DNA polimerasa rica en GC AccuPrime™
DNA polimerasa rica en GC AccuPrime™
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DNA polimerasa rica en GC AccuPrime™

La ADN polimerasa para regiones ricas en GC AccuPrime™ está diseñada para proporcionar una amplificación de alto rendimiento y altaMás información
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Número de catálogoN.º de reacciones
123370241000 reacciones
12337016200 reacciones
Número de catálogo 12337024
Precio (CLP)
-
N.º de reacciones:
1000 reacciones
Pedido a granel o personalizado
La ADN polimerasa para regiones ricas en GC AccuPrime™ está diseñada para proporcionar una amplificación de alto rendimiento y alta especificidad de moldes difíciles de amplificar, como aquellos que presentan un contenido de >65 % en GC. El kit ofrece una selección de tampones para amplificar objetivos de ADN genómico (tampón A) u objetivos basados en ADNc, plásmidos y lambda no ricos en GC (tampón B). Ventajas del uso de la ADN polimerasa rica en GC AccuPrime™:

• Producción: alto rendimiento para objetivos de hasta 5 kb de longitud
• Especificidad: proteínas accesorias AccuPrime™ para una mayor especificidad de la PCR
• Sensibilidad: sensibilidad hasta 5 ng de ADN de molde

Amplificaciones sólidas y específicas
Los tampones AccuPrime™ contienen proteínas termoestables que mejoran la hibridación entre el molde y el cebador durante la PCR, lo que aumenta la especificidad de la reacción. La misma polimerasa, de la arquebacteria Pyrolobus fumarius, tiene una procesividad cinco veces mejor que la de la ADN polimerasa Taq y permanece activa incluso después de 4 horas a 95 °C.

Definición de la unidad
Una unidad de ADN polimerasa rica en GC AccuPrime™ es la cantidad de enzima necesaria para incorporar 10 nmoles de dNTP en material insoluble en ácido en 30 min a 74 °C.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Fidelidad (frente a Taq)2 X
Inicio en calienteInicio en caliente integrado
N.º de reacciones1000 reacciones
SobranteRomo
PolimerasaADN polimerasa rica en GC AccuPrime
Cantidad1000 reacciones
Formato de reacciónComponentes separados
Condiciones de envíoAprobado para su envío en hielo húmedo o seco
Tamaño (producto final)5 kb o menos
Volumen500 μl
Para utilizar con (aplicación)Hot-start PCR
GC-Rich PCR PerformanceAlto
Velocidad de reacciónEstándar
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
• 1 x 500 μl de ADN polimerasa con gran contenido de GC AccuPrime (2 U/µl)
• 1 x 5 ml del tampón A con gran contenido de GC AccuPrime 5X
• 1 x 5 ml del tampón A con gran contenido de GC AccuPrime 5X
• 1 x 1 ml de MgSO4 de 50 mm

Almacenar a -20 °C.

Preguntas frecuentes

My oligonucleotide does not appear to be the right length when I checked by gel electrophoresis. Why is this?

Oligos should be run on a polyacrylamide gel containing 7 M urea and loaded with a 50% formamide solution to avoid compressions and secondary structures. Oligos of the same length and different compositions can electrophorese differently. dC's migrate fastest, followed by dA's, dT's, and then dG's. Oligos containing N's tend to run as a blurry band and generally have a problem with secondary structure.

The primers I am using worked for PCR initially, but over time, have stopped working. What happened?

Primers should be aliquoted for single use before PCR set-up. Heat just the aliquoted primers to 94 degrees for 1 min. Quick chill the primer on ice before adding to the PCR reaction. Some primers may anneal to themselves or curl up on themselves.

I don't see a pellet in my oligo tube order. Should I ask for a replacement?

The drying method dries the primer in a thin layer along the sidewalls of the tube instead of the bottom, therefore a pellet is not always visible and should still be ready to use.

There is a ball-shaped pellet at the bottom of my oligo tube. What is this and can I still use my oligo?

If the oligo was overheated, it will appear as a “ball”-shaped pellet attached to the bottom of the tube. This should not affect the quality of the oligo, and the oligo should be readily soluble in water.

There is a green color in my lyophilized oligo. Can I still use it?

If an oligo appears green in color, this is most likely due to ink falling into the tube. The oligo should still be fully functional. The color can be removed by doing an ethanol precipitation.

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