DH10B Competent Cells
DH10B Competent Cells
Thermo Scientific™

DH10B Competent Cells

Las células competentes DH10B Thermo Scientific son células de E. coli de alta eficiencia y competencia química. La cepa DH10BMás información
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Número de catálogoCantidad
EC011310 × 100 μl
Número de catálogo EC0113
Precio (MXN)
-
Cantidad:
10 × 100 μl
Pedido a granel o personalizado
Las células competentes DH10B Thermo Scientific son células de E. coli de alta eficiencia y competencia química. La cepa DH10B es adecuada para la clonación de ADN que contiene metilcitosina, 5-hidroximetilcitosina y metiladenina, lo que permite que tanto el ADN genómico procariótico como el eucariótico se clonen de manera eficiente. Estas células son ideales para la construcción de bancos de genes y para la generación de bibliotecas de ADNc mediante vectores derivados de plásmidos. El marcador φ80dlacZΔM15 proporciona α-complementación del gen β-galactosidasa de pUC o vectores similares para permitir la detección de colonias azules/blancas en placas de agar bacterianas que contienen Bluo-Gal o X-Gal.

• Alta eficacia de transformación: > 1 x 109 cfu/µg de ADN pUC19
• Adecuado para aplicaciones de clonación rutinarias y de alto rendimiento
• Permite la detección de colonias azules/blancas
• Dos prácticas reacciones por envase de vial
• SOC Medio de crecimiento incluido

Aplicaciones
Las células competentes DH10B son adecuadas para una variedad de aplicaciones que requieren una alta eficiencia de transformación:
• Clonación eficaz de ADN tanto de origen procariótico como eucariótico
• Clonación de grandes plasmidos y BAC
• Ideal para la generación de bibliotecas de ADNc utilizando vectores derivados del plásmido
• Mutagénesis dirigida al sitio

Genotipo
F– mcrA Δ(mrr-hsdRMS-mcrBC) φ80lacZΔM15 ΔlacX74 recA1 endA1 araD139 Δ (ara-leu)7697 galU galK λ– rpsL(StrR) nupG

Nota: Optimizado para su uso con el Kit de clonación de PCT CloneJET (n.º cat. K1231, K1232) y el Kit de mutagénesis dirigida al sitio de fusión (n.º cat. F541) y disponible como versiones combinadas (n.º cat. K123120, K123240, F542).

Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.

Especificaciones
Cepa bacteriana o de levaduraDH10B™
Tramado azul/blanco
Tipo de célulaQuímicamente competente
Clonación de ADN metilado
Contiene el episoma F'Carece de episoma F'
EficaciaAlta eficacia (> 1 x 10^9 cfu/µg de ADN pUC19)
Para utilizar con (aplicación)Clonación
Compatibilidad de alto rendimientoNo compatible con alto rendimiento
BibliotecasADNc
Línea de productosThermo Scientific
Tipo de productoCélula competente
Propagación de vectores ccdBNo para propagación vectorial ccdB
Cantidad10 × 100 μl
Condiciones de envíoHielo seco
FormatoTubo
EspecieE. coli
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
• 10 x células competentes DH10B (100 µl)
• ADN pUC19 (50 µl) (10 pg/µl)
• S.O.C. Medio (5 ml)

Almacenar a -80 °C.

Preguntas frecuentes

Can I store my competent E. coli in liquid nitrogen?

We do not recommend storing competent E. coli strains in liquid nitrogen as the extreme temperature can be harmful to the cells. Also, the plastic storage vials are not intended to withstand the extreme temperature and may crack or break.

How should I store my competent E. coli?

We recommend storing our competent E. coli strains at -80°C. Storage at warmer temperatures, even for a brief period of time, will significantly decrease transformation efficiency.

I'm getting overgrowth of colonies. Why?

Ensure that you are using the correct antibiotic at the appropriate concentration. Additionally, make sure the antibiotic is not expired. If colonies exhibit unexpected morphologies, contamination could be a factor. Check your S.O.C. medium and LB growth medium.

I'm only getting white colonies, but none of the clones have an insert. What can I do?

Here are a few suggestions:

- Small fragments/linkers are cloning in to your vector instead of your insert; to correct this, gel-purify the insert before ligation
- Ensure that the correct concentrations of X-gal and/or IPTG (if vector contains the lacIq marker) are used
- If spreading X-gal and/or IPTG on your plate, allow sufficient time for the reagents to diffuse into the plate
- Incubate your plate for a longer period to ensure full color development

I'm getting no colonies at all on my plates. Can you help?

We recommend trying the following:
- Carry out the puc19 transformation control; this gives you information about the performance of the cells.
- Check plates for expiration and correct media used (LB/agar).
- Confirm that the correct antibiotic and concentration was used.