Alexa Fluor™ 594 C5 Maleimid
Alexa Fluor&trade; 594 C<sub>5</sub> Maleimid
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 594 C5 Maleimid

Alexa Fluor™ 594 ist ein leuchtend roter Fluoreszenzfarbstoff, der mit 561-nm- oder 594-nm-Laserlinien erregt werden kann. Der Farbstoff Alexa Fluor™Weitere Informationen
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KatalognummerMenge
A102561 mg
Katalognummer A10256
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Alexa Fluor™ 594 ist ein leuchtend roter Fluoreszenzfarbstoff, der mit 561-nm- oder 594-nm-Laserlinien erregt werden kann. Der Farbstoff Alexa Fluor™ 594 ist wasserlöslich und pH-unempfindlich im Bereich von pH 4 bis pH 10 und wird für eine stabile Signalerzeugung in der Bildgebung und Durchflusszytometrie verwendet. Zusätzlich zu reaktiven Farbstoffformulierungen bieten wir Alexa Fluor™ 594-Farbstoff an, der mit einer Vielzahl von Antikörpern, Peptiden, Proteinen, Tracern und Amplifikationssubstraten konjugiert und für die Zellmarkierung und den Nachweis optimiert ist (mehr erfahren).

Das Alexa Fluor™ 594-Maleimidderivat ist das beliebteste Hilfsmittel zur Konjugation dieses Farbstoffs mit einem Protein oder Antikörper. Die daraus resultierenden Alexa Fluor™ 594 Konjugate weisen eine hellere Fluoreszenz und eine größere Photostabilität auf als die Konjugate anderer spektral ähnlicher Fluorophore.

Ausführliche Informationen zu diesem AlexaFluor™ Maleimid:

Fluorophormarkierung: Alexa Fluor™ 594 Farbstoff
Reaktive Gruppe: Maleimid
Reaktivität: Thiolgruppen an Proteinen und Liganden, Oligonukleotid-Thiophosphaten
Errregungs-/Emissionsmaxima (Ex/Em) des Konjugats: 588/612 nm
Extinktionskoeffizient: 96.000 cm-1M-1
Farbstoffe mit ähnlichem Spektrum: Texas Red
Molekulargewicht: 908,97

Typische Konjugationsreaktion
Das Protein sollte bei einer Konzentration von 50 bis -100 µM in einem geeigneten Puffer (10 bis 100 mM Phosphat, Tris oder HEPES) bei pH-Wert 7,0 bis 7,5 aufgelöst werden. In diesem pH-Bereich sind die Thiolgruppen des Proteins so nukleophil, dass sie trotz zahlreich vorhandener Proteinamingruppen, die protoniert und relativ unreaktiv sind, fast ausschließlich mit dem Reagenz reagieren. Wir empfehlen, an diesem Punkt jegliche Disulfidbrücken mit einem Reduktionsmittel 10-fachen molaren Überschusses, wie DTT oder TCEP, zu reduzieren. Überschüssiges DTT muss durch Dialyse entfernt werden. Nachfolgende Thiol-Modifikationen sollten unter sauerstofffreien Bedingungen durchgeführt werden, um eine Neubildung der Disulfid-Verbindungen zu verhindern. Diese Vorsichtsmaßnahmen sind bei der Verwendung von TCEP vor der Maleimid-Konjugation nicht erforderlich.

Das Alexa Fluor™-Maleimid wird in der Regel unmittelbar vor der Verwendung in hochwertigem, wasserfreiem Dimethylsulfoxid (DMSO) mit einer Konzentration von 1 bis 10 mM aufgelöst, und Stammlösungen sollten möglichst vor Licht geschützt werden. Im Allgemeinen wird diese Stammlösung der Proteinlösung tropfenweise unter Rühren hinzugefügt, um rund 10 bis 20 Mol Reagenz pro Mol Protein zu erzielen. Die Reaktion kann bei Raumtemperatur für 2 Stunden oder bei 4 °C über Nacht und vor Licht geschützt erfolgen. Alle unreagierten Thiol-reaktiven Reagenzien können durch Hinzufügen von überschüssigem Glutathion, Mercaptoethanol oder von anderem löslichen niedermolekularen Thiol verbraucht werden.

Konjugataufreinigung
Markierte Antikörper werden normalerweise vom freien Alexa Fluor™-Farbstoff in einer Gel-Filtrationssäule, z. B. Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o.ä., getrennt. Wählen Sie bei sehr großen bzw. kleinen Proteinen ein Gelfiltrationsmedium mit geeigneter molekularer Ausschlussgrenze (MWCO), oder entscheiden Sie sich für eine Reinigung per Dialyse. Wir bieten verschiedene Aufreinigungskits, die für unterschiedliche Mengen von Antikörperkonjugat optimiert sind:
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 0,5 – 1 mg (A33086)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 20 – 50 µg (A33087)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 50 – 100 µg (A33088)

Weitere Informationen zur Protein- und Antikörpermarkierung
Wir bieten eine breite Auswahl an Molecular Probes™ Antikörper- und Proteinmarkierungskits, passend zu Ihrem Ausgangsmaterial und Ihrer Experimentanordnung. Weitere Optionen finden Sie unter Antikörper-Markierungskits, oder nutzen Sie unser Auswahlwerkzeug für die Markierungschemie. Weitere Informationen zu unseren Markierungskits finden Sie unter Protein- und Nukleinsäuremarkierungskits—Kapitel 1.2 im Molecular Probes™ Handbuch.


’’’Wenn Sie in unserem Online-Katalog das Gesuchte nicht finden, erstellen wir gern für Sie ein Antikörper- oder Proteinkonjugat nach Ihren individuellen Vorgaben. Unser individualisierter Konjugationsservice arbeitet effizient und absolut vertraulich, und wir verbürgen uns für die Qualität unserer Arbeit. Wir sind ISO 9001:2000 zertifiziert.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Chemische ReaktivitätThiol
Emission612 nm
Anregung588 nm
Marker oder FarbstoffAlexa Fluor™ 594
ProdukttypFarbstoff
Menge1 mg
Reaktiver TeilMaleimid
VersandbedingungRaumtemperatur
MarkertypAlexa Fluor Farbstoffe
ProduktlinieAlexa Fluor
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.

Zitierungen und Referenzen (22)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Exocytotic insertion of calcium channels constrains compensatory endocytosis to sites of exocytosis.
Authors:Smith RM, Baibakov B, Ikebuchi Y, White BH, Lambert NA, Kaczmarek LK, Vogel SS
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:10684256
'Proteins inserted into the cell surface by exocytosis are thought to be retrieved by compensatory endocytosis, suggesting that retrieval requires granule proteins. In sea urchin eggs, calcium influx through P-type calcium channels is required for retrieval, and the large size of sea urchin secretory granules permits the direct observation of ... More
Coil-globule transition in the denatured state of a small protein.
Authors:Sherman E, Haran G
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:16857738
'Upon transfer from strongly denaturing to native conditions, proteins undergo a collapse that either precedes folding or occurs simultaneously with it. This collapse is similar to the well known coil-globule transition of polymers. Here we employ single-molecule fluorescence methods to fully characterize the equilibrium coil-globule transition in the denatured state ... More
Spatial dynamics of receptor-mediated endocytic trafficking in budding yeast revealed by using fluorescent alpha-factor derivatives.
Authors:Toshima JY, Toshima J, Kaksonen M, Martin AC, King DS, Drubin DG
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:16574772
'Much progress defining the order and timing of endocytic internalization events has come as a result of real-time, live-cell fluorescence microscopy. Although the availability of numerous endocytic mutants makes yeast an especially valuable organism for functional analysis of endocytic dynamics, a serious limitation has been the lack of a fluorescent ... More
Light-induced conformational changes of rhodopsin probed by fluorescent alexa594 immobilized on the cytoplasmic surface.
Authors:Imamoto Y, Kataoka M, Tokunaga F, Palczewski K
Journal:Biochemistry
PubMed ID:11106502
'A novel fluorescence method has been developed for detecting the light-induced conformational changes of rhodopsin and for monitoring the interaction between photolyzed rhodopsin and G-protein or arrestin. Rhodopsin in native membranes was selectively modified with fluorescent Alexa594-maleimide at the Cys(316) position, with a large excess of the reagent Cys(140) that ... More
Self-assembling light-harvesting systems from synthetically modified tobacco mosaic virus coat proteins.
Authors:Miller RA, Presley AD, Francis MB
Journal:J Am Chem Soc
PubMed ID:17319656
'A new protein-based approach has been developed for the construction of light-harvesting systems through self-assembly. The building blocks were prepared by attaching fluorescent chromophores to cysteine residues introduced on tobacco mosaic virus coat protein monomers. When placed under the appropriate buffer conditions, these conjugates could be assembled into stacks of ... More