Search

  • Contáctenos
  • Orden Rápida
Kit de tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™
Invitrogen™

Kit de tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™

La tinción de células muertas (S10274, S10349) SYTOX™ AADvanced™ es una nueva tinción de ácido nucleico de alta afinidad paraMás información
Have Questions?
Cambiar vistabuttonViewtableView
Número de catálogoCantidad
S10274500 reacciones
S10349100 reacciones
Número de catálogo S10274
Precio (MXN)
-
Cantidad:
500 reacciones
La tinción de células muertas (S10274, S10349) SYTOX™ AADvanced™ es una nueva tinción de ácido nucleico de alta afinidad para la detección de células muertas y el análisis del ciclo celular utilizando el láser azul común de 488 nm en citometría de flujo. El colorante es espectralmente similar al 7-AAD pero con una cinética rápida de captación y unos CV relativamente bajos. La tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™ penetra en las células de forma más eficiente que el 7-AAD proporcionando una mejor separación de las células vivas y muertas. La tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™ también puede utilizarse con células fijadas para el análisis del contenido de ADN cuando se combina con un tratamiento de ARNasa. Los kits de tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™ contienen uno o varios viales de colorante seco y DMSO anhidro que proporcionan una vida útil estable.

Consulte una guía de selección para todos los tintes de viabilidad no fijables para citometría de flujo.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Permeabilidad celularImpermeable
DescripciónKit de tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™
Método de detecciónFluorescente
Tipo de coloranteSYTOX™ AADvanced™
Longitud de onda de emisión647 nm
Longitud de onda de excitación546 nm
FormularioSólido
FormatoTubo(s)
Cantidad500 reacciones
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
SolubilidadDMSO (dimetilsulfóxido)
Localización subcelularNucleicos, ácidos nucleicos
ColorRojo
Para utilizar con (aplicación)Ensayo de viabilidad
Para utilizar con (equipo)Citómetro de flujo
Línea de productosSondas moleculares, SYTOX
Tipo de productoKit de tinción de células muertas
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Contiene 5 viales de tinción de células muertas SYTOX™ AADvanced™ y 500 μl de dimetilsulfóxido (DMSO).

Almacenar a ≤ -20 °C y proteger de la luz.

Preguntas frecuentes

How do SYTO dyes bind to DNA?

The binding mode of SYTO nucleic acid stains is unknown. However, the behavior of these and related nucleic acid dyes suggests the following binding properties:

1.They appear to contact the solvent (suggested by sensitivity to salt, divalent cations, and in particular, SDS) and thus are likely to have contacts in the grooves.
2.All SYTO dyes appear to show some base selectivity and are thus likely to have minor groove contacts.
3.They can be removed from nucleic acid via ethanol precipitation; this characteristic is not shared by ethidium bromide and other intercalators. Likewise, the dyes are not removed from nucleic acid via butanol or chloroform extraction. These extraction methods do remove ethidium bromide from nucleic acid. 4. SYTO binding is not affected by nonionic detergents.
5. SYTO dyes are not quenched by BrdU, so they do not bind nucleic acids in precisely the same way as Hoechst 33342 and DAPI ((4′,6-diamidino-2-phenylindole).

SYBR Green I has shown little mutagenicity on frameshift indicator strains, indicating that it isn't likely to strongly intercalate.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I am using SYTOX AAdvanced as a dead cell stain, but all of my cells are labeling even though I am certain that they are supposed to be alive. These are adherent cells that I have trypsinized. Why am I getting false-dead signals?

SYTOX AAdvanced labels only dead cells because it is a cell impermeant dye. The dye can only enter cells that have a compromised plasma membrane. Trypsinization may cause temporary disruption of the plasma membrane, sufficient to allow staining with a cell impermeant dye. You can reduce the “false-dead” problem by either reducing the amount of trypsin and/or reduce the incubation time for trypsinization or use a gentler dissociation reagent such as TrypLE Express, TrypLESelect reagents, or Versene. After trypsinization, wash well, and if possible, allow a recovery time in normal culture media before staining with any of the SYTOX dyes.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

My cell cycle data show a single peak, not a proper cell cycle profile. How can I fix this?

There are several factors that contribute to the quality of the cell cycle profile. Cell number, dye concentration, incubation temperature, incubation time, flow rate (on a traditional flow cytometer utilizing hydrodynamic focusing), total number of cells acquired, elimination of dead cells, and removal of aggregates from data analysis should all be considered when analyzing the cell cycle.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.