Alexa Fluor™ 568 C5 Maleimide
Alexa Fluor&trade; 568 C<sub>5</sub> Maleimide
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 568 C5 Maleimide

Alexa Fluor™ 568 es un colorante con fluorescencia rojo/naranja brillante y una excitación adaptada idealmente para la línea de láserMás información
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Número de catálogoCantidad
A20341
también denominado A-20341
1 mg
Número de catálogo A20341
también denominado A-20341
Precio (CLP)
-
Cantidad:
1 mg
Alexa Fluor™ 568 es un colorante con fluorescencia rojo/naranja brillante y una excitación adaptada idealmente para la línea de láser de 568 nm en el láser de gas mezclado Ar-Kr. El tinte Alexa Fluor™ 568, empleado para la generación estable de señales para la obtención de imágenes en citometría de flujo, es soluble en agua e insensible al pH entre pH 4 y pH 10. Además de las formulaciones de colorante reactivo, ofrecemos el colorante Alexa Fluor™ 568 conjugado con una serie de anticuerpos, péptidos, proteínas, marcadores y sustratos de amplificación optimizados para el etiquetado y la detección celular (más información).

El derivado de la maleimida de Alexa Fluor™ 568 es la herramienta más popular para conjugar el colorante con un grupo tiol en una proteína, oligonucleótido tiofosfato o ligando de bajo peso molecular. Los conjugados Alexa Fluor™ 568 resultantes presentan una fluorescencia más brillante y una mayor fotoestabilidad que los conjugados de otros fluoróforos espectralmente similares.

Información detallada sobre esta maleimida AlexaFluor™

Etiqueta de fluoróforo: Colorante Alexa Fluor™ 568
Grupo reactivo: maleimida
Reactividad: grupos tiol en proteínas y ligandos, oligonucleótidos tiofosforados
Excitación/emisiones del conjugado: 575/600 nm
Coeficiente de extinción: 92 000 cm-1M-1
Tintes espectralmente similares: Rojo de rodamina
Peso molecular: 880,92

Reacción de conjugación habitual
La proteína debe disolverse en una concentración de entre 50 y 100 µM en un tampón adecuado (de 10 a 100 mM de fosfato, Tris o HEPES) con un pH de 7,0 a 7,5. En este intervalo de pH, los grupos tiol de la proteína son lo suficientemente nucleófilos para reaccionar casi exclusivamente con el reactivo en presencia de los más numerosos grupos amino de la proteína, que están protonados y son relativamente no reactivos. Se recomienda reducir los enlaces de disulfuro en este punto mediante un agente de reductor 10 veces en exceso molar, como DTT o TCEP. El exceso de DTT debe eliminarse por diálisis y la posterior modificación de tiol debe efectuarse sin presencia de oxígeno para evitar que los enlaces de disulfuro se vuelvan a formar; estas precauciones no son necesarias si se utiliza TCEP antes de la conjugación de maleimida.

La maleimida Alexa Fluor™ suele disolverse en dimetilsulfóxido (DMSO) anhidro en una concentración de 1 a 10 mm inmediatamente antes de su uso. Las soluciones madre deben protegerse de la luz en la medida de lo posible. Generalmente, esta solución madre se agrega a la solución de proteína gota a gota mientras se agita para producir aproximadamente de 10 a 20 moles de reactivo por mol de proteína, y la reacción puede proseguir a temperatura ambiente durante 2 horas o a 4 °C durante la noche, protegida de la luz. Cualquier reactivo al tiol que no haya reaccionado puede consumirse si se añade un exceso de glutatión, mercaptoetanol tiol de peso molecular bajo soluble.

Purificación del conjugado
Los anticuerpos etiquetados se separan normalmente del colorante Alexa Fluor™ mediante una columna de filtración en gel, como Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o equivalentes. Para cantidades mucho mayores o menores de proteínas, seleccione un medio de filtración en gel con un corte de peso molecular adecuado o purifique por diálisis. Ofrecemos varios kits de purificación optimizados para diferentes cantidades de conjugado de anticuerpos:
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 0,5-1 mg (A33086)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 20-50 µg (A33087)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 50-100 µg (A33088)

Más información sobre el etiquetado de proteínas y anticuerpos
Ofrecemos una amplia selección de kits de etiquetado de anticuerpos y proteínas Molecular Probes™ que se ajustan a su material de partida y a su configuración experimental. Consulte nuestros kits de etiquetado de anticuerpos o utilice nuestra herramienta de selección química de etiquetado para otras opciones. Para obtener más información acerca de nuestros kits de marcado, lea la sección 1.2 sobrekits para marcado de proteínas y ácidos nucleicos del manual de Molecular Probes™.

Creamos conjugados personalizados
Si no encuentra lo que busca en nuestro catálogo en línea, le prepararemos el conjugado de anticuerpos o proteínas que desee. Nuestro servicio de conjugación personalizada es eficiente y confidencial, y garantizamos la calidad de nuestro trabajo. Contamos con la certificación ISO 9001:2000.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Reactividad químicaTiol
Emisión600 nm
Excitación575 nm
Etiqueta o tinteAlexa Fluor™ 568
Tipo de productoTinte
Cantidad1 mg
Fracción reactivaMaleimida
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Tipo de etiquetaColorantes Alexa Fluor
Línea de productosAlexa Fluor
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Almacenar en el congelador (de – 5 a – 30 °C) y proteger de la luz.

Citations & References (5)

Citations & References
Abstract
The citrate carrier CitS probed by single-molecule fluorescence spectroscopy.
Authors:Kästner CN, Prummer M, Sick B, Renn A, Wild UP, Dimroth P
Journal:Biophys J
PubMed ID:12609868
'A prominent region of the Na(+)-dependent citrate carrier (CitS) from Klebsiella pneumoniae is the highly conserved loop X-XI, which contains a putative citrate binding site. To monitor potential conformational changes within this region by single-molecule fluorescence spectroscopy, the target cysteines C398 and C414 of the single-Cys mutants (CitS-sC398, CitS-sC414) were ... More
Receptor-mediated endocytosis of phosphodiester oligonucleotides in the HepG2 cell line: evidence for non-conventional intracellular trafficking.
Authors:de Diesbach P, N'Kuli F, Berens C, Sonveaux E, Monsigny M, Roche AC, Courtoy PJ
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:11917011
'Having identified an oligonucleotide (ON) receptor in the HepG2 cell line, we have re-examined here the kinetics of ON uptake, subcellular distribution and intracellular localisation in these cells, at concentrations relevant for the study of a receptor-dependent process. Kinetic parameters of ON endocytosis were comparable with those of the receptor-mediated ... More
Structure and conformational changes in the C-terminal domain of the beta2-adrenoceptor: insights from fluorescence resonance energy transfer studies.
Authors:Granier S, Kim S, Shafer AM, Ratnala VR, Fung JJ, Zare RN, Kobilka B,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:17347144
The C terminus of the beta(2)-adrenoceptor (AR) interacts with G protein-coupled receptor kinases and arrestins in an agonist-dependent manner, suggesting that conformational changes induced by ligands in the transmembrane domains are transmitted to the C terminus. We used fluorescence resonance energy transfer (FRET) to examine ligand-induced structural changes in the ... More
Efficiencies of fluorescence resonance energy transfer and contact-mediated quenching in oligonucleotide probes.
Authors:Marras SA, Kramer FR, Tyagi S
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:12409481
An important consideration in the design of oligonucleotide probes for homogeneous hybridization assays is the efficiency of energy transfer between the fluorophore and quencher used to label the probes. We have determined the efficiency of energy transfer for a large number of combinations of commonly used fluorophores and quenchers. We ... More
Arp2/3 ATP hydrolysis-catalysed branch dissociation is critical for endocytic force generation.
Authors:Martin AC, Welch MD, Drubin DG
Journal:Nat Cell Biol
PubMed ID:16862144
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