Microbilles de compensation Ultracomp eBeads™
Invitrogen™

Microbilles de compensation Ultracomp eBeads™

Les UltraComp eBeads™ réagissent avec les anticorps de souris, de rat et de hamster, et sont indépendantes de la chaîneAfficher plus
Have Questions?
Modifier l'affichagebuttonViewtableView
RéférenceQuantité
01-2222-4125 tests
01-2222-42100 tests
Référence 01-2222-41
Prix (EUR)
145,00
Each
Quantité:
25 tests
Prix (EUR)
145,00
Each
Les UltraComp eBeads™ réagissent avec les anticorps de souris, de rat et de hamster, et sont indépendantes de la chaîne légère des immunoglobulines. Elles sont conçues pour être utilisées en compensation avec tous les fluorochromes excités par lasers ultraviolet (355 nm), violet (405 nm), bleu (488 nm), vert (532 nm), jaune-vert (561 nm) et rouge (633 à 640 nm). Les microbilles sont des particules sphériques qui peuvent être colorées avec des anticorps conjugués au fluorochrome individuels pour une utilisation comme contrôles de compensation à couleur unique.

Chaque goutte de microbilles contient deux populations : une population positive qui capturera tout anticorps de souris, de rat ou de hamster et une population négative qui ne réagira pas avec l’anticorps. Lorsqu’un anticorps conjugué au fluorochrome est ajouté aux microbilles, les populations positives et négatives en résultent. Cette distribution bimodale peut être utilisée pour les contrôles de compensation à couleur unique dans les expériences de cytométrie en flux multicolore.

Les UltraComp eBeads sont compatibles avec tous les fluorochromes excités par un laser ultraviolet (355 nm) ou violet (405 nm). Elles doivent être utilisées avec les tampons de coloration standard qui contiennent du PBS ou HBSS, une protéine telle que BSA ou SVF et de l’azoture de sodium. Aucun autre additif ne doit être utilisé. Pour plus d’informations, contactez le support technique.

Réactivité / espèces
Hamster, souris, rat

Application signalée
Analyse par cytométrie en flux

Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
À utiliser avec (équipement)Cytomètre en flux, Cytomètre en flux
Nbre de tests25 dosages
Quantité25 tests
Gamme de produitseBeads
Type de produitMicrobilles de compensation
Unit SizeEach

Foire aux questions (FAQ)

How long are UltraComp eBeads Compensation Beads (Cat. No. 01-2222-41, 01-2222-42) stable after staining?

After staining, UltraComp eBeads Compensation Beads (Cat. No. 01-2222-41, 01-2222-42) are stable for up to 3 days if the samples are stored in a fixative. If the samples are stored in FACS buffer, they are stable for 1 week.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Flow Cytometry Support Center.

I am performing flow cytometry. My compensation matrix has values over 100. That's not possible is it?

It is possible. But if you have a lot of values over 100, you probably need to look at the voltages that you are using for your data collection.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

I’ve been told that I need to compensate my data for flow cytometry analysis. What does that mean?

By running single-color controls, it is possible to remove signal of one fluorophore that spills over into the collection channel for another fluorophore.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

What kind of controls do I need for flow cytometry?

For compensation, you need to prepare a singly stained sample (or compensation beads) for each color parameter that you are using. In addition, we recommend that you use FMO (flow minus one) controls. These are controls in which you label cells or beads with every color in your panel, omitting one. Make one FMO control for each color. These controls are important for helping you properly set gates on your data.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Why should I worry about compensation in flow cytometry analysis?

In a perfect world, the fluorescence emission profile for each individual fluorophore would be a very intense, narrow peak, well separated from all other emission peaks. In reality, organic dyes and fluorescent proteins have broad emission peaks, and compensation must be employed (during or after data acquisition) to correctly assign fluorescence signal to each fluorophore. Compensation is important because it removes fluorescent signal from overlapping spectra so you know that the signal you see is only the signal from the fluorophore of interest.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.