Formaldehído Pierce™ al 16 % (p/v), sin metanol
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Formaldehído Pierce™ al 16 % (p/v), sin metanol
Thermo Scientific™

Formaldehído Pierce™ al 16 % (p/v), sin metanol

Las ampollas de formaldehído Thermo Scientific Pierce son viales de formaldehído sin metanol de alta calidad para su uso comoMás información
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Las ampollas de formaldehído Thermo Scientific Pierce son viales de formaldehído sin metanol de alta calidad para su uso como fijador de inmunohistoquímica (IHC) general y agente de entrecruzamiento de aminas reversible para muestras de tejido de ácido nucleico y proteínas.

La disponibilidad de una solución de formaldehído sellada en ampolla de alta calidad ahorra un valioso tiempo y elimina la necesidad y los riesgos asociados a la preparación de la solución directamente a partir de paraformaldehído. El formaldehído Pierce se prepara cuidadosamente directamente a partir de paraformaldehído granular y se sella en una atmósfera inerte en ampollas de 1 ml y 10 ml. El envasado en ampollas estabiliza la preparación al proteger la solución de la oxidación del aire y la luz, lo que permite contar con formaldehído «fresco» en todo momento.

Características de las ampollas de formaldehído al 16 % sin metanol:

Fresco: la solución de formaldehído permanece estable y libre de contaminación en una ampolla ámbar estriada previamente.
Tamaño adecuado: tamaños de envases diseñados para distintas aplicaciones, desde la fijación celular para cultivos hasta aplicaciones basadas en proteínas en célula.
Práctica concentración de partida: solución de formaldehído al 16 % de peso/volumen que simplifica la dilución hasta la concentración de trabajo requerida.
Residuos minimizados: los envases de 1 ml y 10 ml de tamaño facilitan la selección del producto, lo que reducirá los residuos y las preocupaciones para eliminarlos.

Envase en ampollas diseñadas para aplicaciones
Los tamaños de envase de la solución de formaldehído al 16 % (formalina) están dirigidos a usuarios de bajo y alto volumen. El tamaño del envase adecuado se selecciona en función de las aplicaciones más comunes que requieren una solución fresca de formaldehído libre de metanol. La solución al 16 % (peso/volumen) simplifica la dilución para cada aplicación correspondiente, mientras que el envase diseñado para aplicaciones reduce los residuos.

• Las ampollas de 1 ml están destinadas a aplicaciones intracelulares basadas en proteínas, como la inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) o la detección de interacción de proteínas.
• Las ampollas de 10 ml están destinadas a la adquisición de imágenes biológicas (detección de alto contenido/análisis), como la fijación de células en una placa de cultivo antes del análisis de la imagen.

«Preparado fresco» y sellado en ampollas
Nuestra solución de formaldehído se prepara como una solución al 16 % (peso/volumen) de paraformaldehído (sólido granular puro) en agua destilada o desionizada. La estabilización de la solución es importante porque las soluciones de formaldehído se oxidan a ácido fórmico y, en última instancia, se repolimerizan en paraformaldehído. La mayoría de los protocolos que requieren formaldehído sin metanol sugieren que el formaldehído se «prepare fresco». Esta solución de formaldehído se sella en ampollas inmediatamente después de la formulación en una atmósfera inerte. El envase en ampollas estabiliza la preparación, lo que permite contar con formaldehído «fresco» en todo momento.

Para garantizar una mayor seguridad al abrir ampollas de vidrio, puede utilizar nuestros rompedores de ampollas, que son dispositivos de seguridad desechables que protegen los dedos al abrir una ampolla de vidrio.

Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Nombre del producto químico o materialFormaldehído
Almacenamiento recomendadoSe debe almacenar en un recipiente original protegido de la luz solar directa en una zona seca, fresca y bien ventilada.
Forma físicaLíquido
Línea de productosPierce
Cantidad10 x 1 mL
Unit SizeEach

Preguntas frecuentes

Where do I find the expiry date of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free (Cat. No. 28906)?

We guarantee the functionality of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free for one year from date of shipment, if stored correctly. See Limited Warranties for consumables under the General Terms and Conditions of Sale.

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What are the options for crosslinking proteins to nucleic acids, and what are the differences between them?

We offer the following crosslinkers for protein to nucleic acids: formaldehyde (Cat. No. 28906), SPB (Cat. No. 23013), SDAD (Cat. No. 26169), sulfo-SDAD (Cat. No. 26175), and sulfo-SBED (Cat. No. A39260).
Formaldehyde can be used for DNA-DNA crosslinking as well as DNA-protein crosslinking. While it is good for crosslinking proteins that are in direct contact with DNA, formaldehyde cannot link proteins that may be bound in a complex with other proteins but are not in direct contact with DNA. EGS or DSG can crosslink proteins to other proteins that are in direct contact with DNA and crosslinked to DNA by formaldehyde.
SPB, Sulfo-SDAD, and Sulfo-SBED are all photoreactive crosslinkers. SPB is an NHS-ester and psoralen heterobifunctional crosslinker that conjugates primary amines on proteins to DNA via photo-activated intercalation of psoralen to pyrimidine bases. The psoralen tricyclic planar ring system intercalates into double-stranded, and to a lesser extent, single-stranded DNA and RNA. The photoreactive psoralen group provides more selective covalent binding to nucleic acids than either phenyl azide or diazerine linkers, which makes SPB the best choice. The diazerine on sulfo-SDAD and the phenyl azide on sulfo-SBED are not selective for nucleic acids and can crosslink other biomolecules in the same besides any protein-DNA interactions. Sulfo-SBED involves biotin transfer rather than actual linking.

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What fixative should I use to fix my cells or tissues for antibody labeling?

Aldehyde-based fixatives (e.g., formaldehyde, glutaraldehyde) crosslink various cellular components, which helps retain proteins and cell morphology, but some antigens can be masked by the crosslinking, requiring antigen retrieval methods to unmask the antigen binding sites. Also, aldehyde-based fixation requires permeabilization to allow entry of antibodies. Organic solvents such as methanol and acetone condense proteins and permeabilize the cells, but cell morphology can be compromised. Surface antigens can be labeled without fixation.

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What is the difference between formalin and formaldehyde?

The terms “formalin” and “formaldehyde” are often used interchangeably, although the chemical composition of each fixative is different. Formalin is made with formaldehyde but the percentage denotes a different formaldehyde concentration than formaldehyde solutions. For example, 10% neutral-buffered formalin (NBF or simply formalin) is really a 4% formaldehyde solution; the basis for this difference is that historically, formalin was prepared with commercial-grade stock formaldehyde, which is 37 to 40% formaldehyde, by diluting it 1:10 in phosphate buffer.

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What is the difference between Formaldehyde and Paraformaldehyde?

Most commercial formaldehyde is prepared with paraformaldehyde (polymeric formaldehyde) dissolved in distilled/deionized water, with methanol added to stabilize the aqueous formaldehyde. Solution stabilization is important to prevent oxidation to formic acid and the eventual repolymerization to paraformaldehyde, and therefore commercial formaldehyde may contain up to 10% methanol. To avoid using methanol-contaminated formaldehyde for fixation, many protocols recommend making “fresh” formaldehyde from paraformaldehyde immediately before sample fixation. This preparation is not necessary if using Cat. Nos. 28906 and 28908.

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