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DMEM/F-12 avanzado
El DMEM/F-12 avanzado (medio Eagle modificado de Dulbecco/F-12 de Ham) se utiliza por lo general como medio basal que permiteMás información
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| Número de catálogo | Cantidad |
|---|---|
| 12634010 | 500 mL |
| 12634028 | 10 x 500 mL |
Número de catálogo 12634010
Precio (MXN)
-
Cantidad:
500 mL
El DMEM/F-12 avanzado (medio Eagle modificado de Dulbecco/F-12 de Ham) se utiliza por lo general como medio basal que permite el cultivo de células de mamíferos con suplementación de suero fetal bovino (SFB) reducido. En comparación con el DMEM/F-12 clásico, la suplementación sérica puede reducirse entre un 50 % y un 90 % sin ningún cambio en la tasa de crecimiento o la morfología. Entre las células cultivadas con éxito en el DMEM/F-12 avanzado, sin adaptación, se incluyen MRC-5, SP2, Vero, WI-38 y Jurkat.
Está disponible la formulación completa.
Uso del DMEM/F-12 avanzado
El medio DMEM/F-12 avanzado es distinto a otros medios debido a adición de los siguientes ingredientes para permitir la reducción de suero: etanolamina, glutatión, ácido ascórbico, insulina, transferrina, albúmina de suero bovino rica en lípidos AlbuMAX™ II para cultivo celular, y los oligoelementos selenito sódico, metavanadato amónico, sulfato cúprico y cloruro manganoso. El DMEM/F-12 avanzado requiere la suplementación con entre un 1 % y un 5 % de suero fetal bovino y 4 mM de suplemento de L-glutamina o GlutaMAX™. Muchas líneas de células no requieren adaptarse a este medio La concentración de SFB debe optimizarse para cada línea de células para obtener la máxima reducción de suero. El medio DMEM/F-12 avanzado utiliza un sistema de tampones de bicarbonato sódico (3,7 g/l) y, por tanto, requiere un ambiente con un 5–10 % de CO2 para mantener el pH fisiológico.
Sistema de fabricación y calidad conforme con las buenas prácticas de fabricación actuales
Para mantener la continuidad de la cadena de suministro, fabricamos DMEM/F-12 avanzado en dos plantas distintas, una ubicada en Grand Island, NY (EE. UU.) y la otra en Escocia (Reino Unido). Ambos sitios cumplen los requisitos de producción según las buenas prácticas de fabricación actuales, cuentan con la certificación ISO 13485 y se han registrado en la FDA como fabricantes de dispositivos médicos.
Este DMEM/F-12 avanzado se ha elaborado de la manera siguiente:
| Con | Sin |
| • Glucosa | • L-glutamina |
| • Aminoácidos no esenciales | • Ácido 4-(2-hidroxietil)piperazin-1-iletanosulfónico (HEPES) |
| • Piruvato sódico | |
| • Rojo de fenol |
Está disponible la formulación completa.
Uso del DMEM/F-12 avanzado
El medio DMEM/F-12 avanzado es distinto a otros medios debido a adición de los siguientes ingredientes para permitir la reducción de suero: etanolamina, glutatión, ácido ascórbico, insulina, transferrina, albúmina de suero bovino rica en lípidos AlbuMAX™ II para cultivo celular, y los oligoelementos selenito sódico, metavanadato amónico, sulfato cúprico y cloruro manganoso. El DMEM/F-12 avanzado requiere la suplementación con entre un 1 % y un 5 % de suero fetal bovino y 4 mM de suplemento de L-glutamina o GlutaMAX™. Muchas líneas de células no requieren adaptarse a este medio La concentración de SFB debe optimizarse para cada línea de células para obtener la máxima reducción de suero. El medio DMEM/F-12 avanzado utiliza un sistema de tampones de bicarbonato sódico (3,7 g/l) y, por tanto, requiere un ambiente con un 5–10 % de CO2 para mantener el pH fisiológico.
Sistema de fabricación y calidad conforme con las buenas prácticas de fabricación actuales
Para mantener la continuidad de la cadena de suministro, fabricamos DMEM/F-12 avanzado en dos plantas distintas, una ubicada en Grand Island, NY (EE. UU.) y la otra en Escocia (Reino Unido). Ambos sitios cumplen los requisitos de producción según las buenas prácticas de fabricación actuales, cuentan con la certificación ISO 13485 y se han registrado en la FDA como fabricantes de dispositivos médicos.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Línea de célulasMRC-5, SP2, Vero, WI-38 y Jurkat
Concentración1 X
Calidad de fabricacióncGMP-compliant under the ISO 13485 standard
Línea de productosGibco
Tipo de productoDMEM (medio Eagle modificado de Dulbecco)/F-12
Cantidad500 mL
Duración de almacenamiento12 meses a partir de la fecha de fabricación
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
ClasificaciónOrigen animal
FormularioLíquido
Serum LevelSuero reducido
EsterilidadEstéril con filtro
Sterilization MethodEstéril con filtro
Con aditivosAlto contenido en glucosa, Rojo de fenol, Piruvato sódico, Aminoácidos no esenciales
Sin aditivosSin glutamina, Sin HEPES
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Condiciones de almacenamiento: De 2 a 8 °C. Proteger de la luz
Condiciones de envío: Ambiente
Vida útil: 12 meses a partir de la fecha de fabricación
Condiciones de envío: Ambiente
Vida útil: 12 meses a partir de la fecha de fabricación
Preguntas frecuentes
Can NSCs generated using PSC Neural Induction Medium be expanded in the PSC Neural Induction Medium or do they need to be in the recommended NSC expansion medium, as stated in the product manual?
Do you offer DMEM/F12 medium without folic acid?
What is the difference between Advanced DMEM/F12 Medium and DMEM/F12 Medium?
How long can I keep my media after supplementing with serum?
My medium was shipped at room temperature but it is supposed to be stored refrigerated. Is it okay?
Citations & References (9)
Citations & References
Abstract
Development of a Three-Dimensional Bioengineering Technology to Generate Lung Tissue for Personalized Disease Modeling.
Journal:Stem cells translational medicine
PubMed ID:28191779
Stem cell technologies, especially patient-specific, induced stem cell pluripotency and directed differentiation, hold great promise for changing the landscape of medical therapies. Proper exploitation of these methods may lead to personalized organ transplants, but to regenerate organs, it is necessary to develop methods for assembling differentiated cells into functional, organ-level
Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche.
Journal:Nature
PubMed ID:19329995
The intestinal epithelium is the most rapidly self-renewing tissue in adult mammals. We have recently demonstrated the presence of about six cycling Lgr5(+) stem cells at the bottoms of small-intestinal crypts. Here we describe the establishment of long-term culture conditions under which single crypts undergo multiple crypt fission events, while
Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium.
Journal:Gastroenterology
PubMed ID:21889923
Background & aims: We previously established long-term culture conditions under which single crypts or stem cells derived from mouse small intestine expand over long periods. The expanding crypts undergo multiple crypt fission events, simultaneously generating villus-like epithelial domains that contain all differentiated types of cells. We have adapted the culture
Directed differentiation of human pluripotent stem cells into intestinal tissue in vitro.
Journal:Nature
PubMed ID:21151107
Studies in embryonic development have guided successful efforts to direct the differentiation of human embryonic and induced pluripotent stem cells (PSCs) into specific organ cell types in vitro 1,2. For example, human PSCs have been differentiated into monolayer cultures of liver hepatocytes and pancreatic endocrine cells3–6 that have therapeutic efficacy
In vitro generation of human pluripotent stem cell derived lung organoids.
Journal:eLife
PubMed ID:25803487
Recent breakthroughs in 3-dimensional (3D) organoid cultures for many organ systems have led to new physiologically complex in vitro models to study human development and disease. Here, we report the step-wise differentiation of human pluripotent stem cells (hPSCs) (embryonic and induced) into lung organoids. By manipulating developmental signaling pathways hPSCs