Kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ Plus EdU Alexa Fluor™ 488
Kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ Plus EdU Alexa Fluor™ 488
Invitrogen™

Kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ Plus EdU Alexa Fluor™ 488

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El kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ Plus EdU Alexa Fluor™ 488 proporciona un ensayo simplificado y másMás información
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Número de catálogoCantidad
C10633100 ensayos
C1063250 ensayos
Número de catálogo C10633
Precio (MXN)
-
Cantidad:
100 ensayos
El kit de ensayo de citometría de flujo Click-iT™ Plus EdU Alexa Fluor™ 488 proporciona un ensayo simplificado y más sólido para analizar la replicación de ADN en las células proliferantes en comparación con los métodos de BrdU tradicionales. El ADN recién sintetizado se analiza mediante el láser de 488 nm del citómetro de flujo. La formulación Click-iT™ Plus es compatible con fluoróforos estándar, incluido los tándems R-PE y R-PE, así como con proteínas fluorescentes.

• Multiplexable: compatible con R-PE (y tándems) y proteínas fluorescentes
• Precisa: resultados superiores en comparación con ensayos BrdU
• Rápida: resultados en tan solo 60 minutos

Consulte la guía de selección para todos los ensayos de EdU Click-iT™ y EdU Click-iT™ Plus para citometría de flujo.

Multiplexable
La formulación Click-iT™ Plus proporciona una capacidad de multiplexing mejorada en comparación con los ensayos originales de citrometría de flujo Click-iT™ EdU. Los ensayos Click-iT™ Plus EdU se pueden usar junto con los tándems R-PE y R-PE, además de con proteínas fluorescentes como GFP y mCherry, sin pérdida de precisión o velocidad con respecto al ensayo Click-iT™ EdU original.

Un método avanzado que ofrece resultados superiores a BrdU
El método más preciso de análisis de proliferación es la medición directa de la síntesis del ADN. Originalmente, este procedimiento se realizaba mediante la incorporación de nucleósidos radiactivos. Este método fue reemplazado por la detección basada en anticuerpos del análogo nucleósido bromodesoxiuridina (BrdU). El ensayo de citometría de flujo Click-iT™ Plus EdU es una novedosa alternativa al ensayo de BrdU. EdU (5-etinil-2´-desoxiuridina) es un análogo de la timidina que se incorpora al ADN durante la síntesis de ADN activa. La detección se basa en la química de clic, que es una reacción covalente catalizada con cobre entre una azida y un alquino. En esta aplicación, el alquino se encuentra en la fracción de etinil de EdU, mientras que la azida se acopla al tinte Alexa Fluor™. Se utilizan métodos de citometría de flujo estándar para determinar el porcentaje de células de fase S en la población.

Unas condiciones moderadas permiten el uso con tintes de ciclo celular y anticuerpos
El tamaño reducido de la acida en la tinción permite la detección eficaz de los EdU incorporados utilizando condiciones moderadas, mientras que la fijación basada en aldehído estándar y la permeabilización del detergente son suficientes para que el reactivo de detección Click-iT™ Plus consiga acceso al ADN. Esto ocurre de manera diferente en los ensayos de BrdU donde se requiere la desnaturalización del ADN (mediante HCl, calor o digestión con ADNasa) para exponer la BrdU de forma que pueda detectarla un anticuerpo anti-BrdU. El procesamiento de las muestras para el ensayo de BrdU puede provocar una alteración de la señal de la distribución del ciclo celular, además de la destrucción de los sitios de reconocimiento de los antígenos cuando se utilice el método HCl. Por el contrario, el sencillo ensayo Click-iT™ Plus EdU es compatible con tintes de ciclo celular. El ensayo Click-iT™ Plus EdU también se puede multiplexar con anticuerpos contra la superficie y marcadores intracelulares, así como conjugados marcados con fluoróforos estándar incluidos tándems R-PE, R-PE y proteínas fluorescentes (GFP y mCherry).

Protocolo rápido y sencillo
El protocolo Click-iT™ Plus EdU se basa en los pasos de fijación mediante aldehído y permeabilización de detergente para marcado de anticuerpos inmunohistoquímicos. Sin embargo, EdU es compatible con otros agentes de fijación/permeabilización incluidos el metanol y la saponina. En tan solo cinco pasos podrá empezar a analizar los datos de proliferación celular:

1. Trate las células con EdU.
2. Fije y permeabilice las células.
3. Detecte células de fase S con el cóctel de detección Click-iT™ Plus durante 30 minutos.
4. Lave una vez.
5. Analice.

Los resultados se pueden comprobar en tan solo 60 minutos en algunas circunstancias, pero recomendamos 90 minutos para todas las aplicaciones.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Método de detecciónFluorescente
Tipo de coloranteAlexa Fluor™ 488
FormatoTubo(s)
Características ecológicasMenos peligroso
Cantidad100 ensayos
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Emission488
Para utilizar con (equipo)Citómetro de flujo
Línea de productosClick-iT
Tipo de productoKit de ensayo de citómetros de flujo
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Contiene EdU (5-etinil-2'-desoxiuridina), Alexa Fluor™ 488 picolil azida, dimetilsulfóxido anhidro (DMSO), fijador Click-iT™, tampón de permeabilidad y lavado Click-iT™ a base de saponina, protector de cobre y aditivo tampón Click-iT™ EdU.
  • Almacenar entre 2 °C y 8 °C
  • Desecar y proteger de la luz.

    Preguntas frecuentes

    What is the excitation/emission maxima of the Alexa Fluor 488 dye?

    Alexa Fluor 488 has fluorescence excitation and emission maxima of 495/519 nm.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    What are the main characteristics of a Click-iT reaction?

    Click reactions have several general characteristics: the reaction is efficient, no extreme temperatures or solvents are required, the reaction is complete within 30 minutes, the components of the reaction are bio-inert, and perhaps most importantly, no side reactions occur-the label and detection tags react selectively and specifically with one another. This final point is a key advantage of this powerful detection technique; it is possible to apply click chemistry-labeled molecules to complex biological samples and detect them with unprecedented sensitivity due to the extremely low background of the reaction.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    I will be performing a cell proliferation assay using Click-iT EdU kit. At what point can I stop overnight, or do I have to perform all the steps continuously?

    One may store the sample after fixation overnight in PBS at 4oC. For longer storage (<1 week) , store in buffer with 1-2% formaldehyde or in formalin to limit microbial growth. If you use sodium azide as a microbial inhibitor, it must be completely removed prior to the Click-iT reaction.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Viability, Proliferation, Cryopreservation, and Apoptosis Support Center.

    Can I combine Click-iT or Click-iT Plus reactions with phalloidin conjugates used for actin staining?

    We do not recommend using phalloidin conjugates for staining actin in combination with traditional Click-iT or Click-iT Plus reactions since phalloidin is extremely sensitive to the presence of copper.

    For staining actin in combination with traditional Click-iT or Click-iT Plus reactions, we recommend using anti-α-actin antibodies for staining actin in the cytoskeleton. You can find a list of our actin antibodies here.

    Another option would be to use the Click-iT Plus Alexa Fluor Picolyl Azide Toolkit (Cat. Nos. C10641, C10642, C10643). These Click-iT Plus toolkits provide Copper and Copper protectant separately which makes it easier to titrate the copper concentration to obtain optimal labeling with minimal copper-mediated damage. You may need to optimize the click reaction with the lowest possible concentration of copper and then perform the phalloidin staining.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    I am observing no signal or very low specific signal for my click-labeled samples. What can I do to improve the signal?

    The click reaction is only effective when copper is in the appropriate valency. Azides and alkynes will not react with each other without copper. Make sure that the click reaction mixture is used immediately after preparation when the copper (II) concentration is at its highest.
    Do not use additive buffer that has turned yellow; it must be colorless to be active.
    Cells need to be adequately fixed and permeabilized for the TdT enzyme and click reagents to have access to the nucleus. Tissue samples require digestion with proteinase K or other proteolytic enzymes for sufficient TdT access.
    Some reagents can bind copper and reduce its effective concentration available to catalyze the click reaction. Do not include any metal chelator (e.g., EDTA, EGTA, citrate, etc.) in any buffer or reagent prior to the click reaction. Avoid buffers or reagents that include other metal ions that may be o xidized or reduced. It may be help to include extra wash steps on the cell or tissue sample before performing the click reaction.
    You can repeat the click reaction with fresh reagents to try to improve signal. Increasing the click reaction time longer than 30 minutes will not improve a low signal. Performing a second, 30 minute incubation with fresh click reaction reagents is more effective at improving labeling.
    Your cells may not be apoptotic. Prepare a DNase I-treated positive control to verify that the TdT enzymatic reaction and click labeling reaction are working correctly.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Labeling Chemistry Support Center.