ARNip de control negativo n.° 1 Silencer™ Select
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ARNip de control negativo n.° 1 Silencer™ Select

El ARNip de control negativo n.º 1 Silencer™ Select es un ARN de interferencia pequeño (ARNip) de control negativo noMás información
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Número de catálogoCantidad
43908435 nmol
Número de catálogo 4390843
Precio (USD)
427,68
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Cantidad:
5 nmol
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El ARNip de control negativo n.º 1 Silencer™ Select es un ARN de interferencia pequeño (ARNip) de control negativo no específico con las mismas modificaciones químicas para lograr una mayor eficacia como en otros ARNip Silencer™ Select. Propiedades del ARNip de control Silencer™ Select:

• Controles de ARNip validados para optimizar los experimentos de ARNip
• Funcionalidad de control positivo de GAPDH probada en varias líneas celulares comunes
• Demostración funcional de que los controles negativos tienen efectos mínimos en la proliferación y viabilidad celulares
• Inclusión de modificaciones de Silencer™ Select para mejorar la especificidad
• Para su uso en células humanas, de ratón y de rata

¿Qué son los ARNip Silencer™ Select?
Los ARNip Silencer™Select son nuestros ARNip de nueva generación. Estos ARNip incluyen las mejoras más recientes en diseño de ARNip, algoritmos de predicción de efectos inespecíficos y modificaciones químicas para otorgar a los ARNip una eficacia, una potencia y una especificidad máximas. El resultado es una reducción de los experimentos fallidos debido a un escaso silenciamiento, así como un aumento de la uniformidad de los datos fenotípicos.

ARNip de control negativo Silencer™ Select
Los ARNip de control negativo (ARNip con secuencias que no son específicos para ningún producto génico) son esenciales para la determinación de los efectos del suministro de ARNip y para la creación de unos valores iniciales de comparación de muestras tratadas con ARNip. Hemos diseñado y probado exhaustivamente dos ARNip de control negativo Silencer™ Select. Estos ARNip incluyen las mismas modificaciones para reducir los efectos inespecíficos que se detectan en otros ARNip Silencer™ Select y no poseen ninguna similitud de secuencia significativa con secuencias genéticas de ratón, de rata o humanas. Estos ARNip de control negativo se han probado mediante análisis de micromatrices y han demostrado tener efectos mínimos sobre la expresión génica. Además, ambos controles se han probado en ensayos multiparamétricos en células aisladas y se ha demostrado que no tienen ningún efecto significativo en la proliferación celular, la viabilidad o la morfología de las líneas celulares estudiadas.

Control de calidad
Sintetizamos y purificamos cada ARNip Silencer™ Select en instalaciones de vanguardia para satisfacer los más altos estándares de calidad. Como parte de nuestros rigurosos procedimientos de control de calidad, cada oligonucleótido de ARN se somete a análisis mediante espectrometría de masas MALDI-TOF y se emplea un HPLC analítico para controlar la pureza. Para proporcionar la máxima calidad, también evaluamos cada ARNip recocido mediante electroforesis de gel para confirmar que las cadenas se recuecen correctamente. El resultado es un ARNip de máxima calidad que está purificado y listo para su uso.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Para utilizar con (aplicación)Transfección, ARNi
Etiqueta o tinteno conjugado
Línea de productosSilencer, Silencer Select, Ambion
Tipo de productoARNip
PurezaHPLC
Cantidad5 nmol
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Tipo de controlControl negativo
RNAi TypeARNip
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Contiene ARNip seco (5 nmol) y agua sin nucleasas (1,75 ml), enviado a temperatura ambiente. Tras su recepción, almacenar el ARNip en un congelador sin escarcha a -20°C o inferior.

Preguntas frecuentes

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

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Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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