Silencer™ Select Negative Control No. 1 siRNA, in vivo ready
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Invitrogen™

Silencer™ Select Negative Control No. 1 siRNA, in vivo ready

El ARNip de control negativo Ambion™ Silencer™ Select, preparado In Vivo, es ampliamente validado y resulta un control ideal paraMás información
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Número de catálogoCantidad
4404020250 nmol
Número de catálogo 4404020
Precio (MXN)
-
Cantidad:
250 nmol
El ARNip de control negativo Ambion™ Silencer™ Select, preparado In Vivo, es ampliamente validado y resulta un control ideal para muchos aspectos de un experimento ARNip. El control está altamente purificado como se requiere para el uso animal. Se suministran 250 nmol.

• ARNip de calidad superior, altamente purificado y listo para usar
• Probado funcionalmente en varias líneas celulares comunes
• Incluye modificaciones Silencer™Select para una especificidad mejorada
• Para su uso en células humanas, de ratón y de rata

¿Qué son los ARNip Silencer™Select?
Los ARNip Silencer™ Select incorporan las últimas mejoras en el diseño de ARNip, algoritmos de predicción de efectos inespecíficos y modificaciones químicas para producir ARNip con eficacia, potencia, y especificidad inigualables. El resultado es menos experimentos fallidos debido a un escaso silenciamiento, así como un aumento de la uniformidad de los datos fenotípicos.

ARNip de control positivo Silencer™ Select GAPDH:
El control positivo Silencer™ Select GAPDH está ampliamente validado y resulta una “prueba” de ARNip ideal para quienes se inician en los experimentos ARNip, porque está validado para trabajar en múltiples líneas celulares. Debido a que se dirige a ARNm GAPDH (un control interno común), hay muchos ensayos disponibles para medir sus efectos, incluidos el RT-PCR en tiempo real, así como el kit de ensayo de GAPDH Ambion™ KDalert™.

Control de calidad:
Los ARNip Silencer™ Select se fabrican en una instalación de última generación bajo los más altos estándares de calidad. Los rigurosos procedimientos de control de calidad incluyen el análisis de espectrometría de masas MALDI-TOF y la HPLC analítica para controlar la pureza. Cada ARNip también se evalúa por electroforesis en gel para confirmar que las hebras se recuecen correctamente. Además, los ARNip In Vivo Ready están sometidos a una purificación adicional con una membrana semipermeable para eliminar el exceso de sal. A esto le sigue una filtración estéril y pruebas de endotoxinas. A concentraciones de 50 μM en agua desionizada, los ARNip In Vivo Ready contienen. inferior al 0,6 mM Na+, inferior al 2,0 mM K+ y inferior al 0,1 mM Mg2+. Los controles ARNip Silencer Select™ tienen modificaciones químicas específicas; están diseñados para usarse con ARNip Silencer™ Select. Si utiliza otros productos de ARNip, como ARNip BLOCK-iT™, ARNip Ambion™ Silencer™ o ARNip STEALTH RNAi™, le recomendamos que utilice ARNip de control diseñados para su uso con esos ARNip para obtener unos resultados de experimentos más fiables.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Para utilizar con (aplicación)ARNi
Etiqueta o tinteno conjugado
Línea de productosSilencer Select, Ambion
Tipo de productoARNip
PurezaHPLC
Cantidad250 nmol
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Tipo de controlControl negativo
RNAi TypeARNip
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
El ARNip se suministra secado en un solo tubo, que debe almacenarse a – 20 °C.

Preguntas frecuentes

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

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Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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