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Citations et références (8)
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Advanced DMEM/F-12
Le milieu Advanced DMEM ⁄ F-12 (Dulbecco’s Modified Eagle Medium/Ham’s F-12) est un milieu basal communément utilisé, qui permet laAfficher plus
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| Référence | Quantité |
|---|---|
| 12634028 | 10 x 500 mL |
| 12634010 | 500 mL |
Référence 12634028
Prix (EUR)
446,00
Each
Quantité:
10 x 500 mL
Prix (EUR)
446,00
Each
Le milieu Advanced DMEM ⁄ F-12 (Dulbecco’s Modified Eagle Medium/Ham’s F-12) est un milieu basal communément utilisé, qui permet la culture de cellules de mammifère avec une supplémentation moindre en sérum de veau fœtal (SVF). Par rapport au DMEM ⁄ F-12 classique, la supplémentation en sérum peut être réduite de 50 à 90 % sans que cela affecte la vitesse de croissance ou la morphologie. Parmi les cellules mises en culture avec succès dans le milieu Advanced DMEM ⁄ F-12, sans adaptation, figurent les cellules MRC-5, SP2, Vero, WI-38 et Jurkat.
La formulation complète est disponible.
Utilisation du DMEM ⁄ F-12 avancé
Le DMEM ⁄ F-12 avancé se différencie d’autres milieux par l’ajout des ingrédients suivants pour réduire la quantité de sérum utilisée : éthanolamine, glutathion, acide ascorbique, insuline, transferrine, albumine de sérum de bovin riche en lipides AlbuMAX™ II pour culture cellulaire, ainsi que les éléments suivants à l’état de traces : sélénite de sodium, métavanadate d’ammonium, sulfate cuprique et chlorure de manganèse. Le DMEM ⁄ F-12 avancé nécessite une supplémentation de 1 à 5 % de sérum de veau fœtal et de 4 mM de L-glutamine ou de supplément GlutaMAX™. De nombreuses lignées cellulaires ne nécessitent pas d’adaptation à ce milieu. La concentration de sérum de veau fœtal doit être optimisée pour chaque lignée cellulaire afin d’obtenir une réduction maximale du sérum. Le DMEM ⁄ F-12 avancé utilise un système de tampon au bicarbonate de sodium (3,7 g / l) et nécessite donc un environnement contenant 5 à 10 % de CO2 pour préserver le pH physiologique.
Système de qualité et fabrication conforme aux BPFa
Pour assurer la continuité de la chaîne d’approvisionnement, nous fabriquons le DMEM ⁄ F-12 avancé sur deux sites distincts situés à Grand Island, dans l’État de New York et en Écosse, au Royaume-Uni. Les deux sites sont conformes aux BPFa, certifiés ISO 13485 et homologués par la FDA comme fabricants de dispositifs médicaux.
Ce milieu Advanced DMEM ⁄ F-12 est fabriqué comme suit :
| Avec | Sans |
| • Glucose | • L-glutamine |
| • Acides aminés non essentiels | • HEPES |
| • Pyruvate de sodium | |
| • Rouge de phénol |
La formulation complète est disponible.
Utilisation du DMEM ⁄ F-12 avancé
Le DMEM ⁄ F-12 avancé se différencie d’autres milieux par l’ajout des ingrédients suivants pour réduire la quantité de sérum utilisée : éthanolamine, glutathion, acide ascorbique, insuline, transferrine, albumine de sérum de bovin riche en lipides AlbuMAX™ II pour culture cellulaire, ainsi que les éléments suivants à l’état de traces : sélénite de sodium, métavanadate d’ammonium, sulfate cuprique et chlorure de manganèse. Le DMEM ⁄ F-12 avancé nécessite une supplémentation de 1 à 5 % de sérum de veau fœtal et de 4 mM de L-glutamine ou de supplément GlutaMAX™. De nombreuses lignées cellulaires ne nécessitent pas d’adaptation à ce milieu. La concentration de sérum de veau fœtal doit être optimisée pour chaque lignée cellulaire afin d’obtenir une réduction maximale du sérum. Le DMEM ⁄ F-12 avancé utilise un système de tampon au bicarbonate de sodium (3,7 g / l) et nécessite donc un environnement contenant 5 à 10 % de CO2 pour préserver le pH physiologique.
Système de qualité et fabrication conforme aux BPFa
Pour assurer la continuité de la chaîne d’approvisionnement, nous fabriquons le DMEM ⁄ F-12 avancé sur deux sites distincts situés à Grand Island, dans l’État de New York et en Écosse, au Royaume-Uni. Les deux sites sont conformes aux BPFa, certifiés ISO 13485 et homologués par la FDA comme fabricants de dispositifs médicaux.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Lignée cellulaireMRC-5, SP2, Vero, WI-38 et Jurkat
Concentration1 X
Qualité de fabricationConforme aux BPFa en vertu de la norme ISO 13485
Gamme de produitsGibco
Type de produitDMEM (milieu Eagle modifié de Dulbecco)/F-12
Quantité10 x 500 mL
Durée de conservation12 mois à compter de la date de fabrication
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
ClassificationOrigine animale
FormeLiquide
Serum LevelSérum réduit
StérilitéStérilisation par filtration
Sterilization MethodSterile-filtered
Avec additifsHaute teneur en glucose, Rouge de phénol, Pyruvate de sodium, Acides aminés non essentiels (AANE)
Sans additifSans glutamine, Sans HEPES
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conditions de stockage : 2 à 8°C. Conserver à l’abri de la lumière
Conditions d’expédition : température ambiante
Durée de conservation : 12 mois à compter de la date de fabrication
Conditions d’expédition : température ambiante
Durée de conservation : 12 mois à compter de la date de fabrication
Foire aux questions (FAQ)
Can NSCs generated using PSC Neural Induction Medium be expanded in the PSC Neural Induction Medium or do they need to be in the recommended NSC expansion medium, as stated in the product manual?
Do you offer DMEM/F12 medium without folic acid?
How long can I keep my media after supplementing with serum?
My medium was shipped at room temperature but it is supposed to be stored refrigerated. Is it okay?
How can I remove mycoplasma contamination from my cell culture medium?
Citations et références (8)
Citations et références
Abstract
In vitro generation of human pluripotent stem cell derived lung organoids.
Journal:eLife
PubMed ID:25803487
Recent breakthroughs in 3-dimensional (3D) organoid cultures for many organ systems have led to new physiologically complex in vitro models to study human development and disease. Here, we report the step-wise differentiation of human pluripotent stem cells (hPSCs) (embryonic and induced) into lung organoids. By manipulating developmental signaling pathways hPSCs
Organoid cultures recapitulate esophageal adenocarcinoma heterogeneity providing a model for clonality studies and precision therapeutics.
Journal:Nature communications
PubMed ID:30061675
Esophageal adenocarcinoma (EAC) incidence is increasing while 5-year survival rates remain less than 15%. A lack of experimental models has hampered progress. We have generated clinically annotated EAC organoid cultures that recapitulate the morphology, genomic, and transcriptomic landscape of the primary tumor including point mutations, copy number alterations, and mutational
Long-term expansion of epithelial organoids from human colon, adenoma, adenocarcinoma, and Barrett's epithelium.
Journal:Gastroenterology
PubMed ID:21889923
Background & aims: We previously established long-term culture conditions under which single crypts or stem cells derived from mouse small intestine expand over long periods. The expanding crypts undergo multiple crypt fission events, simultaneously generating villus-like epithelial domains that contain all differentiated types of cells. We have adapted the culture
Single Lgr5 stem cells build crypt-villus structures in vitro without a mesenchymal niche.
Journal:Nature
PubMed ID:19329995
The intestinal epithelium is the most rapidly self-renewing tissue in adult mammals. We have recently demonstrated the presence of about six cycling Lgr5(+) stem cells at the bottoms of small-intestinal crypts. Here we describe the establishment of long-term culture conditions under which single crypts undergo multiple crypt fission events, while
In vitro expansion of single Lgr5+ liver stem cells induced by Wnt-driven regeneration.
Journal:Nature
PubMed ID:23354049
The Wnt target gene Lgr5 marks actively dividing stem cells in Wnt-driven, self-renewing tissues such as small intestine and colon(1), stomach(2) and hair follicles(3). A 3D culture system allows long-term clonal expansion of single Lgr5(+) stem cells into transplantable organoids that retain many characteristics of the original epithelial architecture(2, 4,