Pierce™ Polyacrylamid-Entsalzungssäulen
Thermo Scientific™

Pierce™ Polyacrylamid-Entsalzungssäulen

Thermo Scientific Pierce 1,8K MWCO (Molecular Weight Cut Off)-Polyacrylamid-Entsalzungssäulen sind gebrauchsfertige Einweg-Gelfiltrationssäulen zur Trennung von Proteinen und anderen Makromolekülen ausWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
8984925 Säulen
8986250 Säulen
Katalognummer 89849
Preis (EUR)
199,65
Exklusiv online
247,00
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Menge:
25 Säulen
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Thermo Scientific Pierce 1,8K MWCO (Molecular Weight Cut Off)-Polyacrylamid-Entsalzungssäulen sind gebrauchsfertige Einweg-Gelfiltrationssäulen zur Trennung von Proteinen und anderen Makromolekülen aus Puffersalzen und Reagenzien mit geringem Molekulargewicht.

Pierce 1,8K MWCO-Polyacrylamid-Entsalzungssäulen sind mit porösen Polyacrylamid-Beads vorgepackt und ermöglichen den Pufferaustausch und die Entsalzung von Proteinen und anderen makromolekularen Proben auf Molecular Weight Cut Off (MWCO)-Basis von 1800. Anders als Medien für Größenausschluss unterliegt Polyacrylamidharz keiner enzymatischen Degradation und dient nicht als Nährstoff für mikrobielles Wachstum. Das Harz ist sehr hydrophil, wodurch unerwünschte Bindungsinteraktionen zwischen Harz und Probenmolekülen minimiert werden. Eine Kontamination mit Zucker mit niedrigem Molekulargewicht (die mit vernetztem Dextran-Harz auftreten kann) stellt bei der Verwendung von Polyacrylamidharz kein Problem dar. Oxidationsmittel können entfernt werden, ohne den Träger zu zerstören. Dieses Harz ist anfällig für Hydrolyse von Amidgruppen unter extremen pH-Bedingungen. Daher wird ein pH-Betriebswert von 2 bis 10 bei Raumtemperatur empfohlen. Das Polyacrylamidharz kann auch bei einem pH-Wert von 5,5 bis 6,5 für 30 Minuten bei 120 °C autoklaviert werden.

Diese Säulen verwenden ein Harz, dessen Beads im feuchten Zustand einen Durchmesser von 45 bis 90 µm haben. Und sie eignen sich hervorragend für die Trennung von Peptiden und kleinen Makromolekülen (mit einer Größe über 1,8 kDa) von Puffersalzen und anderen Verbindungen (kleiner als 500 MW).

Merkmale von Polyacrylamid-Harz:
• Stabil in Wasser, Salzlösungen, organischen Lösungsmitteln und alkalischen oder sauren Bedingungen
• Ausgezeichnete Fließeigenschaften
• Hitzebeständig

Anwendungen:
• Entfernen von Salzen aus Proteinlösungen
• Entfernen von Phenol aus Nukleinsäurezubereitungen
• Abscheiden überschüssiger Crosslinker aus Konjugatzubereitungen
• Entfernen von überschüssigen Derivatmitteln aus modifizierten Proteinen
• Entfernen von nicht an Reaktionen beteiligten Farbstoffen aus fluoreszierenden Antikörpern
• Entfernung von freier Radiomarkierung aus markierten Proteinen
• Austausch eines Puffers gegen einen anderen

Schwerkraftfiltration von Harz umfasst das chromatographische Abscheiden von Molekülen verschiedener Größe nach ihren relativen Penetrationsfähigkeiten in eine geeignete stationäre Phase. Eine chromatographische Matrix besteht im Allgemeinen aus sehr kleinen, ungeladenen porösen Partikeln in einer wässrigen Lösung und wird in eine Säule verpackt und für die Abscheidung verwendet. Je nach Porengröße des in die Säule gepackten Mittels können verschiedene Trennungsgrade erzielt werden. Das Mittel kann so ausgewählt werden, dass Proteine oder große Moleküle vollständig ausgeschlossen werden, während kleine gelöste Substanzen noch erfasst werden. Große Moleküle werden nicht von den internen Poren des Harzes aufgenommen und treten zuerst aus der Säule aus. Die kleineren Moleküle können die Poren durchdringen. Anschließend können sie mit geringerer Geschwindigkeit durch die Säule gelangen. Diese kleineren Moleküle werden anschließend mit zusätzlichem Puffervolumen durch die Säule gespült.

Entsalzung und Pufferaustausch sind zwei der am weitesten verbreiteten Anwendungen der Harzfiltrationschromatographie.

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For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Die Schwerkraftgelfiltration umfasst die chromatographische Trennung von Molekülen verschiedener Größe nach ihren relativen Penetrationsfähigkeiten in eine geeignete stationäre Phase. Eine chromatographische Matrix besteht im Allgemeinen aus sehr kleinen, ungeladenen porösen Partikeln in einer wässrigen Lösung und wird in eine Säule verpackt und für die Abscheidung verwendet. Je nach Porengröße des in die Säule gepackten Mittels können verschiedene Trennungsgrade erzielt werden. Das Mittel kann so ausgewählt werden, dass Proteine oder große Moleküle vollständig ausgeschlossen werden, während kleine gelöste Substanzen noch erfasst werden. Große Moleküle werden nicht von den internen Poren des Gels aufgenommen und treten zuerst aus der Säule aus. Die kleineren Moleküle können die Poren durchdringen und dann mit geringerer Geschwindigkeit durch die Säule gelangen. Diese kleineren Moleküle werden anschließend mit einem zusätzlichen Puffervolumen durch die Säule gespült.
Specifications
BeschreibungPierce™ Polyacrylamid-Spin-Entsalzungssäulen, 7 K MWCO, 0,7 ml
ProdukttypSpin-Entsalzungssäule
AufreinigungszielPufferaustausch, Protein
Menge25 Säulen
SäulentypGrößenausschluss, Polyacrylamid-Harz
FormatZentrifugationssäule
MWCO7,0 kDa
ProduktliniePierce
Probenvolumen (metrisch)30 bis 120 µl
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Nach Erhalt bei 4 °C lagern.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

Besides precipitation with ammonium sulfate, what are some ways I can concentrate my protein sample?

You may remove excess solvent and smaller moieties by centrifugation through a microconcentrator. This will concentrate your protein sample.

(1) Choose microconcentrator tube (available from a variety of commercial suppliers) with a protein cutoff smaller than the molecular weight of the protein in the sample. Check our Pierce Protein Concentrators PES.

(2) Add 1 µL of 20% w/v SDS to a dry microconcentrator tube (if sample does not already contain SDS).

(3) Slowly add sample (a few microliters at a time) to membrane until membrane is completely wet. Centrifuge to near (but not complete) dryness.

(4) If intention is to desalt sample or buffer exchange: Add ~50 µL water to microconcentrator and spin until nearly dry. Repeat buffer exchange. Sample will remain on membrane. Check our Zeba desalting proteins.

(5) Using a new collection tube, invert membrane and spin at low speed (1000 x g) to elute protein from membrane. Add 2X SDS-Sample Buffer containing 10 mM DTT to membrane: vortex, invert and spin. Final volume should be ~20 µL.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Assays and Analysis Support Center.

What is the best way to remove small contaminants from my sample for mass spectrometry analysis?

For protein samples, Pierce Polyacrylamide Spin Desalting Columns (Cat. No. 89849) can be used to remove salts and other small molecular weight contaminates. Acetone precipitation (https://tools.thermofisher.com/content/sfs/brochures/TR0049-Acetone-precipitation.pdf) is recommended for low protein amounts provided you have at least 10 µg of sample.

For peptide samples derived from protein digests, we recommend using Pierce Peptide Desalting Spin Columns (Cat. No. 89852), Pierce C18 Spin Tips (Cat. No. 84850) or an in-line C18 trap column (https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/164564-CMD) for sample clean-up.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Mass Spectrometry Support Center.