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Más allá de la picadura: comprensión del diagnóstico de la alergia al veneno de insectos

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Venom allergy

Publicado: octubre de 2025


El orden de los himenópteros comprende más de 100 000 especies conocidas de insectos en todo el mundo.1 Algunos componentes del veneno de himenópteros son posibles alérgenos y pueden causar reacciones alérgicas locales o sistémicas después de la sensibilización mediada por IgE.1

La alergia al veneno de himenópteros no debe subestimarse

Tras una picadura inicial, el sistema inmunitario de las personas afectadas puede responder produciendo anticuerpos IgE específicos para alérgenos (sIgE). Las picaduras posteriores pueden desencadenar una respuesta inflamatoria más rápida. La alergia al veneno de himenópteros es una de las hipersensibilidades mediadas por IgE más graves debido al alto riesgo de anafilaxia grave e incluso mortal, y causa el 48 % de las reacciones anafilácticas graves que se producen en adultos europeos y el 20 % de las que se producen en niños.2

El papel de las pruebas de IgE específicas en el diagnóstico de la alergia al veneno de himenópteros

El diagnóstico de alergia al veneno está respaldado por la detección de anticuerpos sIgE utilizando extractos completos o componentes alergénicos individuales del veneno que se encuentran dentro del extracto completo. Se han caracterizado varios alérgenos de abejas y véspidos y están disponibles como antígenos recombinantes para diagnósticos resueltos por componentes (CRD).3

El CRD también ayuda a discriminar la sensibilización genuina de la reactividad cruzada entre especies.

La identificación precisa de los insectos que pican que provocan alergias es esencial para garantizar un tratamiento eficaz de las personas alérgicas al veneno de himenópteros con inmunoterapia específica para el veneno (ITV). Las pruebas diagnósticas que utilizan extractos de veneno completo con pruebas cutáneas y análisis serológicos se consideran el primer nivel de discriminación para la sensibilización al veneno de abeja frente a la de véspido en pacientes con antecedentes clínicos positivos. Como evaluación de segundo nivel, las pruebas serológicas que utilizan alérgenos recombinantes para diagnósticos resueltos por componentes pueden discriminar aún más la sensibilización genuina (veneno de abeja: Api m 1, 3 y 10 y veneno de avispa amarilla/veneno de Polistes dominula: Ves v 1 y Ves v 5/Pol d 5) de la reactividad cruzada entre especies (hialuronidasa: Api m 2 y dipeptidil peptidasa: Api m 5).3

Hasta el 50% de los pacientes con pruebas positivas al veneno son alérgicos tanto al veneno de abeja como de avispa4

Los diagnósticos basados en componentes resueltos mediante alérgenos de veneno recombinantes pueden mejorar la especificidad5, aumentando la probabilidad de éxito en la inmunoterapia con veneno.

Identificar las respuestas de sIgE a dianas moleculares específicas con ERC ayuda a afinar el diagnóstico al distinguir las sensibilizaciones específicas de la especie, correactivas o cruzadas.3 

Componentes alergénicos del veneno de abeja y véspido

El portafolio de IgE específica ImmunoCAPTM  para alergia al veneno de Hymenoptera consta de veneno de abeja melífera, veneno de avispa común (Vespula vulgaris) y veneno de avispa de papel (Polistes spp.).

 

Veneno de abeja
(Apis mellifera)

i1

Veneno de avispa amarilla común
(Vespula vulgaris)
i1 Veneno de avispa papelera
(Polistes dóminula)
i1

Alérgeno marcador diferenciador

Api m 1 (fosfolipasa A2)

Api m 3 (fosfatasa ácida)

Api m 10 (Icarpina)

i208
 

i215
 

i217

Ves v 1 (fosfolipasa A1)

Ves v5 (antígeno 5)
 

i211
 

i209

Pold 5 (antígeno 5)

i210

Alérgenos con reacción cruzada

Api m 2 (hialuronidasa)

Api m 5 (Dipeptidil peptidasa)

i214
 

i216

       

Cómo diagnosticar alergia a venenos de Hymenoptera con pruebas de IgE específica ImmunoCAPTM.

Descargar el algoritmo de prueba de alergia a veneno de himenópteros

Las pruebas con componentes de insectos que pican pueden ayudar a:

 

Discriminar entre sensibilización específica de la especie y reactividad cruzada2,3

 

Identificar los venenos responsables2,3

 

Facilitar una prescripción precisa
del ITV3

El papel de la triptasa en la elección de la inmunoterapia con veneno de insecto

Para los pacientes con antecedentes de anafilaxia grave por picadura de insecto y resultados negativos en las pruebas cutáneas y séricas para veneno, el diagnóstico se puede afinar aún más con pruebas de triptasa sérica.5

Un nivel basal elevado de triptasa puede ser un factor de riesgo significativo para reacciones graves repetidas a las picaduras de veneno junto con otros hallazgos clínicos que pueden indicar la necesidad de ITV.1,6,7

La triptasa ayuda a orientar el tratamiento de inmunoterapia con veneno1

Se debe considerar la inmunoterapia de por vida en los pacientes alérgicos al veneno con mastocitosis subyacente, ya que existe un mayor riesgo de recaída si se interrumpe el ITV.6,8  Existe un consenso entre las principales organizaciones de alergia sobre el valor de la triptasa en las pruebas.

Se debe medir la triptasa en pacientes con antecedentes de reacciones graves a picaduras.

– EAACI, AAAAI, WAO, ICON2
Antes de comenzar el ITV, debe medirse la triptasa en los pacientes.

– EAACI, AAAAI, WAO, ICON7

En pocas palabras, los resultados de la prueba de triptasa pueden ser de gran ayuda para:

  • Respaldar la evaluación clínica sobre la necesidad de tratamiento6
  • Guiar el tratamiento con inmunoterapia con veneno7
  • Decidir sobre el tratamiento de por vida6,8

 

 

 


 

 

 

 

 

Las pruebas ayudan a encontrar las respuestas, pero nuestro representante también puede ayudar

Contenido relacionado

Más información sobre los recursos y los temas mencionados en este artículo.

Allergen Encyclopedia

Access in-depth information on whole venom allergens and venom allergen components.

Venom Hymenoptera allergy

ImmunoCAP™ Specific IgE tests  

ImmunoCAP™ Tryptase test

In case of a suspected systemic allergic reaction

Referencias
  1. Rueff F, et al. Allergol Select 2023;7:154-190.
  2. Dramburg S, et al. Pediatr Allergy Immunol 2023;34(Suppl 28):e13854.
  3. Blank S, et al. J Allergy Clin Immunol Pract 2025;13(1):1-14.
  4. Kosnik M, Korosec P. Allergy Asthma Clin Immunol 2009;5(1):11.
  5. Golden DBK, et al. Ann Allergy Asthma Immunol 2017;118:28-54.
  6. Simons FE, et al. World Allergy Organ J 2014;7(1).
  7. Lange S, et al. Allergol Select 2024;8:299-303.
  8. Schuler CF, et al. J Allergy Clin Immunol 2021;148(5).