifs BODIPY™ et Alexa Fluor™ sont exceptionnellement brillants et photostables et fondamentalement insensibles au pH. Le profil d’émission étroit des colorants BODIPY™ permet d’assurer un chevauchement spectral minimal. Les colorants Alexa Fluor™ sont hautement solubles dans l’eau, tout comme les sondes d’ADN qui en résultent, ce qui en fait des marqueurs de choix pour la fluorescence dans le cadre d’une hybridation in situ.

Les liants longs améliorent les performances
Les nucléotides dUTP et UTP ChromaTide™ sont modifiés en position C-5 de l’uridine grâce à un liant alkynylamino unique qui fournit un bras espaceur entre le nucléotide et le colorant afin de réduire les interactions entre eux. Le chiffre associé au nom du produit, par exemple, le “12” dans fluorescéine-12-dUTP, indique la longueur nette du bras espaceur, en atomes. Ces bras espaceurs permettent d’obtenir des conjugués plus brillants et une accessibilité accrue aux haptènes pour les réactifs de détection secondaires.

Pour une liste complète de nos réactifs ChromaTide™ : Nucléotides marqués au Molecular Probes ChromaTide™ et au aha — Tableau 8.5.
Pour plus d’informations sur ces réactifs de marquage, consultez le paragraphe Marquage des oligonucléotides et des acides nucléiques — section 8.2 du manuel Molecular Probes™.

Usage exclusivement réservé à la recherche. Non utilisé à des fins thérapeutiques ou diagnostiques humaines ou animales.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Méthode d’étiquetageMarquage direct
Marqueur ou colorantAlexa Fluor™ 594
Quantité25 μl
Conditions d’expéditionGlace carbonique
Concentration1 mM
Gamme de produitsAlexa Fluor, ChromaTide
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conserver au congélateur (entre -5 et -30°C) à l’abri de la lumière.

Foire aux questions (FAQ)

I'm getting high background after labeling with ChromaTide nucleotides. What do you recommend I do?

You can try to purify the ChromaTide labeled probe with an appropriate spin column-based method to remove unincorporated ChromaTide nucleotides. Ethanol precipitation may not efficiently remove the unincorporated ChromaTide nucleotides, so a spin column will need to be used.

The nucleic acid probe is not fluorescent after labeling with ChromaTide nucleotides. What do you recommend I try?

- Check the base-to-dye ratio to determine the level of incorporation of the ChromaTide nucleotides. Since fluorescent detection may be affected by underlabeling, overlabeling, instrument sensitivity, or other factors, the base-to-dye ratio is a better indicator of incorporation efficiency.
- ChromaTide nucleotides may not have been incorporated well in the enzymatic labeling reaction. Make sure that the enzymatic method used is compatible with the particular fluorescent ChromaTide nucleotide, since some methods may not be appropriate for all applications. You may also need to further optimize the enzymatic incorporation method, for example by optimizing enzyme concentration, incubation time, concentration, and ratio of labeled and unlabeled nucleotides. For PCR, a lower fidelity polymerase may give higher incorporation rates; however, incorporation rates will be generally low using PCR.
- Check the fluorescent filter used for detection to make sure it is compatible with the dye. You can also test a small drop of the undiluted fluorescent ChromaTide nucleotide in your filter to make sure you can image the dye alone before it is conjugated to the oligonucleotide. The fluorescence emission of Alexa Fluor 647 is not visible by eye and will require a far-red imaging system for detection.

Can ChromaTide nucleotides be used for labeling nucleic acids in live cells?

No, they are not cell permeant so they are only suitable for in vitro incorporation methods. The fluorescent dyes and phosphate groups are too highly charged to allow the nucleotides to penetrate the membrane of an intact cell. Nonfluorescent nucleosides without phosphates such as EdU, EU, or BrdU can be used for live cell nucleic acid incorporation studies.

How do I determine the incorporation efficiency of the ChromaTide Labeling Nucleotides after enzymatic incorporation?

The base-to-dye ratio is determined by measuring the absorbance of the nucleic acid at 260 nm and the absorbance of the dye at its absorbance maximum. Using the extinction coefficients for the appropriate dye and nucleic acid, you can then calculate the base-to-dye ratio for the labeled nucleic acid using the Beer-Lambert law. Detailed instructions can be found in these product manuals: (http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/td07604.pdf, http://tools.thermofisher.com/content/sfs/manuals/td07605.pdf).

What is the average dye to base incorporation rate when enzymatically incorporating ChromaTide nucleotides?

The average incorporation is one dye for every 100-150 bases, so the ChromaTide fluorescently labeled nucleotides typically produce the lowest labeling rates of the nucleic acid labeling methods we offer.

Citations et références (7)

Citations et références
Abstract
Visualization of the intracellular behavior of HIV in living cells.
Authors:McDonald D, Vodicka MA, Lucero G, Svitkina TM, Borisy GG, Emerman M, Hope TJ
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:12417576
'To track the behavior of human immunodeficiency virus (HIV)-1 in the cytoplasm of infected cells, we have tagged virions by incorporation of HIV Vpr fused to the GFP. Observation of the GFP-labeled particles in living cells revealed that they moved in curvilinear paths in the cytoplasm and accumulated in the ... More
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Authors:Daikoku T, Kudoh A, Sugaya Y, Iwahori S, Shirata N, Isomura H, Tsurumi T
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:16510450
'The mismatch repair (MMR) system, highly conserved throughout evolution, corrects nucleotide mispairing that arise during cellular DNA replication. We report here that proliferating cell nuclear antigen (PCNA), the clamp loader complex (RF-C), and a series of MMR proteins like MSH-2, MSH-6, MLH1, and hPSM2 can be assembled to Epstein-Barr virus ... More
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Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:17028100
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The genetic architecture of Down syndrome phenotypes revealed by high-resolution analysis of human segmental trisomies.
Authors:Korbel JO, Tirosh-Wagner T, Urban AE, Chen XN, Kasowski M, Dai L, Grubert F, Erdman C, Gao MC, Lange K, Sobel EM, Barlow GM, Aylsworth AS, Carpenter NJ, Clark RD, Cohen MY, Doran E, Falik-Zaccai T, Lewin SO, Lott IT, McGillivray BC, Moeschler JB, Pettenati MJ, Pueschel SM, Rao KW, Shaffer LG, Shohat M, Van Riper AJ, Warburton D, Weissman S, Gerstein MB, Snyder M, Korenberg JR,
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:19597142
'Down syndrome (DS), or trisomy 21, is a common disorder associated with several complex clinical phenotypes. Although several hypotheses have been put forward, it is unclear as to whether particular gene loci on chromosome 21 (HSA21) are sufficient to cause DS and its associated features. Here we present a high-resolution ... More
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Journal:Methods Mol Biol
PubMed ID:11462829