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Invitrogen™
X-Gal (5-Bromo-4-Chlor-3-Indolyl β-D-Galactopyranosid)
X-Gal ist ein weit verbreitetes chromogenes Substrat für β-Galactosidase. Liefert eine dunkelblaue Fällung an der Stelle der enzymatischen Aktivität. X-GalWeitere Informationen
| Katalognummer | Menge |
|---|---|
| B1690 | 1 g |
Katalognummer B1690
Preis (EUR)
256,78
Sonderangebot
Exklusiv online
Endet: 15-Mar-2026
347,00Ersparnis 90,22 (26%)
Each
Menge:
1 g
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X-Gal ist ein weit verbreitetes chromogenes Substrat für β-Galactosidase. Liefert eine dunkelblaue Fällung an der Stelle der enzymatischen Aktivität. X-Gal eignet sich für zahlreiche histochemische und molekularbiologische Anwendungen, einschließlich des Nachweises der lacZ-Aktivität in Zellen und Geweben. Im Gegensatz zu β-Glucuronidase als Genmarker kann β-Galactosidase ohne Aktivitätsverlust in Zellen und Geweben mit Glutaraldehyd fixiert und mit X-Gal in hoher Auflösung nachgewiesen werden.
• Chromogensubstrat
• Zellen-permeabel
• β-Galactosidase-Aktivität kann nach der Fixierung noch mit X-Gal nachgewiesen werden
Zusätzliche Informationen über Glykosidase-Enzyme
Glykosidase-Enzyme weisen eine sehr hohe Selektivität für die Hydrolyse ihrer bevorzugten Zucker auf. Beispielsweise hydrolysiert β-Galactosidase rasch β-D-Galactopyranoside, hydrolysiert aber in der Regel weder die anomeren α-D-Galactopyranoside noch die isomeren β-D-Glucopyranoside. Die endogene Glykosidase-Aktivität wird häufig zur Charakterisierung von Mikroorganismen und zur selektiven Markierung von Organellen in Säugetierzellen verwendet; Defekte der Glykosidase-Aktivität sind charakteristisch für mehrere Krankheiten.
Darüber hinaus sind Glykosidasen wichtige Reportergenmarker. Insbesondere lacZ, das β-Galactosidase kodiert, wird in Tieren und Hefen weitgehend als Reportergen verwendet, während das β-Glucuronidase-(GUS)-Gen ein beliebtes Reportergen in Pflanzen ist. Glykosidase-Substrate werden auch in Verbindung mit Glykosidase-konjugierten sekundären Nachweisreagenzien in immunhistochemischen Verfahren und Enzyme-Linked Immunoabsorbent Assays (ELISAs) verwendet. Sehen Sie sich alle unsere Molecular Probes™ fluorogenen und chromogenen Glykosidase-Substrate an.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke bei Menschen oder Tieren vorgesehen.
• Chromogensubstrat
• Zellen-permeabel
• β-Galactosidase-Aktivität kann nach der Fixierung noch mit X-Gal nachgewiesen werden
Zusätzliche Informationen über Glykosidase-Enzyme
Glykosidase-Enzyme weisen eine sehr hohe Selektivität für die Hydrolyse ihrer bevorzugten Zucker auf. Beispielsweise hydrolysiert β-Galactosidase rasch β-D-Galactopyranoside, hydrolysiert aber in der Regel weder die anomeren α-D-Galactopyranoside noch die isomeren β-D-Glucopyranoside. Die endogene Glykosidase-Aktivität wird häufig zur Charakterisierung von Mikroorganismen und zur selektiven Markierung von Organellen in Säugetierzellen verwendet; Defekte der Glykosidase-Aktivität sind charakteristisch für mehrere Krankheiten.
Darüber hinaus sind Glykosidasen wichtige Reportergenmarker. Insbesondere lacZ, das β-Galactosidase kodiert, wird in Tieren und Hefen weitgehend als Reportergen verwendet, während das β-Glucuronidase-(GUS)-Gen ein beliebtes Reportergen in Pflanzen ist. Glykosidase-Substrate werden auch in Verbindung mit Glykosidase-konjugierten sekundären Nachweisreagenzien in immunhistochemischen Verfahren und Enzyme-Linked Immunoabsorbent Assays (ELISAs) verwendet. Sehen Sie sich alle unsere Molecular Probes™ fluorogenen und chromogenen Glykosidase-Substrate an.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für therapeutische oder diagnostische Zwecke bei Menschen oder Tieren vorgesehen.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
ZellpermeabilitätMembrangängig
Zur Verwendung mit (Anwendung)Molekularbiologie
Menge1 g
VersandbedingungRaumtemperatur
SubstratBeta-Gal-Substrat
NachweisverfahrenKolorimetrisch
Substrate PropertiesChemisches Substrat
SubstrattypBeta-Gal-Substrat
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Im Gefrierschrank lagern (-5 bis -30 °C).
Häufig gestellte Fragen (FAQ)
How do I resuspend IPTG and X-Gal?
Zitierungen und Referenzen (141)
Zitierungen und Referenzen
Abstract
Identification of residues of CXCR4 critical for human immunodeficiency virus coreceptor and chemokine receptor activities.
Journal:The Journal of biological chemistry
PubMed ID:10825158
Subzonal organization of olfactory sensory neurons projecting to distinct glomeruli within the mouse olfactory bulb.
Journal:J Comp Neurol
PubMed ID:12619077
'Olfactory sensory neurons located in the nasal neuroepithelium send their axons directly into the olfactory bulb, where they contact the dendrites of second-order neurons in specialized spherical structures called glomeruli; each sensory neuron projects to a single glomerulus. All neurons expressing the same odorant receptor gene are confined to distinct
Detection of rare antigen-presenting cells by the lacZ T-cell activation assay suggests an expression cloning strategy for T-cell antigens.
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:1378619
'The alpha/beta T-cell receptor a complex ligand formed by the association of antigenic peptides with molecules of the major histocompatibility complex (MHC). The inherent limitations of the conventional T-cell activation assays used to detect these peptide/MHC ligands have, until now, hampered the development of expression cloning systems for T-cell antigens.
Rac1 inhibits myogenic differentiation by preventing the complete withdrawal of myoblasts from the cell cycle.
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:11489882
'The small GTPase protein Rac1 is involved in a wide range of biological processes, yet its role in cell differentiation is mostly unknown. Here we show that Rac1 activity is high in proliferating myoblasts and decreases during the differentiation process. To analyze the involvement of Rac1 in muscle differentiation, different
Regulation of neuronal traits by a novel transcriptional complex.
Journal:Neuron
PubMed ID:11516394
'The transcriptional repressor, REST, helps restrict neuronal traits to neurons by blocking their expression in nonneuronal cells. To examine the repercussions of REST expression in neurons, we generated a neuronal cell line that expresses REST conditionally. REST expression inhibited differentiation by nerve growth factor, suppressing both sodium current and neurite