16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol
16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol
16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol
16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol
16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol
16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol
Thermo Scientific™

16 % aldéhyde formique (p/v) Pierce™, sans méthanol

Les ampoules de formaldéhyde Pierce Thermo Scientific sont des flacons de formaldéhyde de grande qualité, sans méthanol, à utiliser commeAfficher plus
Have Questions?
Modifier l'affichagebuttonViewtableView
RéférenceQuantité
2890810 x 10 ml
2890610 x 1 ml
Référence 28908
Prix (EUR)
92,00
Each
Ajouter au panier
Quantité:
10 x 10 ml
Grand volume ou format personnalisé
Prix (EUR)
92,00
Each
Ajouter au panier
Les ampoules de formaldéhyde Pierce Thermo Scientific sont des flacons de formaldéhyde de grande qualité, sans méthanol, à utiliser comme fixateur général et comme agent de réticulation réversible d’amines pour les échantillons tissulaires d’acides nucléiques et de protéines.

La disponibilité d’une solution de formaldéhyde de haute qualité en ampoule scellée permet d’économiser du temps précieux et élimine les besoins et les dangers associés à la préparation de la solution directement à partir du paraformaldéhyde. Le formaldéhyde Pierce est soigneusement préparé directement à partir de paraformaldéhyde granulaire et scellé sous atmosphère inerte dans des ampoules de 1 ml et de 10 ml. Le conditionnement dans des ampoules stabilise la préparation en protégeant la solution de l’oxydation de l’air et de la lumière, permettant ainsi d’avoir accès à du formaldéhyde “frais” à chaque fois.

Caractéristiques des ampoules de formaldéhyde à 16 % sans méthanol :

Frais—la solution de formaldéhyde reste stable et exempte de contamination dans une ampoule ambrée prélimée.
Bien dimensionnée—les tailles de conditionnement sont destinées à toutes sortes d’applications, depuis la fixation de cellules dans des cultures ciblées aux applications impliquant les protéines intracellulaires.
Concentration initiale pratique—la solution de formaldéhyde à 16 % poids/volume simplifie la dilution à la concentration de travail requise.
Minimise les déchets—tailles d’emballage de 1 ml et 10 ml permettant de sélectionner un produit qui entraînera moins de déchets et minimisera les problèmes d’élimination.

Conditionnement d’ampoules ciblé en fonction de l’application
Les tailles d’emballage de la solution de formaldéhyde (formaline) à 16 % sont destinées aux utilisateurs à faible et à haut volume. La taille de conditionnement appropriée est choisie en fonction des applications les plus courantes qui nécessitent une solution de formaldéhyde fraiche et sans méthanol. La solution à 16 % (poids/volume) simplifie la dilution pour chaque application et le conditionnement adapté à l’application minimise les déchets.

• Les ampoules de 1 ml sont destinées aux applications impliquant les protéines intracellulaires comme l’immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) ou la recherche sur les interactions protéiques.
• Les ampoules de 10 ml sont destinées à la bioimagerie (analyse à haute teneur), telles que la fixation des cellules sur une plaque de culture avant l’analyse des images.

“Fraîchement préparé” scellé dans des ampoules
Notre solution de formaldéhyde est préparée sous forme d’une solution de paraformaldéhyde (solide granulaire pur) à 16 % (p/v) dans de l’eau distillée/déionisée. La stabilisation de la solution est importante car les solutions de formaldéhyde s’oxydent en acide formique et finissent par se repolymériser en paraformaldéhyde. La plupart des protocoles exigent du formaldéhyde sans méthanol, ce qui indique qu’il doit être fraichement préparé. Cette solution de formaldéhyde est scellée dans des ampoules immédiatement après la formulation, sous atmosphère inerte. Le conditionnement dans des ampoules stabilise la préparation en permettant d’avoir accès à du formaldéhyde “frais” à chaque fois.

Pour plus de sécurité lors de l’ouverture des ampoules en verre, envisagez d’utiliser nos casse-ampoules, qui sont des dispositifs de sécurité jetables qui protègent les doigts lors de la rupture d’une ampoule en verre.

Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.

Spécifications
Nom chimique ou matériauFormaldéhyde
Température de stockageConserver dans le récipient d’origine protégé de la lumière directe du soleil dans un endroit sec, frais et bien ventilé.
Forme physiqueLiquide
Gamme de produitsPierce
Quantité10 x 10 ml
Unit SizeEach

Foire aux questions (FAQ)

Where do I find the expiry date of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free (Cat. No. 28906)?

We guarantee the functionality of Pierce 16% Formaldehyde (w/v), Methanol-free for one year from date of shipment, if stored correctly. See Limited Warranties for consumables under the General Terms and Conditions of Sale.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Labeling Chemistry Support Center

What fixative should I use to fix my cells or tissues for antibody labeling?

Aldehyde-based fixatives (e.g., formaldehyde, glutaraldehyde) crosslink various cellular components, which helps retain proteins and cell morphology, but some antigens can be masked by the crosslinking, requiring antigen retrieval methods to unmask the antigen binding sites. Also, aldehyde-based fixation requires permeabilization to allow entry of antibodies. Organic solvents such as methanol and acetone condense proteins and permeabilize the cells, but cell morphology can be compromised. Surface antigens can be labeled without fixation.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

What is the difference between formalin and formaldehyde?

The terms “formalin” and “formaldehyde” are often used interchangeably, although the chemical composition of each fixative is different. Formalin is made with formaldehyde but the percentage denotes a different formaldehyde concentration than formaldehyde solutions. For example, 10% neutral-buffered formalin (NBF or simply formalin) is really a 4% formaldehyde solution; the basis for this difference is that historically, formalin was prepared with commercial-grade stock formaldehyde, which is 37 to 40% formaldehyde, by diluting it 1:10 in phosphate buffer.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Purification and Isolation Support Center.

What is the difference between Formaldehyde and Paraformaldehyde?

Most commercial formaldehyde is prepared with paraformaldehyde (polymeric formaldehyde) dissolved in distilled/deionized water, with methanol added to stabilize the aqueous formaldehyde. Solution stabilization is important to prevent oxidation to formic acid and the eventual repolymerization to paraformaldehyde, and therefore commercial formaldehyde may contain up to 10% methanol. To avoid using methanol-contaminated formaldehyde for fixation, many protocols recommend making “fresh” formaldehyde from paraformaldehyde immediately before sample fixation. This preparation is not necessary if using Cat. Nos. 28906 and 28908.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Purification and Isolation Support Center.

What are storage conditions for 16% Formaldehyde?

We recommend storing in the original container protected from direct sunlight in a dry, cool and well-ventilated area.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Purification and Isolation Support Center.