Alexa Fluor™ 555 C2 Maleimide
Alexa Fluor&trade; 555 C<sub>2</sub> Maleimide
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 555 C2 Maleimide

Alexa Fluor™ 555 es un colorante naranja brillante. El colorante Alexa Fluor™ 555, empleado para la generación estable de señalesMás información
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Número de catálogoCantidad
A203461 mg
Número de catálogo A20346
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Cantidad:
1 mg
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Alexa Fluor™ 555 es un colorante naranja brillante. El colorante Alexa Fluor™ 555, empleado para la generación estable de señales para la adquisición de imágenes en citometría de flujo, es soluble en agua e insensible al pH entre pH 4 y pH 10. Además de las formulaciones de colorante reactivo, ofrecemos el colorante Alexa Fluor™ 555 conjugado con una serie de anticuerpos, péptidos, proteínas, marcadores y sustratos de amplificación optimizados para el etiquetado y la detección celular (más información).

El derivado de la maleimida de Alexa Fluor™ 555 es la herramienta más popular para conjugar el colorante con un grupo tiol en una proteína, oligonucleótido tiofosfato o ligando de bajo peso molecular. Los conjugados Alexa Fluor™ 555 resultantes presentan una fluorescencia más brillante y una mayor fotoestabilidad que los conjugados de otros fluoróforos espectralmente similares.

Información detallada sobre esta maleimida AlexaFluor™

Etiqueta de fluoróforo: Colorante Alexa Fluor™ 555
Grupo reactivo: maleimida
Reactividad: grupos tiol en proteínas y ligandos, oligonucleótidos tiofosforados
Excitación/emisiones del conjugado: 556/572 nm
Coeficiente de extinción: 158.000 cm-1 m-1
Colorantes similares espectrales: Tetrametilrodamina
Peso molecular: ∼1250

Reacción de conjugación habitual
La proteína debe disolverse en una concentración de entre 50 y 100 µM en un tampón adecuado (de 10 a 100 mM de fosfato, Tris o HEPES) con un pH de 7,0 a 7,5. En este intervalo de pH, los grupos tiol de la proteína son lo suficientemente nucleófilos para reaccionar casi exclusivamente con el reactivo en presencia de los más numerosos grupos amino de la proteína, que están protonados y son relativamente no reactivos. Se recomienda reducir los enlaces de disulfuro en este punto mediante un agente de reductor 10 veces en exceso molar, como DTT o TCEP. El exceso de DTT debe eliminarse por diálisis y la posterior modificación de tiol debe efectuarse sin presencia de oxígeno para evitar que los enlaces de disulfuro se vuelvan a formar; estas precauciones no son necesarias si se utiliza TCEP antes de la conjugación de maleimida.

La maleimida Alexa Fluor™ suele disolverse en dimetilsulfóxido (DMSO) anhidro en una concentración de 1 a 10 mm inmediatamente antes de su uso. Las soluciones madre deben protegerse de la luz en la medida de lo posible. Generalmente, esta solución madre se agrega a la solución de proteína gota a gota mientras se agita para producir aproximadamente de 10 a 20 moles de reactivo por mol de proteína, y la reacción puede proseguir a temperatura ambiente durante 2 horas o a 4 °C durante la noche, protegida de la luz. Cualquier reactivo al tiol que no haya reaccionado puede consumirse si se añade un exceso de glutatión, mercaptoetanol tiol de peso molecular bajo soluble.

Purificación del conjugado
Los anticuerpos etiquetados se separan normalmente del colorante Alexa Fluor™ mediante una columna de filtración en gel, como Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o equivalentes. Para cantidades mucho mayores o menores de proteínas, seleccione un medio de filtración en gel con un corte de peso molecular adecuado o purifique por diálisis. Ofrecemos varios kits de purificación optimizados para diferentes cantidades de conjugado de anticuerpos:
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 0,5-1 mg (A33086)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 20-50 µg (A33087)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 50-100 µg (A33088)

Más información sobre el etiquetado de proteínas y anticuerpos
Ofrecemos una amplia selección de kits de etiquetado de anticuerpos y proteínas Molecular Probes™ que se ajustan a su material de partida y a su configuración experimental. Consulte nuestros kits de etiquetado de anticuerpos o utilice nuestra herramienta de selección química de etiquetado para otras opciones. Para obtener más información acerca de nuestros kits de marcado, lea la sección 1.2 sobrekits para marcado de proteínas y ácidos nucleicos del manual de Molecular Probes™.

Creamos conjugados personalizados
Si no encuentra lo que busca en nuestro catálogo en línea, le prepararemos el conjugado de anticuerpos o proteínas que desee. Nuestro servicio de conjugación personalizada es eficiente y confidencial, y garantizamos la calidad de nuestro trabajo. Contamos con la certificación ISO 9001:2000.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Reactividad químicaTiol
Emisión572 nm
Excitación556 nm
Etiqueta o tinteAlexa Fluor™ 555
Tipo de productoTinte
Cantidad1 mg
Fracción reactivaMaleimida
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Tipo de etiquetaColorantes Alexa Fluor
Línea de productosAlexa Fluor
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Almacenar en el congelador (de – 5 a – 30 °C) y proteger de la luz.

Citations & References (10)

Citations & References
Abstract
Single-molecule investigation of the T4 bacteriophage DNA polymerase holoenzyme: multiple pathways of holoenzyme formation.
Authors:Smiley RD, Zhuang Z, Benkovic SJ, Hammes GG
Journal:Biochemistry
PubMed ID:16800624
'In T4 bacteriophage, the DNA polymerase holoenzyme is responsible for accurate and processive DNA synthesis. The holoenzyme consists of DNA polymerase gp43 and clamp protein gp45. To form a productive holoenzyme complex, clamp loader protein gp44/62 is required for the loading of gp45, along with MgATP, and also for the ... More
Assembly of the bacteriophage T4 primosome: single-molecule and ensemble studies.
Authors:Zhang Z, Spiering MM, Trakselis MA, Ishmael FT, Xi J, Benkovic SJ, Hammes GG
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:15728347
'Within replisomes for DNA replication, the primosome is responsible for unwinding double-stranded DNA and synthesizing RNA primers. Assembly of the bacteriophage T4 primosome on individual molecules of ssDNA or forked DNA (fDNA) has been studied by using FRET microscopy. On either DNA substrate, an ordered process of assembly begins with ... More
Conformation coupled enzyme catalysis: single-molecule and transient kinetics investigation of dihydrofolate reductase.
Authors:Antikainen NM, Smiley RD, Benkovic SJ, Hammes GG
Journal:Biochemistry
PubMed ID:16363797
'Ensemble kinetics and single-molecule fluorescence microscopy were used to study conformational transitions associated with enzyme catalysis by dihydrofolate reductase (DHFR). The active site loop of DHFR was labeled with a fluorescence quencher, QSY35, at amino acid position 17, and the fluorescent probe, Alexa555, at amino acid 37, by introducing cysteines ... More
Four-color single-molecule fluorescence with noncovalent dye labeling to monitor dynamic multimolecular complexes.
Authors:DeRocco V, Anderson T, Piehler J, Erie DA, Weninger K,
Journal:Biotechniques
PubMed ID:21091445
To enable studies of conformational changes within multimolecular complexes, we present a simultaneous, four-color single molecule fluorescence methodology implemented with total internal reflection illumination and camera-based, wide-field detection. We further demonstrate labeling histidine-tagged proteins noncovalently with Tris-nitrilotriacetic acid (Tris-NTA)-conjugated dyes to achieve single molecule detection. We combine these methods to ... More
Organization of the archaeal MCM complex on DNA and implications for the helicase mechanism.
Authors:McGeoch AT, Trakselis MA, Laskey RA, Bell SD
Journal:Nat Struct Mol Biol
PubMed ID:16116441
The homomultimeric archaeal mini-chromosome maintenance (MCM) complex serves as a simple model for the analogous heterohexameric eukaryotic complex. Here we investigate the organization and orientation of the MCM complex of the hyperthermophilic archaeon Sulfolobus solfataricus (Sso) on model DNA substrates. Sso MCM binds as a hexamer and slides on the ... More