Protein Thermal Shift™ Software v1.4
Applied Biosystems™

Protein Thermal Shift™ Software v1.4

Die Protein Thermal Shift Software v1.4 wurde entwickelt, um Proteinschmelzfluoreszenzmesswerte direkt aus Applied Biosystems™ Echtzeit-PCR-Gerätedateien zu analysieren.Verschiedene Proteine haben unterschiedlicheWeitere Informationen
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4466037
4466038
Katalognummer 4466037
Preis (EUR)
4.670,00
Each
Preis (EUR)
4.670,00
Each

Die Protein Thermal Shift Software v1.4 wurde entwickelt, um Proteinschmelzfluoreszenzmesswerte direkt aus Applied Biosystems™ Echtzeit-PCR-Gerätedateien zu analysieren.Verschiedene Proteine haben unterschiedliche Protein Thermal Shift Profile mit jeweils einer einzigartigen Proteinschmelzkurvenform, Steigung, Signal-Rausch-Verhältnis und Temperaturschmelzbereich (siehe Beispiel rechts in der Abbildung).Die Protein Thermal Shift Software erzeugt aus diesen Kurven einen oder mehrere Schmelztemperaturwerte (Tm) mithilfe von zwei Verfahren: Den Boltzmann-abgeleiteten Tm und den Derivativkurven-Tm, um als Vergleichspunkte zwischen den Kurven zu dienen und die relative thermische Stabilität des Proteins unter unterschiedlichen Testbedingungen darzustellen.

Zwei Verfahren zur Erzeugung des Tm-Werts
Das Boltzmann-Verfahren passt die Daten innerhalb eines automatisch (oder manuell) identifizierten Schmelzbereichs an das Boltzmann-Modell mit zwei Phasen an, um den Tm zu erzeugen.Typischerweise wird für Proteine mit einer einzelnen Schmelzdomäne die Boltzmann-Methode verwendet.Für Proteine mit mehreren Schmelzdomänen kann jedoch die Ableitungskurvenmethode verwendet werden.Bei der Ableitungskurvenmethode wird eine numerisch berechnete zweite Ableitung der Rohdaten verwendet, um die Temperaturen zu schätzen, bei denen im Derivatprofil bis zu sechs Peaks (lokale Maxima) auftreten können.Anhand einer empirisch abgeleiteten Schwelle für das Signal-Rausch-Verhältnis wird festgelegt, welche lokalen Maxima erkannt werden.

Kompatibel mit unseren Echtzeit-PCR-Systemen
Die Protein Thermal Shift Analysesoftware ist kompatibel mit Dateien, die aus diesen Echtzeit-PCR-Systemen generiert werden:QuantStudio 1, 3, 5, 6 Flex, 6 Pro, 7 Flex, 7 Pro und 12K Flex, StepOne, StepOnePlus, 7500, 7500 Fast und ViiA 7.

Bereiten Sie Ihre Proben mit unseren Protein Thermal Shift™ Kits vor
Stellen Sie Ihre Proben für die Analyse mit unserem Protein Thermal Shift Starterkit oder Protein Thermal Shift Färbekit (separat erhältlich) her.Diese Kits enthalten einen Farbstoff, der an exponierte hydrophobe Rückstände bindet, um die thermische Stabilität von Proteinen mit einem Echtzeit-PCR-Instrument zu überwachen, Pufferbedingungen zu identifizieren, die das Protein von Interesse stabilisieren, oder Liganden für Verbindungen zu screenen, die das Protein von Interesse binden.

Nur für Forschungszwecke.Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Zur Verwendung mit (Anwendung)Real Time PCR (qPCR)
Zur Verwendung mit (Geräte)7500 Fast System, 7500 System, QuantStudio™ 1, QuantStudio™ 12 k Flex, QuantStudio™ 3, QuantStudio™ 5, QuantStudio™ 6 Flex, QuantStudio™ 7 Flex, StepOne™, StepOnePlus™, VIIa™ 7 System, QuantStudio™ 6 Pro, QuantStudio™ 7 Pro
LizenzStatisch
BetriebssystemWindows 7 (SP 2)
ProduktlinieProtein Thermal Shift
Menge10 licenses
SoftwaretypProtein-Thermoschicht-Analysesoftware
ProdukttypSoftware
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
10 Lizenzen

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

In the Protein Thermal Shift Assay, my replicates have different levels of fluorescence. Is this a problem?

We recommend looking at the spread in Tm, which is more important than the relative fluorescence.

What can I do for a protein that starts out high and then shows a region of melt (flattening of the curve, but no real rise in signal) when performing a Protein Thermal Shift assay?

Some proteins have hydrophobic residues on the surface and the dye binds to these residues. Heating results in unfolding of the protein causing more hydrophobic residues to be exposed. The dyes bind preferentially to these inner locations and so there is a flattening (or a very low rise) of the melt discernable in the melt profile. If there is no positive slope, you will not get a Boltzmann Tm, but you should still get a derivative one. And you can always draw a manual region to get a Tm out. Some proteins will not work with this technology if the hydrophobic residues are already exposed on the surface and the dye binds strongly to it. Please contact Technical Support at techsupport@thermofisher.com about the possibility of other dyes being available for this issue.

I am getting an error message when I try to open my *.eds data file in the Protein Thermal Shift Software? What should I do?

Make sure that you first open the file in the corresponding instrument software, click “Analyze”, and then save the file, before trying to open with the Protein Thermal Shift Software. The file must first be analyzed before it can be used in the Protein Thermal Shift Software.

The software allows for data from different plates to be analyzed together, what should be considered when mixing data from multiple plates?

The software will allow for ≥100 plates per study. We allow the user this flexibility but do not recommend you mix data from multiple plates unless they have validated their results in advance. At a minimum, we recommend researchers include a reference assay in each plate to ensure reproducibility.

Which analysis method should I choose? The Boltzmann fit or the derivative method?

We provide two independent methods because they each have unique things to offer in terms of the analysis. The two-state Boltzmann model has a physical meaning and appeal. It also provides a great way to normalize across noisy undulations in the signal. However, those undulations may be of actual interest and not noise, such as for multi-domain proteins where they may correspond to different domains coming apart in stages. Here the two-state model is inappropriate. The derivative method can help get a temperature at which the local peaks occur. These are two completely unrelated approaches. If the two-state model is a great fit for your data, the results should be in close agreement.