Kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ EdU Alexa Fluor™ 488
Kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ EdU Alexa Fluor™ 488
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Kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ EdU Alexa Fluor™ 488

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El kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ EdU Alexa Fluor™ 488 proporciona un ensayo simplificado y más sólidoMás información
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C10420100 ensayos
C1042550 ensayos
Número de catálogo C10420
Precio (CLP)
1.363.089
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Cantidad:
100 ensayos
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El kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ EdU Alexa Fluor™ 488 proporciona un ensayo simplificado y más sólido para analizar la replicación de ADN en las células proliferantes en comparación con los métodos de BrdU tradicionales. El ADN recién sintetizado se analiza mediante el láser de 488 nm del citómetro de flujo.

Exacto--Resultados superiores comparado con los ensayos BrdU
Rápido--Resultados en tan solo 90 minutos
Económico--Más ensayos por kit

Ver la guía de selección para todos los ensayos Click-iT™ EdU y Click-iT™ Plus EdU para citometría de flujo.

Un método avanzado que le da resultados superiores a BrdU
el método más preciso de análisis de proliferación es la medición directa de la síntesis de ADN. Originalmente, este procedimiento se realizaba mediante la incorporación de nucleósidos radiactivos, es decir, 3H-timidina. Este método fue reemplazado por la detección basada en anticuerpos del análogo nucleósido bromodesoxiuridina (BrdU). Los kits de ensayo de citrometría de flujo Click-iT™ EdU son una novedosa alternativa al ensayo de BrdU. EdU (5-etinil-2´-desoxiuridina) es un análogo de la timidina que se incorpora al ADN durante la síntesis de ADN activa. La detección se basa en la química de clic: una reacción covalente catalizada con cobre entre una azida y un alqueno. En esta aplicación, el alqueno se encuentra en la fracción de etinil de EdU, mientras que la azida se acopla a los tintes Alexa Fluor™ 488, Alexa Fluor™ 647 o Pacific BlueTM. Se utilizan métodos de citometría de flujo estándar para determinar el porcentaje de células de fase S en la población (Fig. 1).

Unas condiciones moderadas permiten el uso con tintes de ciclo celular y anticuerpos.
Las ventajas del etiquetado Click-iT™ EdU resultan fácilmente evidentes durante la realización del ensayo (Fig. 2). El pequeño tamaño de la azida del tinte permite la detección eficaz de los EdU incorporados utilizando condiciones moderadas, mientras que la fijación basada en aldehído estándar y la permeabilización de detergente son suficientes para que el reactivo de detección Click-iT™ obtenga acceso al ADN. Esto ocurre de manera diferente en los ensayos de BrdU donde se requiere la desnaturalización del ADN (mediante HCl, calor o digestión con ADNasa) para exponer la BrdU de forma que pueda detectarla un anticuerpo anti-BrdU. El procesamiento de las muestras para el ensayo de BrdU puede provocar una alteración de la señal de la distribución del ciclo celular, además de la destrucción de los sitios de reconocimiento de los antígenos cuando se utilice el método HCl. Por el contrario, el kit de proliferación de células EdU listo para su uso es compatible con tintes de ciclo celular. Este kit de ensayo EdU también se puede multiplexar con anticuerpos contra marcadores de superficie e intracelulares.

Protocolo rápido y sencillo
El protocolo Click-iT™ EdU se basa en los pasos de fijación mediante aldehído y permeabilización de detergente para el etiquetado de anticuerpos inmunohistoquímicos, pero EdU es compatible con
otros agentes de fijación/permeabilización, incluyendo la saponina y el metanol. En tan solo cinco pasos podrá empezar a analizar sus datos de proliferación celular:

• Tratar las células con EdUM
• Reparar y permeabilizar las células
•Detectar las células en fase S con el cóctel de detección Click-iT™ durante 30 minutos
• Lavar una vez
• Analizar

Consiga resultados exactos de manera económica
Al aumentar el número de ensayos por kit, el kit de ensayo de citometría de flujo Click-IT™ EdU Alexa Fluor™ 488 es más barato que los ensayos BrdU tradicionales, por lo que es la opción ideal para experimentos grandes.

Solo para uso en investigación. No diseñado para uso diagnóstico o terapéutico en humanos ni en animales.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Método de detecciónFluorescente
Tipo de coloranteAlexa Fluor™ 488
FormatoTubo(s)
Características ecológicasMenos peligroso
Cantidad100 ensayos
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Emission488
Para utilizar con (equipo)Citómetro de flujo
Línea de productosAlexa Fluor, Click-iT
Tipo de productoKit de ensayo de citómetros de flujo
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Contiene EdU (5-etinil-2'-desoxiuridina), azida Alexa Fluor™ 488, dimetilsulfóxido anhidro (DMSO), fijador Click-iT™, tampón de permeabilidad y lavado Click-iT™ a base de saponina, sulfato de cobre (II) y aditivo tampón Click-iT™ EdU.
  • Almacenar entre 2 °C y 8 °C
  • Desecar y proteger de la luz.

    Preguntas frecuentes

    I will be performing a cell proliferation assay using Click-iT EdU kit. At what point can I stop overnight, or do I have to perform all the steps continuously?

    One may store the sample after fixation overnight in PBS at 4oC. For longer storage (<1 week) , store in buffer with 1-2% formaldehyde or in formalin to limit microbial growth. If you use sodium azide as a microbial inhibitor, it must be completely removed prior to the Click-iT reaction.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Viability, Proliferation, Cryopreservation, and Apoptosis Support Center.

    Can I combine Click-iT or Click-iT Plus reactions with phalloidin conjugates used for actin staining?

    We do not recommend using phalloidin conjugates for staining actin in combination with traditional Click-iT or Click-iT Plus reactions since phalloidin is extremely sensitive to the presence of copper.

    For staining actin in combination with traditional Click-iT or Click-iT Plus reactions, we recommend using anti-α-actin antibodies for staining actin in the cytoskeleton. You can find a list of our actin antibodies here.

    Another option would be to use the Click-iT Plus Alexa Fluor Picolyl Azide Toolkit (Cat. Nos. C10641, C10642, C10643). These Click-iT Plus toolkits provide Copper and Copper protectant separately which makes it easier to titrate the copper concentration to obtain optimal labeling with minimal copper-mediated damage. You may need to optimize the click reaction with the lowest possible concentration of copper and then perform the phalloidin staining.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    Are the Alexa Fluor azides from Click-iT EdU kits available separately?

    Yes, but the standalone products are not shipped at the same amount as provided in the Click-iT EdU kits; the amount of dye-azide provided in the Click-iT kits is proprietary information. See these catalog numbers for the standalone products:
    - Cat. No. A10266: Alexa Fluor 488 azide
    - Cat. No. A10270: Alexa Fluor 594 azide
    - Cat. No. A10277: Alexa Fluor 647 azide

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    I am observing no signal or very low specific signal for my click-labeled samples. What can I do to improve the signal?

    The click reaction is only effective when copper is in the appropriate valency. Azides and alkynes will not react with each other without copper. Make sure that the click reaction mixture is used immediately after preparation when the copper (II) concentration is at its highest.
    Do not use additive buffer that has turned yellow; it must be colorless to be active.
    Cells need to be adequately fixed and permeabilized for the TdT enzyme and click reagents to have access to the nucleus. Tissue samples require digestion with proteinase K or other proteolytic enzymes for sufficient TdT access.
    Some reagents can bind copper and reduce its effective concentration available to catalyze the click reaction. Do not include any metal chelator (e.g., EDTA, EGTA, citrate, etc.) in any buffer or reagent prior to the click reaction. Avoid buffers or reagents that include other metal ions that may be o xidized or reduced. It may be help to include extra wash steps on the cell or tissue sample before performing the click reaction.
    You can repeat the click reaction with fresh reagents to try to improve signal. Increasing the click reaction time longer than 30 minutes will not improve a low signal. Performing a second, 30 minute incubation with fresh click reaction reagents is more effective at improving labeling.
    Your cells may not be apoptotic. Prepare a DNase I-treated positive control to verify that the TdT enzymatic reaction and click labeling reaction are working correctly.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Labeling Chemistry Support Center.

    I am observing high non-specific background when I image my Click-iT EdU TUNEL-labeled samples. What is causing this and what can I do to reduce the background?

    The click reaction is very selective between an azide and alkyne. No other side reactions are possible in a biological system. Any non-specific background is due to non-covalent binding of the dye to various cellular components. The Select FX Signal Enhancer is not effective at reducing non-specific charge-based binding of dyes following the click reaction; we do not recommend its use with the Click-iT detection reagents. The best method to reduce background is to increase the number of BSA washes. You should always do a no-dye or no-click reaction control under the same processing and detection conditions to verify that the background is actually due to the dye and not autofluorescence. You should also perform the complete click reaction on a no-TdT enzyme control sample to verify the specificity of the click reaction signal.

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    Citations & References (10)

    Citations & References
    Abstract
    Inositol pyrophosphate synthesis by inositol hexakisphosphate kinase 1 is required for homologous recombination repair.
    Authors:Jadav RS, Chanduri MV, Sengupta S, Bhandari R,
    Journal:J Biol Chem
    PubMed ID:23255604
    'Inositol pyrophosphates, such as diphosphoinositol pentakisphosphate (IP(7)), are water-soluble inositol phosphates that contain high energy diphosphate moieties on the inositol ring. Inositol hexakisphosphate kinase 1 (IP6K1) participates in inositol pyrophosphate synthesis, converting inositol hexakisphosphate (IP(6)) to IP(7). In the present study, we show that mouse embryonic fibroblasts (MEFs) lacking IP6K1 ... More
    IDO1 metabolites activate ß-catenin signaling to promote cancer cell proliferation and colon tumorigenesis in mice.
    Authors:Thaker AI, Rao MS, Bishnupuri KS, Kerr TA, Foster L, Marinshaw JM, Newberry RD, Stenson WF, Ciorba MA
    Journal:
    PubMed ID:23669411
    Indoleamine 2,3 dioxygenase-1 (IDO1) catabolizes tryptophan along the kynurenine pathway. Although IDO1 is expressed in inflamed and neoplastic epithelial cells of the colon, its role in colon tumorigenesis is not well understood. We used genetic and pharmacologic approaches to manipulate IDO1 activity in mice with colitis-associated cancer and human colon ... More
    Lung myofibroblasts are characterized by down-regulated cyclooxygenase-2 and its main metabolite, prostaglandin E2.
    Authors:Gabasa M, Royo D, Molina-Molina M, Roca-Ferrer J, Pujols L, Picado C, Xaubet A, Pereda J
    Journal:
    PubMed ID:23755232
    Prostaglandin E2 (PGE2), the main metabolite of cyclooxygenase (COX), is a well-known anti-fibrotic agent. Moreover, myofibroblasts expressing a-smooth muscle actin (a-SMA), fibroblast expansion and epithelial-mesenchymal transition (EMT) are critical to the pathogenesis of idiopathic pulmonary fibrosis (IPF). Our aim was to investigate the expression of COX-2 and PGE2 in human ... More
    An organotypic coculture model supporting proliferation and differentiation of medullary thymic epithelial cells and promiscuous gene expression.
    Authors:Pinto S, Schmidt K, Egle S, Stark HJ, Boukamp P, Kyewski B,
    Journal:J Immunol
    PubMed ID:23269248
    Understanding intrathymic T cell differentiation has been greatly aided by the development of various reductionist in vitro models that mimic certain steps/microenvironments of this complex process. Most models focused on the faithful in vitro restoration of T cell differentiation and selection. In contrast, suitable in vitro models emulating the developmental ... More
    PARG dysfunction enhances DNA double strand break formation in S-phase after alkylation DNA damage and augments different cell death pathways.
    Authors:Shirai H, Poetsch AR, Gunji A, Maeda D, Fujimori H, Fujihara H, Yoshida T, Ogino H, Masutani M,
    Journal:
    PubMed ID:23744356
    Poly(ADP-ribose) glycohydrolase (PARG) is the primary enzyme responsible for the degradation of poly(ADP-ribose). PARG dysfunction sensitizes cells to alkylating agents and induces cell death; however, the details of this effect have not been fully elucidated. Here, we investigated the mechanism by which PARG deficiency leads to cell death in different ... More