Se dirigen y capturan específicamente moléculas de ARNm de prácticamente cualquier muestra sin procesar y eliminan la necesidad de purificar el ARN total cuando el ácido nucleico que contiene la información deseada es el ARNm.
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Los gránulos de aislamiento de ARNm con Oligo(dT)25 Dynabeads™ se dirigen y capturan específicamente moléculas de ARNm de prácticamente cualquier muestra sin procesar y eliminan la necesidad de purificar el ARN total cuando el ácido nucleico que contiene la información deseada es el ARNm. Puesto que el ARNm constituye solamente entre el 1 y el 5 % del ARN celular, el aislamiento de ARN total no es el método más eficaz para aislar el ARNm. Otras tecnologías diseñadas para purificar el ARN total producen ∼80 % de ARN ribosómico y obligan al ARNm a competir con el ARN ribosómico, el ARN de transferencia, el micro ARN, el pequeño ARN nucleolar y el pequeño ARN citoplásmico para unir las membranas. Ventajas de los gránulos con Oligo(dT)25 Dynabeads™:
• Procedimiento rápido y suave que produce ARNm puro intacto • Aislamiento de ARNm extremadamente puro: la mejor opción previa a la síntesis de ADNc • La gran sensibilidad del aislamiento de ARNm permite la síntesis de ADNc y la construcción de bibliotecas de ADNc a partir de muestras de partida ultrapequeñas (permite la construcción de bibliotecas de ADNc a partir de una única célula)
Cómo funcionan los gránulos Los gránulos recubiertos con oligo(dT)25Dynabeads™ se dirigen y capturan específicamente el transcriptoma de ARNm de una amplísima variedad de muestras de partida sin procesar. El ARN ribosómico, el ADN, las proteínas y las pequeñas moléculas de ARN (como ARN de transferencia, micro ARN y pequeños ARN nucleolares) no se unen a los gránulos y se descartan. Los gránulos solo capturan ARN poliadenilado (ARNm). El ARNm aislado es puro, lo que elimina la necesidad de sustraer el ARN ribosómico o de tratar la ADNasa tras la extracción. Este sistema sin columna garantiza la máxima recuperación del transcriptoma:
• Captura física de ARNm en gránulos magnéticos móviles • Procedimientos de manipulación magnética rápidos y suaves • No se pierde ARNm durante las rotaciones con elevada fuerza g • El ARNm no queda atrapado en las membranas de la columna durante la elución
Aplicaciones El ARNm es adecuado para todas las aplicaciones moleculares posteriores, incluidas, entre otras, la clonación de genes, la síntesis de ADNc, la construcción de bibliotecas de ADNc, el RT-PCR, el RT-PCR cuantitativo, el RPA (ensayo de protección de la ribonucleasa), la hibridación sustractiva, la extensión de cebadores, SAGE y RACE. Los gránulos de aislamiento de ARNm con Oligo(dT)25 Dynabeads™ son el método perfecto para la purificación de ARNm previa a la construcción de bibliotecas de ADNc. El uso de estos gránulos garantiza la máxima recuperación y enriquecimiento del transcriptoma. Estos gránulos capturan más transcriptoma que los métodos que integran un paso de aislamiento de ARN total previo al aislamiento de ARNm.
Versátiles opciones de elución La elución puede realizarse en cualquier nivel de volumen, de hasta 5 μl como mínimo. La elución del ARNm es opcional, ya que las reacciones enzimáticas en los procedimientos posteriores no se ven inhibidas por la presencia de Dynabeads™. Asimismo, se puede realizar la síntesis de ADNc directamente en los gránulos para crear una biblioteca de ADNc en fase sólida reutilizable.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Para utilizar con (aplicación)Extracción de ARN
FormularioMicroesferas en suspensión
Compatibilidad de alto rendimientoCompatible con alto rendimiento
Tipo de ligandoOligo-dT
Línea de productosDYNAL, Dynabeads
Tipo de productoGránulo de aislamiento de ARNm
Cantidad2 ml
Duración de almacenamiento36 meses a partir de la fecha de fabricación
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Gránulos de 2-8° C de 2 ml
Preguntas frecuentes
I am getting DNA contamination after mRNA isolation using Dynabeads magnetic beads. Why is this?
There are several reasons why DNA contamination may occur:
- Incomplete DNA shearing.
- Incomplete removal of sample lysate after the hybridization step.
- Insufficient washing and/or removal of wash buffers.
- The ratio of sample to beads was too high.
I am getting rRNA contamination after mRNA isolation using Dynabeads magnetic beads. What should I do?
Ribosomal RNA is effectively eliminated by reextracting the mRNA from the eluate. Reuse the same Dynabeads Oligo(dT)25 beads that were used for the original isolation. Wash the beads twice in Washing Buffer B. Dilute the eluted mRNA with 4 times its volume of Lysis/Binding Buffer, then add the beads. Incubate with mixing at room temperature for 3-5 minutes, then continue with the Direct mRNA Isolation Protocol.
How long can I leave the isolated mRNA on Dynabeads Oligo(dT)25 magnetic beads?
We recommend immediate use of Dynabeads magnetic beads-mRNA complex or eluted mRNA for cDNA synthesis, in RT-PCR, or for other downstream applications. If storage is needed, we recommend you elute the mRNA from the beads using 10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5) and freeze it(-80°C). It is very important that all equipment and samples are RNase free.
Can I use Dynabeads Oligo(dT)25 magnetic beads in real-time PCR?
Dynabeads magnetic beads are compatible with TaqMan real-time PCR chemistry and non-capillary real-time PRC instruments. However, Dynabeads magnetic beads exhibit a low level of autofluorescence that can increase the intensity of the fluorescent signal to some degree. This can be compensated for by using a Dynabeads magnetic beads and water background in the instrument. Then background signal intensity can be subtracted from the sample signal intensity in all subsequent real-time PCR experiments containing Dynabeads magnetic beads. Alternatively, when using the standard curve method of analysis, an appropriate amount of Dynabeads magnetic beads can be added to each sample used to construct the standard curve.
After isolation of mRNA using Dynabeads Oligo(dT)25 and before doing reverse transcription, should I incubate the beads with bound mRNA attached to the primer, at 65 degrees C for 5 min as suggested in my reverse transcription protocol or should I just move on to cDNA synthesis (with incubation at 50 degrees C and then 65 degrees C?
The purpose of this step (heating at 65 degrees C for 5 min) is to open up secondary structures in the RNA. If you want to use the Oligo(dT)25 on the beads as primers for your cDNA synthesis and generate solid-phase cDNA, you should omit this step. Start with 50 degrees C (otherwise the mRNA will fall off the beads), then proceed to the 65 degrees C step.
20 beta-hydroxysteroid dehydrogenase and CYP19A1 are differentially expressed during maturation in Atlantic cod (Gadus morhua).
Authors:Mittelholzer C, Andersson E, Consten D, Hirai T, Nagahama Y, Norberg B,
Journal:J Mol Endocrinol
PubMed ID:17909270
In order to better quantify the molecular mechanisms regulating final oocyte maturation and spawning, complete coding sequences with partially or fully untranslated regions for the steroidogenic enzymes, cytochrome P450 aromatase and 20 beta-hydroxysteroid dehydrogenase, were cloned from ovaries of Atlantic cod (Gadus morhua). The nucleotide and amino acid sequences showed ... More