Novex™ WedgeWell™ Tris-Glycine Welcome Pack, 4 to 12%
Novex™ WedgeWell™ Tris-Glycine Welcome Pack, 4 to 12%
Invitrogen™

Novex™ WedgeWell™ Tris-Glycine Welcome Pack, 4 to 12%

El paquete de bienvenida de Tris-glicina Novex proporciona todos los geles, tampones y reactivos de Tris-glicina Novex necesarios para empezar a usar el depósito de minigel.
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Número de catálogoPocillos
XP0412A10 pocillo
XP0412B12 pocillo
XP0412C15 pocillo
Número de catálogo XP0412A
Precio (MXN)
-
Pocillos:
10 pocillo
El paquete de bienvenida de Tris-glicina Novex proporciona todos los geles, tampones y reactivos de Tris-glicina Novex necesarios para empezar a usar el depósito de minigel. El depósito de minigel es compatible con todos los minigeles Novex y NuPAGE. Cada depósito de minigel puede albergar hasta dos geles por ciclo. El exclusivo diseño del depósito permite cargar cómodamente el gel en paralelo y mejora la visualización durante el uso. Los tiempos de procesamiento pueden variar en función de las condiciones del tampón y las fuentes de alimentación que se empleen.

El paquete de bienvenida de Tris-glicina Novex contiene:
• Depósito de minigel (A25977)
• Minigeles de Tris-glicina Novex, en formato WedgeWell (dos cajas, 20 geles)
• Tampón de desplazamiento SDS de Tris-glicina Novex (10X) (LC2675)
• Tampón de muestra SDS de Tris-glicina Novex (2X) (LC2676)
• Agente reductor de muestras NuPAGE (10X) (NP0004)
• Escalera de proteínas preteñida PageRuler Plus, de 10 a 250 kDa (26619)

Acerca del depósito de minigel
El depósito de minigel es compatible con todos los minigeles Novex y NuPAGE. Cada depósito de minigel puede albergar hasta dos geles por ciclo. El exclusivo diseño del depósito permite cargar cómodamente el gel en paralelo y mejora la visualización durante el uso. Los tiempos de procesamiento pueden variar en función de las condiciones del tampón y las fuentes de alimentación que se empleen.

Acerca de los geles de Tris-glicina Novex, formato WedgeWell
Los minigeles de Tris-glicina Novex son geles de poliacrilamida basados en electroforesis de proteínas Laemmli tradicional que permite el uso de muestras Laemmli y tampones de desplazamiento. Permiten un rendimiento uniforme y la separación de una amplia gama de proteínas en bandas bien resueltas. Los geles de Tris-glicina Novex, en formato WedgeWell, cuentan con novedosos pocillos en forma de cuña que permiten un volumen de carga hasta dos veces superior en comparación con otros geles de 1,0 mm de grosor. Los pocillos en forma de cuña también tienen aberturas más grandes, lo que facilita la carga de muestras.

Para transferir proteínas a una membrana, recomendamos utilizar el tampón de desplazamiento nativo de Tris-glicina Novex (LC2672) o el tampón de transferencia de Tris-glicina Novex (LC3675) para la transferencia húmeda tradicional utilizando el módulo Mini Blot (B1000). También se puede realizar una transferencia semiseca rápida con Invitrogen Power Blotter o una transferencia rápida en seco con el dispositivo de transferencia de gel iBlot 2 (IB21001).

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Especificaciones
Gel Thickness1,0 mm
Contenido del kitEscalera de proteínas preteñida PageRuler™ Plus
Línea de productosNovex, WedgeWell
Cantidad1 paquete de bienvenida
Condiciones de envíoAprobado para su envío a temperatura ambiente o en hielo húmedo
Para utilizar con (equipo)Depósito de minigel
Porcentaje del gelDel 4 al 12%
Tamaño de gelMini
Tipo de gelTris-Glicina
Intervalo de separaciónDe 30 a 250 kDa
Pocillos10 pocillo
Unit Size1 kit
Contenido y almacenamiento
Contiene:
Depósito de minigel • (n.º cat. A25977)
• geles de tris-glicina Novex™ WedgeWell™ del 4 al 12 %, 10 pocillos (2 cajas, 20 geles)
• tampón de desplazamiento SDS de tris-glicina Novex™ (10X)
tampón de desplazamiento SDS de tris-glicina • Novex™ (2X)
agente reductor de muestras • NuPAGE™ (10X)
estándar de proteínas preteñidas • PageRuler™

Almacene los componentes individuales según se indica en las etiquetas.

Preguntas frecuentes

Is it okay to use protein gels past their expiration date?

We do not recommend using gels past their expiration date because over time, the polyacrylamide hydrolyzes to acrylic acid and ammonia and this will affect the resolution of the proteins. Breakdown of polyacrylamide matrix is identified by:
- Ghost bands and doublets, seen first in the high molecular weight proteins
- Smiling of dye front across the gel, with bands in outer lanes becoming very slanted - proteins run slower there due to change in pH and pore size over time.


Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Electrophoresis and Western Blotting Support Center.

Can I run your protein gels overnight?

This is not really recommended, but it is always possible to increase run time by lowering the voltage of the run. In general, the relationships are linear - i.e., decreasing voltage by half will double the run time.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Electrophoresis and Western Blotting Support Center.

Do I need to increase the voltage when I run a 1.5 mm protein gel versus a 1.0 mm gel?

If you are running the gel at constant voltage, you do not need to increase the voltage regardless of the thickness of the gel.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Electrophoresis and Western Blotting Support Center.

Why do you recommend running your protein gels at constant voltage?

Using constant voltage allows the current and power to decrease during the run, providing a safety margin in case of a break in the system. Having lower power is a safety benefit and will also decrease the chances of experiencing an overheating of the gel. Further, the constant voltage setting does not need adjustment to account for differences in number or thickness of gels being run.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within ourProtein Gel 1D Electrophoresis Support Center.

I used one of your protein standards for a western transfer and noticed that some of the lower-molecular weight protein bands passed through the membrane. How can I resolve this issue?

- Decrease voltage, current or length of transfer time
- Make sure that the methanol concentration in the transfer buffer is proper; use a methanol concentration of 10-20% methanol removes the SDS from SDS-protein complexes and improves the binding of protein to the membrane.
- Make sure that the SDS concentration (if added) in the transfer buffer is proper, don't use more than 0.02-0.04% SDS. Using too much SDS can prevent binding of proteins to the membrane.
- Check the pore size of the membrane and the size of the target protein. Proteins smaller than 10 kDa will easily pass through a 0.45 µm pore size membrane. If proteins smaller than 10 kDa are of interest, it would be better to use a 0.2 µm pore size membrane.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Assays and Analysis Support Center.

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