Alexa Fluor™ 546 C5 Maleimide
Alexa Fluor&trade; 546 C<sub>5</sub> Maleimide
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 546 C5 Maleimide

Alexa Fluor™ 546 es un colorante de color rojo lejano brillante y fotoestable con una excitación adaptada idealmente para lasMás información
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Número de catálogoCantidad
A102581 mg
Número de catálogo A10258
Precio (MXN)
-
Cantidad:
1 mg
Alexa Fluor™ 546 es un colorante de color rojo lejano brillante y fotoestable con una excitación adaptada idealmente para las líneas de láser de 488 nm o 532 nm. El tinte Alexa Fluor™ 546, empleado para la generación estable de señales para la obtención de imágenes en citometría de flujo, es soluble en agua e insensible al pH entre pH 4 y pH 10. Además de las formulaciones de colorante reactivo, ofrecemos el colorante Alexa Fluor™ 546 conjugado con una serie de anticuerpos, péptidos, proteínas, marcadores y sustratos de amplificación optimizados para el etiquetado y la detección celular (más información).

El derivado de la maleimida de Alexa Fluor™ 546 es la herramienta más popular para conjugar el colorante con un grupo tiol en una proteína, oligonucleótido tiofosfato o ligando de bajo peso molecular. Los conjugados Alexa Fluor™ 546 resultantes presentan una fluorescencia más brillante y una mayor fotoestabilidad que los conjugados de otros fluoróforos espectralmente similares.

Información detallada sobre esta maleimida AlexaFluor™

Etiqueta de fluoróforo: Colorante Alexa Fluor™ 546
Grupo reactivo: maleimida
Reactividad: grupos tiol en proteínas y ligandos, oligonucleótidos tiofosforados
Excitación/emisiones del conjugado: 554/570 nm
Coeficiente de extinción: 93.000 cm-1 m-1
Colorantes similares espectrales: Rojo de rodamina, Cy3
Peso molecular: 1034,37

Reacción de conjugación habitual
La proteína debe disolverse en una concentración de entre 50 y 100 µM en un tampón adecuado (de 10 a 100 mM de fosfato, Tris o HEPES) con un pH de 7,0 a 7,5. En este intervalo de pH, los grupos tiol de la proteína son lo suficientemente nucleófilos para reaccionar casi exclusivamente con el reactivo en presencia de los más numerosos grupos amino de la proteína, que están protonados y son relativamente no reactivos. Se recomienda reducir los enlaces de disulfuro en este punto mediante un agente de reductor 10 veces en exceso molar, como DTT o TCEP. El exceso de DTT debe eliminarse por diálisis y la posterior modificación de tiol debe efectuarse sin presencia de oxígeno para evitar que los enlaces de disulfuro se vuelvan a formar; estas precauciones no son necesarias si se utiliza TCEP antes de la conjugación de maleimida.

La maleimida Alexa Fluor™ suele disolverse en dimetilsulfóxido (DMSO) anhidro en una concentración de 1 a 10 mm inmediatamente antes de su uso. Las soluciones madre deben protegerse de la luz en la medida de lo posible. Generalmente, esta solución madre se agrega a la solución de proteína gota a gota mientras se agita para producir aproximadamente de 10 a 20 moles de reactivo por mol de proteína, y la reacción puede proseguir a temperatura ambiente durante 2 horas o a 4 °C durante la noche, protegida de la luz. Cualquier reactivo al tiol que no haya reaccionado puede consumirse si se añade un exceso de glutatión, mercaptoetanol tiol de peso molecular bajo soluble.

Purificación del conjugado
Los anticuerpos etiquetados se separan normalmente del colorante Alexa Fluor™ mediante una columna de filtración en gel, como Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o equivalentes. Para cantidades mucho mayores o menores de proteínas, seleccione un medio de filtración en gel con un corte de peso molecular adecuado o purifique por diálisis. Ofrecemos varios kits de purificación optimizados para diferentes cantidades de conjugado de anticuerpos:
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 0,5-1 mg (A33086)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 20-50 µg (A33087)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 50-100 µg (A33088)

Más información sobre el etiquetado de proteínas y anticuerpos
Ofrecemos una amplia selección de kits de etiquetado de anticuerpos y proteínas Molecular Probes™ que se ajustan a su material de partida y a su configuración experimental. Consulte nuestros kits de etiquetado de anticuerpos o utilice nuestra herramienta de selección química de etiquetado para otras opciones. Para obtener más información acerca de nuestros kits de marcado, lea la sección 1.2 sobrekits para marcado de proteínas y ácidos nucleicos del manual de Molecular Probes™.

Creamos conjugados personalizados
Si no encuentra lo que busca en nuestro catálogo en línea, le prepararemos el conjugado de anticuerpos o proteínas que desee. Nuestro servicio de conjugación personalizada es eficiente y confidencial, y garantizamos la calidad de nuestro trabajo. Contamos con la certificación ISO 9001:2000.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Reactividad químicaTiol
Emisión570 nm
Excitación554 nm
Etiqueta o tinteAlexa Fluor™ 546
Tipo de productoTinte
Cantidad1 mg
Fracción reactivaMaleimida
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Tipo de etiquetaColorantes Alexa Fluor
Línea de productosAlexa Fluor
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Almacenar en el congelador (de – 5 a – 30 °C) y proteger de la luz.

Citations & References (17)

Citations & References
Abstract
Cofilin promotes stimulus-induced lamellipodium formation by generating an abundant supply of actin monomers.
Authors:Kiuchi T, Ohashi K, Kurita S, Mizuno K
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:17470633
'Cofilin stimulates actin filament disassembly and accelerates actin filament turnover. Cofilin is also involved in stimulus-induced actin filament assembly during lamellipodium formation. However, it is not clear whether this occurs by replenishing the actin monomer pool, through filament disassembly, or by creating free barbed ends, through its severing activity. Using ... More
The citrate carrier CitS probed by single-molecule fluorescence spectroscopy.
Authors:Kästner CN, Prummer M, Sick B, Renn A, Wild UP, Dimroth P
Journal:Biophys J
PubMed ID:12609868
'A prominent region of the Na(+)-dependent citrate carrier (CitS) from Klebsiella pneumoniae is the highly conserved loop X-XI, which contains a putative citrate binding site. To monitor potential conformational changes within this region by single-molecule fluorescence spectroscopy, the target cysteines C398 and C414 of the single-Cys mutants (CitS-sC398, CitS-sC414) were ... More
Pointed-end capping by tropomodulin3 negatively regulates endothelial cell motility.
Authors:Fischer RS, Fritz-Six KL, Fowler VM
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:12707310
'Actin filament pointed-end dynamics are thought to play a critical role in cell motility, yet regulation of this process remains poorly understood. We describe here a previously uncharacterized tropomodulin (Tmod) isoform, Tmod3, which is widely expressed in human tissues and is present in human microvascular endothelial cells (HMEC-1). Tmod3 is ... More
Protein translocation through the anthrax toxin transmembrane pore is driven by a proton gradient.
Authors:Krantz BA, Finkelstein A, Collier RJ
Journal:J Mol Biol
PubMed ID:16343527
'Protective antigen (PA) from anthrax toxin assembles into a homoheptamer on cell surfaces and forms complexes with the enzymatic components: lethal factor (LF) and edema factor (EF). Endocytic vesicles containing these complexes are acidified, causing the heptamer to transform into a transmembrane pore that chaperones the passage of unfolded LF ... More
Labeling of DNA via rearrangement of S-2-aminoethyl phosphorothioates to N-(2-mercaptoethyl)phosphoramidates.
Authors:Chen M, Gothelf KV,
Journal:Org Biomol Chem
PubMed ID:18292883
The reaction of phosphorothioates in DNA with 2-bromoethylammonium bromide results in S-2-aminoethyl phosphorothioates, which can rearrange to N-(2-mercaptoethyl)phosphoramidates providing a facile method for the generation of site-specific thiol labeling of DNA sequences. The applicability of this method was demonstrated by conjugation of the thiolated DNA sequence with Na-(3-maleimidylpropionyl) biocytin and ... More