pLenti6.2-GW/EmGFP Expression Control Vector
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Invitrogen™

pLenti6.2-GW/EmGFP Expression Control Vector

Vivid Colors™ pLenti6.2-GW⁄EmGFP発現コントロールベクターは、Emerald Green Fluorescent Protein(EmGFP)を含むViraPower™ポジティブコントロールレンチウイルスベクターです。この製品は詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
V36920
または、製品番号V369-20
各1個
製品番号(カタログ番号) V36920
または、製品番号V369-20
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196,400
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Ends: 27-Mar-2026
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各1個
Vivid Colors™ pLenti6.2-GW⁄EmGFP発現コントロールベクターは、Emerald Green Fluorescent Protein(EmGFP)を含むViraPower™ポジティブコントロールレンチウイルスベクターです。この製品は、EmGFP蛍光を検出できるポジティブコントロールとしてViraPower™ Lentiviral Expression Systemと一緒に使用し、レンチウイルスストックを発現するEmGFPを生成する力価コントロールとして使用し、その後、哺乳類細胞の分裂および非分裂の両方における形質導入で形質導入コントロールとして使用するように設計されています。このベクターには、EmGFPの構成的発現を促進するCMVプロモーターと、ブラストサイジン安定選択マーカーの長期的で持続的な発現を促進するPGKプロモーターがあります。これはクローニングベクターではありません。

利点
• ウイルス形質導入効率の最適化
• 293FTトランスフェクションの最適化
• EmGFPを使用した機能しているウイルスの2日間の力価

主な特長
• EmGFPの高レベルでの発現をコントロールするためのヒトサイトメガロウイルス(CMV)即時早期のプロモーター
• ブラストサイジン選択マーカーの発現用のPKGプロモーター

キットには次のものが含まれています。
pLenti6.2-GW⁄ベクター

関連するSKU
• 293FT細胞株(R70007、R70007)
• ViraPower™ Lentiviral Support Kit(K4970-00)
• ViraPower™ Lentiviral Packaging Mix(K4975-00)
• Lipofectamine™ 2000(11668-019、11668-027)

研究用にのみ使用できます。あらゆる治療もしくは診断用には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
構成または誘導システム構造的
供給タイプレンチウイルス
使用対象(アプリケーション)レポーターアッセイ、ウイルス発現
製品タイプレンチウイルス発現ベクター
数量各1個
レポーター遺伝子GFP(EmGFP)
選択剤(真核生物)ブラストサイジン
選択マーカープロモーターPGKプロモーター
ベクターpLenti
クローニング法Gateway™
製品ラインGateway、ViraPower、Vivid Colors, ViraPower, Vivid Colors
プロモーターCMV
タンパク質タグタグなし
Unit Size1 each
組成および保存条件
pLenti6.2-GW⁄EmGFPベクター:20 µgのコントロールベクターは、40 µLの0.5 µg⁄µL溶液として、10 mM Tris–HCl、1 mM EDTA、pH 8.0で提供されます。–20℃にて保存してください。

よくあるご質問(FAQ)

I used your pLenti6.2-GW/EmGFP Control Vector and got poor expression of EmGFP after stable transduction into my cell line. What should I do?

This can happen due to excess blasticidin used during selection. Determine the antibiotic sensitivity of your cell line by performing a kill curve. Use the minimum antibiotic concentration required to kill your untransduced cell line.

I used your pLenti6.2-GW/EmGFP Control Vector and got no expression of EmGFP after stable transduction into my cell line. Can you please help?

Promoter silencing or incorrect filter used/detection parameters for flow cytometer are incorrect could lead to no epxression of EmGFP after stable transduction. Screen for multiple antibiotic-resistant clones and select the one with the highest expression levels. Make sure the correct filter is used as well as the FITC detection parameters.

I used your pLenti6.2-GW/EmGFP Control Vector and got poor expression of EmGFP after transient transduction into my cell line. Can you please help?

Poor expression could result from low transduction efficiency, too low of a MOI, or cells harvested too soon after tranduction. Ensure that cells are tranduced in the presence of Polybrene reagent. Check the MOI and/or use a higher MOI, and do not harvest cells until 48-72 hrs post-tranduction.

I used your pLenti6.2-GW/EmGFP Control Vector and got no EmGFP-positive cells after titering. What could have happened?

Here are some possible causes and solutions:

- Incorrect filter or incorrect detection parameters for flow cytommetry; make sure you are using a FITC or Omega XF100 filter set on yoru inverted fluorescence microscope or the FITC detection parameters on your flow cytometer.
- Viral stock stored incorrectly; aliquot and store at -80 degrees C, do not freeze/thaw more than 3 times.
- Polybrene reagent not included during transduction; transduce pLenti6.2-GW/EmGFP into cells in the presence of Polybrene reagent
- Too soon to see EmGFP expression; wait 4 days post-tranduction

How large of a PCR product can I recombine with a pDONR vector via BP cloning? Does the same apply for TOPO-adapted Entry vectors?

There is no theoretical limit to insert size for a BP reaction with a pDONR vector. Maximum size tested in-house is 12 kb. TOPO vectors are more sensitive to insert size and 3-5 kb is the upper limit for decent cloning efficiency.