Expressway™ Mini Cell-Free Expression System
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Expressway™ Mini Cell-Free Expression System

El sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free utiliza una eficaz reacción de transcripción y traducción acoplada para producir proteína recombinanteMás información
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Número de catálogoCantidad
K9901001 kit
Número de catálogo K990100
Precio (MXN)
-
Cantidad:
1 kit
Pedido a granel o personalizado
El sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free utiliza una eficaz reacción de transcripción y traducción acoplada para producir proteína recombinante activa. Este sistema elimina los lentos pasos de producción de proteínas basadas en células, incluida la transformación, el cultivo celular y la optimización de la expresión. En solo dos horas, puede producir proteínas adecuadas para una serie de aplicaciones y estudios funcionales posteriores. El sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free ofrece flexibilidad en el diseño de experimentos, lo que le permite:
• Sintetizar proteínas a partir de muestras plásmidas circulares y lineales (p. ej., productos de PCR)
• Realizar síntesis de proteínas de alto rendimiento
• Expresar los genes tóxicos a sistemas in vivo

Cómo funciona:
El sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free incluye todos los componentes que necesita para una producción óptima de proteínas sin células. El kit incluye un extracto de E. coli que contiene la maquinaria celular necesaria para llevar a cabo los procedimientos de transcripción y traducción. También incorpora un tampón de reacción de IVPS (síntesis de proteínas in vitro) y un módulo de aminoácidos para proporcionar los aminoácidos necesarios, así como un sistema de regeneración de ATP. Solo tiene que mezclar el tampón de reacción, la mezcla de aminoácidos, la metionina (etiquetada o sin etiquetar), la mezcla de enzimas T7 y su muestra de ADN (que contiene un promotor T7) con el extracto de E. coli. A medida que se transcribe la muestra de ADN, el extremo 5’ del ARNm está unido por ribosomas y pasa por la traslación, ya que el extremo 3’ de la muestra aún se está transcribiendo (Figura 1).


Proteína funcional simplificada:

El sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free se ha optimizado para obtener una alta producción de proteína funcional de longitud completa a partir de lisados celulares de E. coli (Figura 2). Se suministra con el sistema una exclusiva formulación de tampón de alimentación para aumentar la producción de proteínas.


Contenido y almacenamiento:
El sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free está diseñado para realizar veinte reacciones de 50 µl o una reacción de 1 ml. Este sistema incluye extracto de IVPS E.coli, tampón de reacción de IVPS, tampón de alimentación, mezcla de 19 aminoácidos, metionina, agua sin ADNasa/ARNasa, ARNasa, mezcla de enzimas T7, tubos de reacción de 2 ml y un vector de control de expresión positivo. A continuación se enumeran los vectores sugeridos para su uso con el sistema de expresión Expressway™ Mini Cell-Free. Almacenar los vectores a -20 °C el resto de componentes del kit a -80 °C.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Tipo de proteína expresadaProteína soluble en agua
Mecanismo de expresiónExpresión sin células
Sistema de expresiónSin células
Tipo de productoSistema de expresión sin células
Cantidad1 kit
Línea de productosExpressway
PromotorT7
Unit SizeEach

Preguntas frecuentes

I accidentally stored my E. coli slyD-Extract, E. coli Reaction Buffer (-A.A.), and 2X feed buffer at room temperature. Can I still use them?

Unfortunately, this may result in a loss of activity.

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I've run out of the T7 RNA polymerase for my cell-free expression. What do you suggest I use?

We would recommend using T7 RNA polymerase (Cat. No. 18033019, 50 U/µL). Use 1-1.5 µL in a 50 µL reaction system.

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I'm getting smearing after running my cell-free expression reaction on a gel.. What could be the cause of this?

Smearing may occur if samples for the following reasons:

- Samples were not precipitated with acetone: precipitate proteins with acetone to remove background smearing.
- Too much protein was loaded: reduce the amount used.
- The gel itself was not clean: rinse the gel briefly before exposing to film.
- Ethanol was present in the protein synthesis reaction: make sure that any residual ethanol is removed during DNA purification.
- Check the date of your pre-cast gels: do not use gels after the expiration date.

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I'm seeing a ladder of small-sized products after running my reaction on a gel when using the Expressway system. Why is this?

There may be several reasons for why this is occurring. The most common are: proteolysis, degradation of DNA and/or RNA templates (truncated templates will generate truncated protein products), internal initiation (if there are many methionines and internal RBS-like sequences in the gene, the ribosome may initiate translation from the wrong methionine), premature termination, translational pausing, frequent rare codon usage, complicated secondary structure of RNA, and others. This can also happen if proteins are denatured for too long, or not enough SDS was added to the 1X SDS-PAGE sample buffer.

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With a cell-free expression system, I'm getting good protein yield, but it has low biological activity. What can I do?

- Your protein may not be folding properly: try to reduce the incubation temperature to as low as 25 degrees C during synthesis.
- You may require post-translational modification of your protein: the Expressway system will not introduce post-translational modifications to the recombinant protein.
- Your synthetic protein may require co-factors for complete activity: try adding required co-factors to the protein synthesis reaction.

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Citations & References (2)

Citations & References
Abstract
Fox-2 splicing factor binds to a conserved intron motif to promote inclusion of protein 4.1R alternative exon 16.
Authors:Ponthier JL, Schluepen C, Chen W, Lersch RA, Gee SL, Hou VC, Lo AJ, Short SA, Chasis JA, Winkelmann JC, Conboy JG,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:16537540
'Activation of protein 4.1R exon 16 (E16) inclusion during erythropoiesis represents a physiologically important splicing switch that increases 4.1R affinity for spectrin and actin. Previous studies showed that negative regulation of E16 splicing is mediated by the binding of heterogeneous nuclear ribonucleoprotein (hnRNP) A/B proteins to silencer elements in the ... More
P-Rex1 links mammalian target of rapamycin signaling to Rac activation and cell migration.
Authors:Hernández-Negrete I, Carretero-Ortega J, Rosenfeldt H, Hernández-García R, Calderón-Salinas JV, Reyes-Cruz G, Gutkind JS, Vázquez-Prado J,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:17565979
'Polarized cell migration results from the transduction of extra-cellular cues promoting the activation of Rho GTPases with the intervention of multidomain proteins, including guanine exchange factors. P-Rex1 and P-Rex2 are Rac GEFs connecting Gbetagamma and phosphatidylinositol 3-kinase signaling to Rac activation. Their complex architecture suggests their regulation by protein-protein interactions. ... More