EasySelect™ Pichia Expressionskit
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EasySelect™ Pichia Expressionskit

Das EasySelect™ Pichia-Expressionskit enthält alle erforderlichen Komponenten für die Proteinproduktion in der Hefe Pichia pastoris. Das EasySelect™ Kit enthält Pichia-Hefestämme,Weitere Informationen
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K1740011 Kit
Katalognummer K174001
Preis (EUR)
3.230,00
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Das EasySelect™ Pichia-Expressionskit enthält alle erforderlichen Komponenten für die Proteinproduktion in der Hefe Pichia pastoris. Das EasySelect™ Kit enthält Pichia-Hefestämme, Expressionsvektoren und Reagenzien, die die Transformation von Pichia-Zellen ermöglichen. Die Auswahl mit Zeocin-Antibiotikum™ macht es einfach, nach Varianten mit hoher Kopienzahl zu screenen.

Vorteile des Pichia pastoris-Expressionssystems:
• Kultievieren Sie Pichia-Zellen so leicht wie E. coli
• Erhalten Sie eine höhere Zelldichte als andere mikrobielle Expressionssysteme.
• Erzeugen Sie mehr Protein pro Zelle als andere mikrobielle Expressionssysteme.
• Profitieren Sie von eukaryotischer Proteinverarbeitung, Proteinfaltung und post-translationalen Modifikationen.
• Einfaches Aufskalieren von Schüttelkolben bis hin zur industriellen Fermentation.

Ein bewährtes Proteinexpressionssystem
In den letzten 30 Jahren wurde Pichia pastoris von Laboren und der Industrie weltweit für die Produktion von Hunderten verschiedener Proteine aus vielen Spezies, einschließlich Menschen, verwendet (Ref 1, 2, 3). Pichia pastoris kann so leicht wie Bakterien (E. coli) oder Hefe (Saccharomyces cerevisiae) kultiviert werden, bietet jedoch gegenüber diesen Systemen viele Vorteile (Ref. 4). Pichia pastoris kann zu viel höheren Zelldichten wachsen als Bakterien oder andere Hefen. Pichia pastoris ist in der Lage, auf Methanol als alleinige Kohlenstoffquelle zu wachsen, wodurch eine Skalierung auf Industrieniveau relativ kostengünstig ist.

Die Power des AOX1 Promoters
Das EasySelect™ Pichia-Expressionskit nutzt den Promotor aus dem Pichia Alkoholoxidase 1 (AOX1) Gen, um die Produktion Ihres Proteins zu fördern. Pichia pastoris ist in der Lage, auf Methanol als einzige Kohlenstoffquelle zu wachsen. Wenn AOX1 mRNA auf Methanol als alleinige Kohlenstoffquelle angebaut wird, entspricht sie bis zu 5 % der Gesamt-mRNA, und AOX1-Enzym kann bis zu 30 % des Zellgewichts (Ref. 5) betragen.

Das EasySelect™ Pichia-Expressionssystem wird mit den Vektoren pPICZ und pPICZα geliefert. Die pPICZ- und pPICZα-Vektoren enthalten eine Mehrfachklonierungsstelle (MCS) und ermöglichen das Einfügen Ihres Gens von Interesse unter Kontrolle des AOX1-Promoters. Die pPICZ- und pPICZα-Vektoren enthalten außerdem einen c-Myc-Tag zur einfachen Erkennung und einen Polyhitidin (6XHis)-Tag zur einfachen Erkennung und Aufreinigung Ihres Proteins.

Da Pichia pastoris natürlich nur wenige Proteine sezerniert, können Sie die extrazelluläre Signalsequenz in den pPICZα-Vektoren verwenden, um die Sekretion Ihres Proteins in das Kulturmedium zu erzwingen, um die Aufreinigung im unteren Bereich zu vereinfachen.

Holen Sie sich High-Copy Number-Integration mit Zeocin™ Antibiotikum
Das EasySelect™ Pichia Expressionskit verwendet das Zeocin-Antibiotikum™ zur Auswahl transformierter Pichia-Zellen. PPICZ- und pPICZα-Vektoren enthalten das Bleomycin-Gen aus Streptoalloteichus hindustanus (Sh ble), das Resistenz gegen Zeocin-Antibiotikum™ verleiht. Die pPICZ- und pPICZα-Vektoren können stabil in das Pichia-Genom integriert werden. Durch die Erhöhung der Konzentration von Zeocin-Antibiotika™ können Sie ganz einfach für Klone mit der höchsten Anzahl von Integranten und höchsten Proteinexpressionswerten auswählen.

Das EasySelect™ Pichia-Expressionskit enthält die folgenden Komponenten:
• Stechen Sie Fläschchen Pichia pastoris- und E. coli-Stämme, um Ihre Kulturen zu starten.
• Lösungen zur Herstellung transformationsfähiger Pichia-Zellen.
• PPICZ- und pPICZα-Vektoren zur Verschmelzung Ihres Gens mit dem AOX1-Promotor.
• Sequenzierungsprimere zur Bestätigung der Einfügung Ihres Gens in die pPICZ-Vektoren.
• Zeocin™-Antibiotikum zur Auswahl transformierter Pichia-Zellen.

Nur für Forschungszwecke. Nicht für die Verwendung in Diagnoseverfahren vorgesehen.

Verwandte Links
Sehen Sie sich die Produkteinlage für die pPICZ A, B, C Vektoren an (PDF).
Sehen Sie sich die Produkteinlage für die pPICZα A, B, C Vektoren an (PDF).
Produkteinlage für Zeocin™ Antibiotika (PDF).
Erfahren Sie mehr über die Verwendung von Pichia pastoris in Pichia Protocols 1. Ausgabe erhältlich von Invitrogen.
Erfahren Sie mehr über andere Pichia-Expressionssysteme von Invitrogen.

Referenzen

1. Cereghino JL, Cregg JM. Heterologous protein expression in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. FEMS Microbiol Rev. 2000 Jan;24(1):45-66. [PubMed]
2. Cereghino GP, Cereghino JL, Ilgen C, Cregg JM. Production of recombinant proteins in fermenter cultures of the yeast Pichia pastoris. Curr Opin Biotechnol. 2002 Aug;13(4):329-32. [PubMed]
3. Cregg JM. Introduction: distinctions between Pichia pastoris and other expression systems. Methods Mol Biol. 2007;389:1-10. [PubMed]
4. Cregg JM, Tolstorukov I, Kusari A, Sunga J, Madden K, Chappell T. Expression in the yeast Pichia pastoris. Methods Enzymol. 2009;463:169-89. [PubMed]
5. Cregg JM, Madden KR, Barringer KJ, Thill GP, Stillman CA. Functional characterization of the two alcohol oxidase genes from the yeast Pichia pastoris. Mol Cell Biol. 1989 Mar;9(3):1316-23. [PubMed]
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Bakterielle AntibiotikaresistenzZeocin™ (ZeoR)
Bakterien- oder HefenstammGS115, KM71H, X-33
KlonierungsmethodeRestriktionsenzym/MCS
ExpressionsmechanismusZellbasierte Expression
ExpressionssystemHefe
Zur Verwendung mit (Anwendung)Proteinexpression
ProduktlinieEasySelect
ProdukttypExpressionskit
ProteinmarkierungHis-Tag (6x), c-Myc Epitop-Tag
Menge1 Kit
Selektionsmittel (eukaryotisch)Zeocin
ZelltypHefezellen
FormatKit
PromoterAOX1
SpeziesP. pastoris
VectorpPIC
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Das EasySelect Pichia-Expressionskit enthält je 20 μg der Plasmide pPICZ A, B und C und pPICZα A, B und C; Pichia pastoris Stämme X-33 (Wildtyp), GS115 (his4), KM71H (arg4 aox1::ARG4) und Kontrollstämme für intrazelluläre und sekretierte Expression; 250 mg Zeocin™ Antibiotikum; Medien (YP und YNB), EasyComp™ Pichia-Transformationskit, 2 μg je 5´ AOX1-, AOX1 - und α-Faktor Sequenzierungsprimere. Die Vektoren pPICZ und pPICZα sind auch separat erhältlich. lacZ positive Expressionskontrolle wird mit pPICZ bereitgestellt.

Stämme bei 4 °C lagern. Lagern Sie Vektoren und Primer bei -20 °C. Alle anderen Komponenten bleiben garantiert 6 Monate stabil, wenn sie sachgemäß gelagert werden.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

When selecting for blasticidin-resistant transformants in the X-33 strain using pPIC6/pPIC6α vectors, why do I get large and small colonies on YPD plates containing 300 µg/ml blasticidin?

Generally, large colonies represent transformants containing pPIC6/pPIC6α integrants, while small colonies represent transformants containing pPIC6/pPIC6α non-integrants. These non-integrants have transduced the pPIC6/pPIC6α plasmid, and therefore, exhibit a low level of blasticidin resistance in the initial selection process. Upon subsequent screening, these non-integrant transformants do not retain blasticidin resistance.

When choosing a blasticidin-resistant transformant for your expression studies, we recommend that you pick blasticidin-resistant colonies from the initial transformation plate and streak them on a second YPD plate containing the appropriate concentration of blasticidin. Select transformants that remain blasticidin-resistant for further studies.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

My transformation is not working. Do you have any suggestions?

Here are some suggestinos:

- Make sure that you have harvested cells during log-phase growth (OD <1.0 generally).
- If electroporation is being used, see the electroporator manual for suggested conditions. Vary electroporation parameters if necessary.
- Use more DNA.
- Use freshly made competent cells.
- If the LiCl transformation method is being used, try boiling the carrier DNA.

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My spheroplasting of Pichia worked twice, but hasn't worked since. The OD of the culture simply does not drop.

Here are some things to consider:

- If the OD of cells that are used is too high, they will not spheroplast. Do not overgrow cells.
- Do not use old cells and make sure that they are in log phase of growth.
- Make sure to mix zymolyase well before using. Zymolyase is more of a suspension than a solution.
- Make the PEG solution fresh each time and check the pH.

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What are the different kinds of media used for culturing Pichia pastoris and S. cerevisiae?

Following are the rich and minimal media used for culturing Pichia pastoris and S. cerevisiae:

Rich Media:
S. cerevisiae and Pichia pastoris
YPD (YEPD): yeast extract, peptone, and dextrose
YPDS: yeast extract, peptone, dextrose, and sorbitol

Pichia pastoris only
BMGY: buffered glycerol-complex medium
BMMY: buffered methanol-complex medium

Minimal Media (also known as drop-out media):
S. cerevisiae
SC (SD): Synthetic complete (YNB, dextrose (or raffinose or galactose), and amino acids)

Pichia pastoris
MGY: minimal glycerol medium
MD: minimal dextrose
MM: minimal methanol
BMGH: buffered minimal glycerol
BMMH: buffered minimal methanol

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Is there a recommended protocol for fermentation using constitutive expression vectors such as pGAPZ?

Use the following high cell density protocol for pGAP clones. Feed carbon until the desired density is reached (300 to 400 g/L wet cell weight (WCW)). If the protein is well-behaved in the fermenter, increase to 300-400 g/L WCW as with methanol inducible clones. These densities can be reached in less than 48 hours of fermentation. We have fermented constitutive expressers on glycerol using these protocols with good results. Some modifications to the Fermentation Basal Salts Medium that you might want to make are:

1) Substitute 2% dextrose for the 4% glycerol in the batch medium.
2) Substitute 40% dextrose for the 50% glycerol in the fed-batch medium.
3) Feed the 40% dextrose at 12 mL/L/hr (Jim Cregg has published data on expression using several carbon sources as substrates; dextrose gave the highest levels of expression).
4) Yeast extract and peptone may be added to the medium for protein stability.

One warning: If you are working with His- strains, they remain His- after transformation with pGAPZ. Fermentation in minimal medium will require addition of histidine to the fermenter.

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Zitierungen und Referenzen (10)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Fas ligand deficiency in HIV disease.
Authors:Sieg S, Smith D, Yildirim Z, Kaplan D
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:9159165
'Apoptosis is postulated to be involved as an anti-viral immune mechanism by killing infected cells before viral replication has occurred. The Fas-Fas ligand interaction is a powerful regulator of T cell apoptosis and could potentially act as a potent anti-viral immune mechanism against T cell tropic virus such as human ... More
A composite Ets/Pit-1 binding site in the prolactin gene can mediate transcriptional responses to multiple signal transduction pathways.
Authors:Howard PW, Maurer RA
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:7673116
'Binding sites for the tissue-specific transcription factor, Pit-1, are required for basal and hormonally induced prolactin gene transcription. Although Pit-1 is phosphorylated in response to several signaling pathways, the mechanism by which Pit-1 contributes to hormonal induction of gene transcription has not been defined. Recent reports suggest that phosphorylation of ... More
Expression and secretion of a biologically active glycoprotein hormone, ovine follicle stimulating hormone, by Pichia pastoris.
Authors:Fidler AE, Lun S, Young W, McNatty KP
Journal:J Mol Endocrinol
PubMed ID:9845673
'The methylotrophic yeast, Pichia pastoris, has been used to co-express recombinant genes formed by fusion of the mating factor-alpha (MFalpha) leader and ovine follicle stimulating hormone (oFSH) alpha and beta subunit coding sequences. Pichia strains carrying single copies of the two fusion genes secreted recombinant oFSH (roFSH) to concentrations of ... More
Improved tumour targeting by disulphide stabilized diabodies expressed in Pichia pastoris.
Authors:FitzGerald K, Holliger P, Winter G,
Journal:Protein Eng
PubMed ID:9488147
'Diabodies are dimeric antibody fragments held together by associated heavy and light chain variable domains present on different polypeptide chains. To improve their stability we have introduced cysteine residues into the V-domains to promote the disulphide crosslinking of the dimer. A crosslinked bivalent diabody against carcinoembryonic antigen (CEA) and a ... More
High-level expression of recombinant Aplysia ADP-ribosyl cyclase in offhia pastoris by fermentation.
Authors:Munshi C, Lee HC
Journal:Protein Expr Purif
PubMed ID:9325145
'Cyclic ADP-ribose (cADPR), a Ca2+ mobilizing cyclic nucleotide derived from NAD+, is rapidly emerging as an endogenous modulator of Ca2(+)- induced Ca2+ release mechanisms in various cellular systems. ADP ribosyl cyclase, first isolated from the marine invertebrate Aplysia californica, cyclizes NAD+ to cADPR. In this study we have utilized the ... More