Éster NHS Alexa Fluor™ 647 (succinimidilo éster)
Éster NHS Alexa Fluor™ 647 (succinimidilo éster)
Invitrogen™

Éster NHS Alexa Fluor™ 647 (succinimidilo éster)

Alexa Fluor™ 647 es un tinte de rojo lejano brillante y fotoestable con una excitación adaptada idealmente para la líneaMás información
Have Questions?
Cambiar vistabuttonViewtableView
Número de catálogoCantidad
A3756625 mg
A375733 x 100 μg
A200061 mg
A201065 mg
Número de catálogo A37566
Precio (USD)
-
Cantidad:
25 mg
Alexa Fluor™ 647 es un tinte de rojo lejano brillante y fotoestable con una excitación adaptada idealmente para la línea de láser de 633 nm. El tinte Alexa Fluor™ 647, empleado para la generación estable de señales para la obtención de imágenes en citometría de flujo, es soluble en agua e insensible al pH entre pH 4 y pH 10. La fluorescencia de este tinte Alexa Fluor™ de larga longitud de onda no es visible al ojo humano, pero se detecta fácilmente con la mayoría de los sistemas de adquisición de imágenes. Además de las formulaciones de colorante reactivo, ofrecemos el colorante Alexa Fluor™ 647 conjugado con una serie de anticuerpos, péptidos, proteínas, trazadores y sustratos de amplificación optimizados para la detección y el etiquetado celular (más información).

El éster de NHS (o éster de succinimidilo) de Alexa Fluor™ 647 es la herramienta más empleada para conjugar este colorante con una proteína o anticuerpo. Los ésteres NHS se pueden usar para etiquetar aminas primarias (R-NH2) de proteínas, oligonucleótidos modificados por aminas y otras moléculas que contengan aminas. El conjugado Alexa Fluor™ obtenido mostrará una fluorescencia más brillante y mayor fotoestabilidad que los conjugados de otros fluoróforos espectralmente similares.

Información detallada sobre este éster de NHS AlexaFluor™:

Etiqueta de fluoróforo: Tinte Alexa Fluor™ 647
Grupo reactivo: Éster NHS
Reactividad: Aminas primarias en proteínas y ligandos, oligonucleótidos modificados con aminas
Ex/Em del conjugado: 651/672 nm
Coeficiente de extinción: 270.000 cm-1 m-1
Colorantes similares espectrales: Cy5™
Peso molecular: ∼1250

Reacción de conjugación típica
Puede conjugar reactivos de aminas con prácticamente cualquier proteína o péptido (el protocolo proporcionado está optimizado para anticuerpos IgG). Puede ampliar la reacción para cualquier cantidad de proteína, pero la concentración de la proteína debe ser al menos de 2 mg/ml para obtener unos resultados óptimos. Recomendamos probar tres grados de etiquetado distintos y emplear tres proporciones molares diferentes del reactivo en la proteína.

El éster NHS Alexa Fluor™ suele disolverse en dimetilformamida (DMF) anhidra o dimetilsulfóxido (DMSO) (D12345) de gran calidad, y la reacción se lleva a cabo en un tampón de bicarbonato sódico de 0,1–0,2 M, pH 8,3, a temperatura ambiente durante una hora. Dado que la pKa de la amina terminal es inferior a la del grupo amino épsilon de lisina, puede realizar un etiquetado más selectivo de la terminal amina mediante un tampón más cercano al pH neutro.

Purificación del conjugado
Los anticuerpos etiquetados se separan normalmente del tinte Alexa Fluor™ mediante una columna de filtración en gel, como Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o equivalentes. Para cantidades mucho mayores o menores de proteínas, seleccione un medio de filtración en gel con un corte de peso molecular adecuado o purifique por diálisis. Ofrecemos varios kits de purificación optimizados para diferentes cantidades de conjugado de anticuerpos:
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 0,5-1 mg (A33086)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 20-50 μg (A33087)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 50-100 μg (A33088)

Más información sobre el etiquetado de proteínas y anticuerpos
Ofrecemos una amplia selección de kits de etiquetado de anticuerpos y proteínas Molecular Probes™ que se ajustan a su material de partida y a su configuración experimental. Consulte nuestros kits de etiquetado de anticuerpos o utilice nuestra herramienta de selección química de etiquetado para otras opciones. Para obtener más información acerca de nuestros kits de marcado, lea la sección 1.2 sobrekits para marcado de proteínas y ácidos nucleicos del manual de Molecular Probes™.

Creamos conjugados personalizados
Si no encuentra lo que busca en nuestro catálogo en línea, le prepararemos el conjugado de anticuerpos o proteínas que desee. Nuestro servicio de conjugación personalizada es eficiente y confidencial, y garantizamos la calidad de nuestro trabajo. Contamos con la certificación ISO 9001:2000.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Emisión672 nm
Excitación651 nm
Tipo de productoTinte
Cantidad25 mg
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Línea de productosAlexa Fluor
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
1 tubo
Almacenar desecado a -20 °C tras su recepción

Preguntas frecuentes

I am labeling a protein with Alexa Fluor 488 SDP ester. The manual recommends using a sodium bicarbonate buffer at pH 8.3. Can I use a different buffer instead?

Yes. The important thing is to use a buffered solution with a pH between 8.0 and 8.5. Do not use Tris buffer, which has amine groups. Most other buffers will work fine in that pH range. This is also true for other amine-reactive dyes, such as succinimidyl (NHS) esters or TFP esters.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I am not going to use all of my Alexa Fluor succinimidyl ester reactive dye. Can I just make it up in DMSO and store aliquots at -20 degrees C?

This is not recommended. Any trace amounts of water in the DMSO can promote spontaneous hydrolysis over time. Even if using anhydrous DMSO, DMSO is hygroscopic; it readily absorbs moisture from the atmosphere over time. A better alternative is to dissolve the reactive dye in a volatile solvent, make smaller aliquots and then evaporate off the solvent using a vacuum pump. The smaller aliquots of solid reactive dye should then be stored frozen, desiccated and protected from light. Contact Technical Support by sending an email to techsupport@thermofisher.com for the recommended volatile solvent.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Citations & References (7)

Citations & References
Abstract
Periostin and CCN2 Scaffolds Promote the Wound Healing Response in the Skin of Diabetic Mice.
Authors:Elliott CG, Wang J, Walker JT, Michelsons S, Dunmore-Buyze J, Drangova M, Leask A, Hamilton DW
Journal:Tissue Eng Part A
PubMed ID:30572781
'Nonhealing skin wounds remain a significant burden on health care systems, with diabetic patients 20 times as likely to undergo a lower extremity amputation due to impaired healing. Novel treatments that suppress the proinflammatory signature and induce the proliferative and remodeling phases are needed clinically. We demonstrate that the addition ... More
Massive and parallel expression profiling using microarrayed single-cell sequencing.
Authors:Vickovic S, Ståhl PL, Salmén F, Giatrellis S, Westholm JO, Mollbrink A, Navarro JF, Custodio J, Bienko M, Sutton LA, Rosenquist R, Frisén J, Lundeberg J
Journal:Nat Commun
PubMed ID:27739429
'Single-cell transcriptome analysis overcomes problems inherently associated with averaging gene expression measurements in bulk analysis. However, single-cell analysis is currently challenging in terms of cost, throughput and robustness. Here, we present a method enabling massive microarray-based barcoding of expression patterns in single cells, termed MASC-seq. This technology enables both imaging ... More
A two-hybrid antibody micropattern assay reveals specific
Authors:Dirscherl C, Hein Z, Ramnarayan VR, Jacob-Dolan C, Springer S
Journal:Elife
PubMed ID:30180933
We demonstrate a two-hybrid assay based on antibody micropatterns to study protein-protein interactions at the cell surface of major histocompatibility complex class I (MHC I) proteins. Anti-tag and conformation-specific antibodies are used for individual capture of specific forms of MHC I proteins that allow for location- and conformation-specific analysis by ... More
N-Linked Glycosylation Regulates CD22 Organization and Function.
Authors:Wasim L, Buhari FHM, Yoganathan M, Sicard T, Ereño-Orbea J, Julien JP, Treanor B
Journal:Front Immunol
PubMed ID:31019513
The organization and clustering of cell surface proteins plays a critical role in controlling receptor signaling; however, the biophysical mechanisms regulating these parameters are not well understood. Elucidating these mechanisms is highly significant to our understanding of immune function in health and disease, given the importance of B cell receptor ... More
Misfolded GPI-anchored proteins are escorted through the secretory pathway by ER-derived factors.
Authors:Zavodszky E, Hegde RS
Journal:Elife
PubMed ID:31094677
We have used misfolded prion protein (PrP*) as a model to investigate how mammalian cells recognize and degrade misfolded GPI-anchored proteins. While most misfolded membrane proteins are degraded by proteasomes, misfolded GPI-anchored proteins are primarily degraded in lysosomes. Quantitative flow cytometry analysis showed that at least 85% of PrP* molecules ... More