Células competentes DH5α
Células competentes DH5α
Thermo Scientific™

Células competentes DH5α

Las células competentes DH5α Thermo Scientific son células de E. coli de alta eficiencia y competencia química ideales para laMás información
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Número de catálogoCantidad
EC011210 × 100 μl
Número de catálogo EC0112
Precio (MXN)
-
Cantidad:
10 × 100 μl
Pedido a granel o personalizado
Las células competentes DH5α Thermo Scientific son células de E. coli de alta eficiencia y competencia química ideales para la construcción de bancos de genes o la generación de bibliotecas de ADNc mediante vectores derivados del plásmido. El marcador φ80dlacZΔM15proporciona la α-complementación del gen β-galactosidasa de pUC o vectores similares para permitir la detección de colonias azules/blancas en placas de agar bacterianas que contienen Bluo-Gal o X-Gal. Las mutaciones RecA1 y endA1 en las células DH5 αmejoran la estabilidad y la calidad de las inserciones del ADN plasmídico extraído.

• Alta eficacia de transformación: > 1 x 109 cfu/µg de ADN pUC19
• Adecuado para aplicaciones de clonación rutinarias y de alto rendimiento
• Marcadores genéticos que permiten la detección de colonias azules/blancas
• Dos prácticas reacciones por envase de vial
• SOC Medio de crecimiento incluido

Aplicaciones
Las células competentes DH5α son adecuadas para una variedad de aplicaciones que requieren una alta eficiencia de transformación:
• Clonación eficiente de ADN derivada de reacciones de PCR, generación de ADNc
• El marcador recA1 facilita el trabajo con ADN difícil de transformar
• Ideal para la generación de bibliotecas de ADNc utilizando vectores derivados del plásmidos
• Mutagénesis dirigida a sitio

Genotipo
F– φ80lacZΔ M15 Δ (lacZYA-argF) U169 recA1 endA1 hsdR17 (rK– mK+) phoA supE44 λ- thi–1 gyrA96 relA1

Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.

Especificaciones
Cepa bacteriana o de levaduraDH5α
Tramado azul/blanco
Tipo de célulaQuímicamente competente
Clonación de ADN metiladoNo
Contiene el episoma F'Carece de episoma F'
EficaciaAlta eficacia (> 1 x 10^9 cfu/µg de ADN pUC19)
Para utilizar con (aplicación)Clonación
Compatibilidad de alto rendimientoNo compatible con alto rendimiento
BibliotecasADNc
Línea de productosThermo Scientific
Tipo de productoCélula competente
Propagación de vectores ccdBNo para propagación vectorial ccdB
Cantidad10 × 100 μl
Condiciones de envíoHielo seco
FormatoTubo
EspecieE. coli
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
• 10 x células competentes DH5α (100 µl)
• ADN pUC19 (50 µl) (10 pg/µl)
• S.O.C. Medio (5 ml)

Almacenar a -80 °C.

Preguntas frecuentes

Can I store my competent E. coli in liquid nitrogen?

We do not recommend storing competent E. coli strains in liquid nitrogen as the extreme temperature can be harmful to the cells. Also, the plastic storage vials are not intended to withstand the extreme temperature and may crack or break.

How should I store my competent E. coli?

We recommend storing our competent E. coli strains at -80°C. Storage at warmer temperatures, even for a brief period of time, will significantly decrease transformation efficiency.

I'm getting overgrowth of colonies. Why?

Ensure that you are using the correct antibiotic at the appropriate concentration. Additionally, make sure the antibiotic is not expired. If colonies exhibit unexpected morphologies, contamination could be a factor. Check your S.O.C. medium and LB growth medium.

I'm only getting white colonies, but none of the clones have an insert. What can I do?

Here are a few suggestions:

- Small fragments/linkers are cloning in to your vector instead of your insert; to correct this, gel-purify the insert before ligation
- Ensure that the correct concentrations of X-gal and/or IPTG (if vector contains the lacIq marker) are used
- If spreading X-gal and/or IPTG on your plate, allow sufficient time for the reagents to diffuse into the plate
- Incubate your plate for a longer period to ensure full color development

I'm getting no colonies at all on my plates. Can you help?

We recommend trying the following:
- Carry out the puc19 transformation control; this gives you information about the performance of the cells.
- Check plates for expiration and correct media used (LB/agar).
- Confirm that the correct antibiotic and concentration was used.