pBAD-DEST49 Gateway™ Destination Vector
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pBAD-DEST49 Gateway™ Destination Vector

El vector de destino pBAD-DEST49 Gateway™ está diseñado para la clonación rápida con un clon de entrada Gateway™ mediante laMás información
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Número de catálogoCantidad
12283016
también denominado 12283-016
6 μg
Número de catálogo 12283016
también denominado 12283-016
Precio (EUR)
1.366,00
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Cantidad:
6 μg
Precio (EUR)
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El vector de destino pBAD-DEST49 Gateway™ está diseñado para la clonación rápida con un clon de entrada Gateway™ mediante la recombinación específica de sitio de fago lambda y posterior expresión de alto nivel, estrictamente regulada en E. coli. El vector pBAD-DEST49 incluye:

• El promotor araBAD para la expresión fuertemente regulada en E. coli
• Fusión HP-tiorredoxina para mejorar la producción y la solubilidad de las proteínas
• Sitio de escisión de enterocinasa para una escisión eficaz de la fusión de N-terminal con EKMax™
• Etiquetas C-terminal V5 y 6xHis para una detección y purificación eficaz de las proteínas de fusión
• Sitios R para una recombinación eficaz con cualquier vector de entrada Gateway™ flanqueado por attL
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Resistencia bacteriana a los antibióticosAmpicilina (AMPR)
HendiduraSitio de reconocimiento de EK (enterocinasa)
Sistema constitutivo o inducibleInducible
Agente inductorArabinosa
Tipo de productoVector de expresión de destino del sistema Gateway
Cantidad6 μg
Agente de selección (eucariótico)Ninguno
VectorpBAD, pDEST
Método de clonaciónGateway
Línea de productosGateway
PromotoraraBAD
Etiqueta de proteínaEtiqueta His (6x), Etiqueta de epítopo V5, Tiorredoxina
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
El vector de destino Gateway™ pBAD-DEST49 incluye un vector de 6 µg. Almacenar a – 20 °C. Se garantiza la estabilidad de este vector durante seis meses si se almacena adecuadamente.

Preguntas frecuentes

Can I perform the single-step protocol for the BP/LR Clonase reaction using BP Clonase enzyme and LR Clonase enzyme instead of BP Clonase II enzyme and LR Clonase II enzyme?

In the single-step protocol for the BP/LR Clonase reaction, we would not recommend substituting the BP Clonase II/LR Clonase II enzymes with BP Clonase /LR Clonase enzymes as this would result in very low recombination efficiency.

Do you have a recommended single-step protocol for BP/LR recombination?

Yes, we have come up with a single-step protocol for BP/LR Clonase reaction (http://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cloning/gateway-cloning.html#1), where DNA fragments can be cloned into Destination vectors in a single step reaction, allowing you to save time and money.

How can I move my gene of interest from a Gateway-adapted expression clone to a new Destination vector as I have lost the entry clone?

We would recommend performing a BP reaction with a Donor vector in order to obtain an entry clone. This entry clone can then be used in an LR reaction with the Destination vector to obtain the new expression clone.

Can I purchase the 5X LR Clonase buffer or 5X BP Clonase buffer separately?

We do not offer the 5X LR Clonase buffer and 5X BP Clonase buffer as standalone products. They are available as part of the enzyme kits.

Do you offer Gateway vectors for expression in plants?

We do not offer any Gateway vectors for expression in plants.

View all pBAD-DEST49 Gateway™ Destination Vector FAQs

Citations & References (2)

Citations & References
Abstract
Mmh/Ogg1 gene inactivation results in accumulation of 8-hydroxyguanine in mice
Authors:Minowa O, Arai T, Hirano M, Monden Y, Nakai S, Fukuda M, Itoh M, Takano H, Hippou Y, Aburatani H, Masumura K, Nohmi T, Nishimura S, Noda T
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:10725358
The major mutagenic base lesion in DNA caused by exposure to reactive oxygen species is 8-hydroxyguanine or 7, 8-dihydro-8-oxoguanine (8-OH-G). Products of the human MMH/OGG1 gene are known to catalyze in vitro the reactions repairing this DNA lesion. To analyze the function of Mmh in vivo, we generated a mouse ... More
High throughput immuno-screening of cDNA expression libraries produced by in vitro recombination; exploring the Plasmodium falciparum proteome.
Authors:Kordai Sowa MP, Sharling L, Humphreys G, Cavanagh DR, Gregory WF, Fenn K, Creasey AM, Arnot DE,
Journal:Mol Biochem Parasitol
PubMed ID:14698438
Improved Plasmodium falciparum cDNA expression libraries were constructed by combining mRNA oligo-capping with in vitro recombination and directional cloning of cDNA inserts into a plasmid vector that expresses sequences as thioredoxin fusion proteins. A novel procedure has also been developed for the rapid identification of seropositive clones on high-density filters, ... More