Alexa Fluor™ 555 Hydrazide
Alexa Fluor™ 555 Hydrazide
Invitrogen™

Alexa Fluor™ 555 Hydrazide

Alexa Fluor™ 555 Hydrazid wird als Zell-Tracer und als reaktiver Farbstoff für die Markierung von Aldehyden oder Ketonen in PolysaccharidenWeitere Informationen
Have Questions?
KatalognummerMenge
A20501MP
auch als A-20501MP bezeichnet
1 mg
Katalognummer A20501MP
auch als A-20501MP bezeichnet
Preis (EUR)
536,00
Each
Zum Warenkorb hinzufügen
Menge:
1 mg
Preis (EUR)
536,00
Each
Zum Warenkorb hinzufügen
Alexa Fluor™ 555 Hydrazid wird als Zell-Tracer und als reaktiver Farbstoff für die Markierung von Aldehyden oder Ketonen in Polysacchariden oder Glykoproteinen verwendet. Alexa Fluor™ 555 ist ein leuchtend orange fluoreszierender Farbstoff. Der Farbstoff Alexa Fluor™ 555 wird für die Erzeugung stabiler Signale in der Bildgebung und Durchflusszytometrie verwendet und ist wasserlöslich sowie pH-unempfindlich im Bereich von pH 4 bis pH 10. Zusätzlich zu reaktiven Farbstoffformulierungen bieten wir den Alexa Fluor™ 555 Farbstoff konjugiert an eine Vielzahl von Antikörpern, Peptiden, Proteinen, Markierungssubstanzen und Amplifikationssubstraten an, die für die Markierung und Detektion von Zellen optimiert wurden (Erfahren Sie mehr).

Detaillierte Informationen zu diesem AlexaFluor™ Hydrazid:

• Fluorophor-Markierung: Alexa Fluor™ 555 Farbstoff
• Reaktive Gruppe: Hydrazid
• Reaktivität: Aldehyde oder Ketone in Polysacchariden oder Glykoproteinen
• Ex/Em des Konjugats: 554/567 nm
• Extinktionskoeffizient: 159.000 cm-1M-1
• Spektral ähnliche Farbstoffe: TRITC, Cy3
• Molekulargewicht: ∼1.150

Zell-Tracking- und Tracing-Anwendungen
Alexa Fluor™ Hydrazide und Hydroxylamine sind nützlich als nicht-membrandurchdringende, aldehyd-fixierbare Zell-Markierungssubstanzen mit niedrigem Molekulargewicht. Sie weisen hellere Fluoreszenz und höhere Fotostabilität auf als Zell-Markierungssubstanzen, die auf anderen Fluorophoren mit ähnlichem Spektrum basieren. Sie lassen sich problemlos durch Mikroinjektion, Infusion durch Patch-Pipette oder durch induzierte Aufnahme mithilfe unseres Influx™ Pinocytic Cell-Loading Reagenzes in die Zellen einbringen. Erfahren Sie mehr über das Tracking und Tracing von Zellen.

Glykoprotein- und Polysaccharid-Markierungsanwendungen
Alexa Fluor™ Hydrazide und Hydroxylamine sind reaktive Moleküle, mit deren Hilfe Biomoleküle, welche Aldehyde oder Ketone enthalten, mit Fluorophoren markiert werden können. Aldehyde und Ketone können durch periodat-vermittelte Oxidation von vicinalen Diolen in Polysaccharide und Glykoproteine eingeführt werden. Terminale Galaktosereste von Glykoproteinen können mithilfe der Galaktoseoxidase zu Aldehyden oxidiert werden.

Hydrazide versus Hydroxylamine
Hydrazinderivate reagieren mit Ketonen und Aldehyden zu relativ stabilen Hydrazonen. Hydroxylaminderivate (Aminooxyverbindungen) reagieren mit Aldehyden und Ketonen und ergeben Oxime. Oxime sind Hydrazonen im Hinblick auf hydrolytische Stabilität überlegen. Sowohl Hydrazone als auch Oxime können mit Natriumborohydrid (NaBH4) reduziert werden, um die Stabilität der Verbindung weiter zu erhöhen.

Erfahren Sie mehr über die Protein- und Antikörpermarkierung
Wir bieten eine große Auswahl an Molecular Probes™ Antikörper- und Proteinmarkierungskits, die zu Ihrem Ausgangsmaterial und Ihrer Versuchsanordnung passen. Weitere Optionen finden Sie unter Antikörper-Markierungskits, oder nutzen Sie unser Auswahlwerkzeug für die Markierungschemie. Weitere Informationen zu unseren Markierungskits finden Sie unter Protein- und Nukleinsäuremarkierungskits—Kapitel 1.2 im Molecular Probes™ Handbuch.


’’’Wenn Sie in unserem Online-Katalog das Gesuchte nicht finden, erstellen wir gern für Sie ein Antikörper- oder Proteinkonjugat nach Ihren individuellen Vorgaben. Unser individualisierter Konjugationsservice arbeitet effizient und absolut vertraulich, und wir verbürgen uns für die Qualität unserer Arbeit. Wir sind nach ISO 9001:2000 zertifiziert.

Ähnliche Produkte
DMSO (Dimethylsulfoxid) (D12345)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 0,5 – 1 mg (A33086)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 20 – 50 μg (A33087)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 50 – 100 μg (A33088)
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Chemische ReaktivitätCarbonsäure, Keton, Aldehyd
Emission567 nm
Anregung554 nm
Marker oder FarbstoffAlexa Fluor™ 555
ProdukttypHydrazid
Menge1 mg
Reaktiver TeilAmin, Hydrazid
VersandbedingungRaumtemperatur
MarkertypAlexa Fluor Farbstoffe
ProduktlinieAlexa Fluor
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Lagerung bei Raumtemperatur und vor Licht geschützt

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What dye can I use that is non-reactive and can show an injection site?

The non-reactive Alexa Fluor and Alexa Fluor hydrazide derivatives may be used for injection site visualization. Other options include the fluorescent polystyrene microspheres, FluoSpheres, and dye-conjugated dextrans. The hydrazide derivatives and 'fixable' dextrans are retained by cross-linking using an aldehyde-based fixative.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I injected a fluorescent tracer, but cannot detect it after tissue is fixed and sectioned. What am I doing wrong?

Confirm that the tracer you are using crosslinks to proteins or has a primary amine for fixation-either a hydrazide, lysine fixable dextran, or a protein conjugate.
Use aldehyde-based fixatives to cross link the amines on the tracer.
Inject a larger amount or higher concentration of the tracer. Tracers are generally injected at 1-20% concentrations (10 mg/mL or higher).
Confirm that you are using the correct fluorescent filter for detection. You can perform a spot test by pipetting a small amount of the undiluted stock solution of the tracer onto a slide, then view under the filter you are using on your microscope. This will confirm if the tracer fluorescence can be detected and the fluorescent microscope filter is working properly.
Review tissue fixation and handling procedures to confirm if any reagents or processing procedures could be affecting the tracer.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I have labeled my neurons with an Alexa Fluor conjugated biocytin to look at transport but I wanted to examine only retrograde transport and biocytin appears to be moving retrograde and anterograde. What should I do?

Observing both types of transport is typical for biocytin. The conjugated cholera toxin subunit B products have been observed to travel only retrogradely.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Do you have a neuronal tracer similar to Lucifer Yellow but in another fluorescent color?

Lucifer Yellow CH is a hydrazide, so any of our Alexa Fluor or fluorescent hydrazides could potentially be used. A listing of them can be found here. (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-tracing-tracking-and-morphology/neuronal-tracing/hydrazides-biocytins.html#prd)

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

How do I know which tracer to choose for my experiment?

Factors to consider are size of tracer, method of delivery (injection, direct application to tissue, etc.), and if the tracer needs to be fixable. Here are some links to details about the various classes of neuronal tracers we offer and how to choose between them:

Neuronal Tracing (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-tracing-tracking-and-morphology/neuronal-tracing.html)
Choosing a Tracer (https://www.thermofisher.com/us/en/home/references/molecular-probes-the-handbook/fluorescent-tracers-of-cell-morphology-and-fluid-flow/choosing-a-tracer.html)
Imaging Analysis (http://assets.thermofisher.com/TFS-Assets/BID/Reference-Materials/bioprobes-50-journal.pdf)

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Zitierungen und Referenzen (11)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Site-specific modification of AAV vector particles with biophysical probes and targeting ligands using biotin ligase.
Authors:Stachler MD, Chen I, Ting AY, Bartlett JS,
Journal:Mol Ther
PubMed ID:18560418
'We have developed a highly specific and robust new method for labeling adeno-associated virus (AAV) vector particles with either biophysical probes or targeting ligands. Our approach uses the Escherichia coli enzyme biotin ligase (BirA), which ligates biotin to a 15-amino-acid biotin acceptor peptide (BAP) in a sequence-specific manner. In this ... More
Counting contacts between neurons in 3D in confocal laser scanning images.
Authors:Wouterlood FG, Boekel AJ, Kajiwara R, Beliën JA,
Journal:J Neurosci Methods
PubMed ID:18471891
'Study of neuronal networks requires an inventory of the neurons, knowledge of fiber in- and output, and qualitative and quantitative data on the intrinsic connectivity. For this purpose we combined in rat hippocampus fluorescence neuroanatomical tracing and intracellular fluorochrome injection of neurons. Multichannel confocal laser scanning microscopy was followed by ... More
Signal sequence-independent membrane targeting of ribosomes containing short nascent peptides within the exit tunnel.
Authors:Bornemann T, Jöckel J, Rodnina MV, Wintermeyer W,
Journal:Nat Struct Mol Biol
PubMed ID:18391966
'Ribosomes synthesizing inner membrane proteins in Escherichia coli are targeted to the translocon in the plasma membrane by the signal recognition particle (SRP) and the SRP receptor, FtsY. Here we show using a purified system that membrane targeting does not require an exposed signal-anchor sequence, as SRP-dependent targeting takes place ... More
A novel role for MNTB neuron dendrites in regulating action potential amplitude and cell excitability during repetitive firing.
Authors:Leão RN, Leão RM, da Costa LF, Rock Levinson S, Walmsley B,
Journal:Eur J Neurosci
PubMed ID:18598256
'Principal cells of the medial nucleus of the trapezoid body (MNTB) are simple round neurons that receive a large excitatory synapse (the calyx of Held) and many small inhibitory synapses on the soma. Strangely, these neurons also possess one or two short tufted dendrites, whose function is unknown. Here we ... More
Mechanisms of quenching of Alexa fluorophores by natural amino acids.
Authors:Chen H, Ahsan SS, Santiago-Berrios MB, Abruña HD, Webb WW,
Journal:J Am Chem Soc
PubMed ID:20446733
Quenching of fluorophores by the same proteins that they covalently label is a phenomenon that is neither well-known nor well-characterized. It is often assumed that fluorophores are unperturbed by their target proteins. However, it has been observed that attached fluorophores can be quenched by contact with amino acids within the ... More