Zero Blunt™ TOPO PCR Cloning Kit for Subcloning
Invitrogen™

Zero Blunt™ TOPO PCR Cloning Kit for Subcloning

Das Zero Blunt™ TOPO™ PCR-Klonierungs-Kit für das Subklonieren kombiniert die einzigartige Zero Background™ Technologie mit dem pCR™ Blunt II-TOPO™ VektorWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
K283020
auch als K2830-20 bezeichnet
25 Reaktionen
Katalognummer K283020
auch als K2830-20 bezeichnet
Preis (EUR)
956,00
Each
Menge:
25 Reaktionen
Preis (EUR)
956,00
Each
Das Zero Blunt™ TOPO™ PCR-Klonierungs-Kit für das Subklonieren kombiniert die einzigartige Zero Background™ Technologie mit dem pCR™ Blunt II-TOPO™ Vektor (Abbildung 7), um einfaches, hocheffizientes Klonen von stumpfendigen PCR-Produkten zu ermöglichen.
• Einzigartige Technologie zur Minimierung von Hintergrundsignalen
• Fordern Sie Ihren Klon an:—95 % Effizienz
• Mehrere Primerbindungsstellen (T7, T3, M13F, M13R) machen die Sequenzanalyse oder PCR einfach und bequem
• Kanamycin und Zeocin Resistenzgene für Ihre individuelle Auswahl
• Praktische, validierte Restriktionsstellen in MCS für weiteres Subklonieren
• Enthält Machl™ T1R-kompetente Zellen für schnelles MiniPrep und verkürzt die Klonierungszeit.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Bakterien- oder HefenstammMach1™
KlonierungsmethodeBlunt TOPO™
Zur Verwendung mit (Anwendung)Chromatin-Biologie
ProduktlinieOne Shot
ProdukttypPCR-Klonierungskit
Menge25 Reaktionen
VektorBlunt DNA-Klonierungsvektoren
FormatKit
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Box 1:
• Linearisiertes und Topoisomerase I-aktiviertes pCR™ Blunt II-TOPO™ Vektor
• Salzlösung
• dNTPs
• Kontroll-Template
• M13-Vorwärts- und Rückwärtsprimer
• Steriles Wasser

Bei -5 bis -30 °C lagern.
Alle Reagenzien sind bei ordnungsgemäßer Lagerung 6 Monate stabil.

Box 2:
• One Shot™ chemisch kompetente oder Electrocomp™ E. coli
• S.O.C.-Medium
• Superhelikales pUC19-Kontrollplasmid

Bei -68 bis -85 °C lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What is the best molar ratio of PCR product:vector to use for TOPO TA cloning? Is there an equation to calculate the quantity to use?

We suggest starting with a molar ratio of 1:1 (insert:vector), with a range of 0.5:1 to 2:1. The quantity used in a TOPO cloning reaction is typically 5-10 ng of a 2 kb PCR product.

Equation:

length of insert (bp)/length of vector (bp) x ng of vector = ng of insert needed for 1:1 (insert:vector ratio)

What is the best ratio of insert:vector to use for cloning? Is there an equation to calculate this?

The optimal ratio is 1:1 insert to vector. Optimization can be done using a ratio of 0.5-2 molecules of insert for every molecule of the vector.

Equation:

length of insert (bp)/length of vector (bp) x ng of vector = ng of insert needed for 1:1 insert:vector ratio

I'm seeing a lot of vector-only colonies when I try to perform a negative control reaction using vector only (no insert) for a TOPO reaction. Is my TOPO vector re-ligating?

Using the vector only for transformation is not a recommended negative control. The process of TOPO-adaptation is not a 100% process, therefore, there will be “vector only” present in your mix, and colonies will be obtained.

I'm trying to clone in my phosphorylated PCR product into a TOPO vector, and I'm getting no colonies. However, when I clone the same product into a TA vector, everything works perfectly. Why is this?

Phosphorylated products can be TA cloned but not TOPO cloned. This is because the necessary phosphate group is contained within the topoisomerase-DNA intermediate complex of the vector. TOPO vectors have a 3' phosphate to which topoisomerase is covalently bound and a 5' phosphate. Non-TOPO linear vectors (TA and Blunt) have a 3' OH and a 5' phosphate. Phosphorylated products should be phosphatased (CIP) before TOPO cloning.

I'm able to get a lot of colonies, however, none contain my insert of interest. What should I do?

You may be cloning in an artifact. TA and TOPO Cloning are very efficient for small fragments (< 100 bp) present in certain PCR reactions. Gel-purify your PCR product using either a silica-based DNA purification system or electroelution. Be sure that all solutions are free of nucleases (avoid communal ethidium bromide baths, for example.)