Di-2-ANEPEQ (JPW 1114)
Di-2-ANEPEQ (JPW 1114)
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Di-2-ANEPEQ (JPW 1114)

Los colorantes ANEP son moléculas que fluorescen en respuesta a los cambios eléctricos potenciales en su entorno. Se trata deMás información
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Número de catálogoCantidad
D6923
también denominado D-6923
5 mg
Número de catálogo D6923
también denominado D-6923
Precio (MXN)
-
Cantidad:
5 mg
Los colorantes ANEP son moléculas que fluorescen en respuesta a los cambios eléctricos potenciales en su entorno. Se trata de sondas de respuesta rápida que funcionan mediante cambios en su estructura electrónica y, en consecuencia, en sus propiedades de fluorescencia, en respuesta a cambios en el campo eléctrico circundante Su respuesta óptica es lo suficientemente rápida para detectar cambios potenciales transitorios (milisegundo) en células excitables, incluyendo neuronas individuales, células cardíacas y cerebros intactos. Sin embargo, la magnitud de su cambio de fluorescencia dependiente del potencial suele ser pequeña; las sondas de respuesta rápida suelen mostrar un 2–10 % de cambio de fluorescencia por 100 mV. Además, estos colorantes muestran un desplazamiento dependiente del potencial en sus espectros de excitación, permitiendo así la cuantificación del potencial de la membrana utilizando mediciones de la relación de excitación

Obtenga más información sobre los indicadores de iones, incluidos los indicadores de calcio, potasio, pH y potencial de la membrana ›

Especificaciones del colorante ANEP potencialmente sensible:
• Las Ex/Em máximas unidas a las membranas de fosfolípidos modelo son ∼465/635 nm (pero las propiedades espectrales dependen en gran medida del entorno)
• No fluorescente hasta que se une a las membranas
• Molécula catiónica; soluble en agua (di-2-ANEPEQ es un colorante ANEP soluble en agua)
• El colorante se introduce normalmente en las células por microinyección
• Sonda de respuesta rápida, adecuada para detectar posibles cambios en la membrana de menos de submilisegundos


Aplicaciones para sondas potenciométricas
La membrana plasmática de la célula normalmente tiene un potencial transmembrana de aproximadamente –70 mV (negativo en el interior) como consecuencia de los gradientes de concentración de K+, Na+ y Cl- que se mantienen mediante procesos de transporte activos. Las sondas potenciométricas ofrecen un método indirecto de detección de la translocación de estos iones.

Los aumentos y disminuciones en el potencial de la membrana, conocidos como hiperpolarización y despolarización de la membrana respectivamente, desempeñan un papel central en muchos procesos fisiológicos, incluidas la propagación del impulso nervioso, la contracción muscular, la señalización celular y el control del canal iónico. Las sondas potenciométricas son herramientas importantes para el estudio de estos procesos.

Encuentre más colorantes ANEP
Ofrecemos colorantes ANEP en varias formas. Consulte Sondas de respuesta rápida, sección 22.2 del manual de Molecular Probes™ para obtener más información sobre estas sondas.

Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso diagnóstico o terapéutico en humanos ni en animales.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Método de detecciónFluorescente
Cantidad5 mg
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Localización subcelularMembranas celulares & lípidos
Colorinfrarrojo
Para utilizar con (equipo)Microscopio de fluorescencia, Lector de microplacas
Tipo de productoColorante ANEP
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Almacenar a temperatura ambiente y proteger de la luz.

Preguntas frecuentes

I am seeing high background outside of my neuronal cells when using membrane potential indicators. What can I do to reduce background?

If you use our FluoVolt Membrane Potential Kit (Cat. No. F10488), the kit provides a background suppressor to reduce this problem. For other indicators, consider the use of BackDrop Background Suppressor (Cat no. R37603, B10511, and B10512).

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What is the difference between fast and slow-response membrane potential probes?

Molecules that change their structure in response to the surrounding electric field can function as fast-response probes for the detection of transient (millisecond) potential changes. Slow-response dyes function by entering depolarized cells and binding to proteins or membranes. Increased depolarization results in additional dye influx and an increase in fluorescence, while hyperpolarization is indicated by a decrease in fluorescence. Fast-response probes are commonly used to image electrical activity from intact heart tissues or measure membrane potential changes in response to pharmacological stimuli. Slow-responding probes are often used to explore mitochondrial function and cell viability.

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What type of membrane potential indicators do you offer and how should I choose one for my experiment?

A membrane potential indicator selection guide can be found here (https://www.thermofisher.com/us/en/home/life-science/cell-analysis/cell-viability-and-regulation/ion-indicators/membrane-potential-indicators.html).

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Citations & References (26)

Citations & References
Abstract
Dye screening and signal-to-noise ratio for retrogradely transported voltage-sensitive dyes.
Authors:Tsau Y, Wenner P, O'Donovan MJ, Cohen LB, Loew LM, Wuskell JP
Journal:J Neurosci Methods
PubMed ID:9007751
'Using a novel method for retrogradely labeling specific neuronal populations, we tested different styryl dyes in attempt to find dyes whose staining would be specific, rapid, and lead to large activity dependent signals. The dyes were injected into the ventral roots of the isolated chick spinal cord from embryos at ... More
Intrasarcomere [Ca2+] gradients and their spatio-temporal relation to Ca2+ sparks in rat cardiomyocytes.
Authors:Tanaka H, Sekine T, Kawanishi T, Nakamura R, Shigenobu K
Journal:J Physiol
PubMed ID:9490830
'1. Line-scan analyses of spontaneous Ca2+ sparks, non-propagating local rises in Ca2+ concentration, and the early phase of Ca2+ transients in cardiomyocytes were performed with a rapid-scanning laser confocal microscope (Nikon RCM8000) and fluo-3. 2. On electrical stimulation, points at which rise in Ca2+ began earliest were observed at regular ... More
Optical recording from cerebellar Purkinje cells using intracellularly injected voltage-sensitive dyes.
Authors:Kogan A, Ross WN, Zecevic D, Lasser-Ross N
Journal:Brain Res
PubMed ID:8624715
'We evaluated several techniques for their ability to record membrane potential changes with voltage-sensitive dyes introduced into CNS neurons in the brain slice preparation. Using a probe designed for intracellular application, JPW1114, we found that iontophoresis or pressure pulses could not push the lipophilic dye through electrodes whose resistance was ... More
Visual stimuli induce waves of electrical activity in turtle cortex.
Authors:Prechtl JC, Cohen LB, Pesaran B, Mitra PP, Kleinfeld D
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:9207142
'The computations involved in the processing of a visual scene invariably involve the interactions among neurons throughout all of visual cortex. One hypothesis is that the timing of neuronal activity, as well as the amplitude of activity, provides a means to encode features of objects. The experimental data from studies ... More
Comparison of fluorescent voltage-sensitive dyes for multisite optical recording in hamster cerebral cortex by measurement of bicuculline-induced epileptiform events.
Authors:deBeer Zeiger J
Journal:Neuroimage
PubMed ID:9345545
'Two fluorescent voltage-sensitive dyes, RH795 and DI-2-ANEPPQ, were compared for in vivo multisite optical recording from the gustatory insular cortex of the golden Syrian hamster, the first reported use of DI-2-ANEPPQ in a mammalian brain preparation. The exposed cortex of the anesthetized hamster was stained with a 500 microM solution ... More