NuPAGE™ 3 bis 8 %, Tris-Acetat, 1,0 mm, Midi-Protein-Gel
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NuPAGE™ 3 bis 8 %, Tris-Acetat, 1,0 mm, Midi-Protein-Gel
Zitierungen und Referenzen (4)
Invitrogen™

NuPAGE™ 3 bis 8 %, Tris-Acetat, 1,0 mm, Midi-Protein-Gel

Invitrogen NuPAGE Tris-Acetat-Protein-Gele bieten eine hervorragende Trennung von Proteinen mit hoher Molekülmasse. Es sind leistungsstarke Polyacrylamid-Gele, die die Denaturierung oder die nativen Bedingungen des traditionellen Laemmli-Systems simulieren.
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KatalognummerWells
WG1601A12 + 2-Well, mit Adaptern
WG1601BOX12 +2 Well
WG1602BOX20-Well
WG1602A20-Well, mit Adaptern
WG1603BOX26-Well
WG1603A26 Wells, mit Adaptern
Katalognummer WG1601A
Preis (EUR)
307,00
10 gels (1 box)
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Wells:
12 + 2-Well, mit Adaptern
Preis (EUR)
307,00
10 gels (1 box)
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Invitrogen NuPAGE Tris-Acetat-Protein-Gele bieten eine hervorragende Trennung von Proteinen mit hoher Molekülmasse. Es sind leistungsstarke Polyacrylamid-Gele, die die Denaturierung oder die nativen Bedingungen des traditionellen Laemmli-Systems simulieren. Die einzigartige Pufferformulierung sorgt während der Elektrophorese für einen niedrigen pH-Wert, was im Vergleich zu herkömmlichen Tris-Glycin SDS-PAGE-Gelen zu einer besseren Auflösung von Proteinen mit höherer Molekülmasse führt.

Merkmale der NuPAGE Bis-Acetat-Gele:
• Hohe Auflösung: Die Gele bieten eine optimale Trennung von Proteinen mit hoher Molekülmasse
• Optimalere Proteinintegrität: Der Probenvorbereitungsprozess wurde optimiert, um Proteine zu konservieren
• Längere Haltbarkeit: Die Gele können mindestens acht Monate lang gelagert werden

Auswahl des richtigen NuPAGE Tris-Acetat-Gels für Ihre Proteintrennung
Erzielen Sie die optimale Trennung Ihrer Proteine mit hoher Molekülmasse durch Auswahl der richtigen Kombination aus Gel und Laufpuffer. NuPAGE Tris-Acetat Proteingele werden in einer Polyacrylamid-Konzentration von 7 % und einem Gradienten von 3 – 8 % geliefert. Gele sind in zwei Größen erhältlich: Mini (8 cm x 8 cm) oder Midi (8,7 cm x 13,3 cm) und entweder 1,0 mm (Mini- und Midi-Gele) oder 1,5 mm (nur Mini-Gel-Format) in Dicke. NuPAGE Tris-Acetat-Gele gibt es zudem in verschiedenen Well-Formaten. Mini-Gele können mit unserer XCell SureLock Mini-Cell (EI0001) oder mit dem Mini-Gel-Tank (A25977) ausgeführt werden. Midi-Gele können mit unserer XCell4 SureLock Midi-Cell (WR0100) oder bequem mit der Bio-Rad Criterion™ Zelle mit unseren Adaptern (WA0999) ausgeführt werden.

Verarbeiten Sie Ihre Proteine in nativer oder denaturierter Form
NuPAGE Tris-Acetat-Proteingele enthalten kein SDS und können zur Trennung von Proteinen in nativer oder denaturierter Form verwendet werden. Für denaturierte Proteine empfehlen wir NuPAGE LDS-Probenpuffer (NP0007) und NuPAGE Tris-Acetat-SDS-Laufpuffer (LA0041). Für native Proteine empfehlen wir Novex nativen Tris-Glycin-Probenpuffer (LC2673) und Novex nativen Tris-Glycin-Laufpuffer (LC26720).

Für den Transfer von Proteinen auf eine Membran empfehlen wir die Verwendung des NuPAGE Transferpuffers (NP00061) für den herkömmlichen Nasstransfer mit dem XCell II Blot-Modul (EI9051) oder dem Mini Blot-Modul (B1000). Alternativ kann der schnelle halbtrockene Transfer mit dem Invitrogen Power Blotter oder der schnelle trockene Transfer mit dem iBlot 2 Gel-Transfergerät (IB210010) durchgeführt werden.

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Specifications
AdapterEnthält Adapter
Gel Thickness1,0 mm
Länge (metrisch)13 cm
TrennmodusMolekulargewicht
ProduktlinieNuPAGE
Menge10 Gele/Karton
Empfohlene AnwendungenDenaturierend, nativ
ProbenladevolumenBis zu 45 µl + 15 µl
Haltbarkeit8 Monate
VersandbedingungNasseis
LagerungsbedingungenBei 2 bis 8 °C lagern. Nicht einfrieren.
Breite (metrisch)8 cm
Zur Verwendung mit (Geräte)Bio-Rad Criterion Gelkammer
Gelanteil (%)3 bis 8%
GelgrößeMidi
GeltypTris-Acetat
Trennbereich36 bis 500 kDa
TrennverfahrenDenaturierend, nativ
Wells12 + 2-Well, mit Adaptern
Unit Size10 gels (1 box)
Inhalt und Lagerung
Jede Packung enthält 10 Gele. Im Kühlschrank lagern (2 – 8 °C). Nicht einfrieren. Die Haltbarkeit beträgt 6 Monate.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Can I prepare my protein sample with the reducing agent and store it for future use?

DTT is not stable, so it must be added and the reduction performed just prior to loading your samples.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Gel 1D Electrophoresis Support Center.

My LDS or SDS sample buffer precipitates when stored at 4 degrees C. Can I warm it up? Can I store it at room temperature?

Precipitation of the LDS or SDS at 4 degrees C is normal. Bring the buffer to room temperature and mix until the LDS/SDS goes into solution. If you do not want to wait for it to dissolve, you can store the sample buffer at room temperature.

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How are Bolt gels different than NuPAGE gels?

While they are both Bis-Tris based gels, the chemistries are very different since Bolt gels are optimized for western blotting. Another key difference is the wedge well design of the Bolt gels, which allows larger sample volumes to be loaded.

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Do I need to add water or buffer to the Displacement Dam when I run one or two gels in the XCell4 SureLock Midi-Cell?

The XCell4 Displacement Dam is used when fewer than 3 gels are run in the XCell4 SureLock Midi-Cell. The Displacement Dam is placed in the lower buffer chamber instead of a second buffer core. Do not add any buffer or water to the Displacement Dam. However, if water or buffer is accidentally added to the Displacement Dam, it does not affect the electrophoresis run.

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What are the maximum load volumes for the NuPAGE Midi Gels?

Recommended maximum load volumes:
12 + 2-well gel: 45 µL in sample well, 15 µL in marker well
20-well gel: 25 µL
26-well gel: 15 µL

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Zitierungen und Referenzen (4)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
The cytoplasmic tail of L-selectin interacts with members of the Ezrin-Radixin-Moesin (ERM) family of proteins: cell activation-dependent binding of Moesin but not Ezrin.
Authors:Ivetic A, Deka J, Ridley A, Ager A,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:11706008
L-selectin regulates the recruitment of naive lymphocytes from the bloodstream to secondary lymphoid organs, mediating their initial capture and subsequent rolling along high endothelial cell surface-expressed ligands in peripheral lymph nodes. In vivo, distribution of L-selectin and cell surface levels determine the tethering efficiency and rolling velocity of leukocytes, respectively. ... More
The 'involution' of mannose-binding lectin.
Authors:Seyfarth J, Garred P, Madsen HO,
Journal:Hum Mol Genet
PubMed ID:16115813
Mannose-binding lectin (MBL) acts as a serum opsonin in innate immune defense and induces complement activation by the lectin pathway. In humans, low levels of functional serum MBL are caused by the dominant action of three single nucleotide substitutions in exon 1 that disrupt the glycine-rich backbone structure of the ... More
Tethering sigma70 to RNA polymerase reveals high in vivo activity of sigma factors and sigma70-dependent pausing at promoter-distal locations.
Authors:Mooney RA, Landick R,
Journal:Genes Dev
PubMed ID:14630944
Bacterial sigma factors compete for binding to RNA polymerase (RNAP) to control promoter selection, and in some cases interact with RNAP to regulate at least the early stages of transcript elongation. However, the effective concentration of sigmas in vivo, and the extent to which sigma can regulate transcript elongation generally, ... More
Complement factor H is a serum-binding protein for adrenomedullin, and the resulting complex modulates the bioactivities of both partners.
Authors:Pio R, Martinez A, Unsworth EJ, Kowalak JA, Bengoechea JA, Zipfel PF, Elsasser TH, Cuttitta F,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:11116141
Adrenomedullin (AM) is an important regulatory peptide involved in both physiological and pathological states. We have previously demonstrated the existence of a specific AM-binding protein (AMBP-1) in human plasma. In the present study, we developed a nonradioactive ligand blotting assay, which, together with high pressure liquid chromatography/SDS-polyacrylamide gel electrophoresis purification ... More