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ARNic de contrôle négatif Silencer™ Select nº 1

Le ARNsi Silencer™ Select Negative Control No. 1 est un ARNsi de contrôle négatif non ciblé avec les mêmes modificationsAfficher plus
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RéférenceQuantité
43908435 nmol
439084440 nmol
Référence 4390843
Prix (EUR)
370,65
Exklusiv online
399,00
Économisez 28,35 (7%)
Each
Quantité:
5 nmol
Prix (EUR)
370,65
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Each
Le ARNsi Silencer™ Select Negative Control No. 1 est un ARNsi de contrôle négatif non ciblé avec les mêmes modifications chimiques pour une efficacité optimisée que les autres ARNsi Silencer™ Select. Propriétés des ARNsi Silencer™ Select Control :

• Contrôles validés d’ARNsi pour l’optimisation des expériences utilisant les ARNsi
• Contrôle positif GAPDH testé fonctionnellement dans plusieurs lignées cellulaires courantes
• Contrôles négatifs éprouvés fonctionnellement pour avoir des effets minimaux sur la prolifération et la viabilité des cellules
• Incluez les modifications Silencer™ Select pour une spécificité accrue
• Pour une utilisation dans les cellules humaines, de souris et de rat

Que sont les ARNsi Silencer™ Select ?
Les ARNsi Silencer™ Select sont nos ARNsi de nouvelle génération. Ces ARNsi incorporent les toutes dernières améliorations de la conception des ARNsi, des algorithmes de prédiction des effets hors-cible et des modifications chimiques pour donner des ARNsi d’une efficacité, puissance et spécificité inégalées. Résultats : moins d’expériences ratées en raison d’inhibition médiocre, et données phénotypiques plus propres et plus constantes.

ARNsi de contrôle négatif Silencer™ Select
Les ARNsi de contrôle négatif — des ARNsi avec des séquences qui ne ciblent aucun produit génétique — sont essentiels à la détermination des effets de l’administration de ARNsi et à la mise à disposition d’une référence pour comparer les échantillons traités par ARNsi. Nous avons conçu et largement testé deux ARNsi de contrôle négatif Silencer™ Select. Ces ARNsi ont subi les mêmes modifications pour réduire les effets hors-cible que celles que l’on trouve dans les autres ARNsi Silencer™ Select et n’ont pas de similarité de séquence significative par rapport aux séquences génétiques humaines, de rat ou de souris. Ces ARNic de contrôle négatif ont été testés par analyse microréseau et ont démontré des effets minimaux sur l’expression génétique. En outre, ces deux contrôles ont été testés lors de tests multiparamétriques sur cellules et ne sont pas significatifs pour la prolifération, la viabilité ou la morphologie des cellules pour les lignées cellulaires testées.

Contrôle qualité
Nous synthétisons et purifions chaque ARNsi Silencer™ Select sur des sites de pointe selon les normes de qualité les plus élevées. Dans le cadre de nos procédures rigoureuses de contrôle de la qualité, chaque oligonucléotide d’ARN est analysé par spectrométrie de masse MALDI-TOF et nous utilisons la HPLC pour en surveiller la pureté. Pour garantir la plus haute des qualités, nous évaluons également chaque ARNic d’hybridation par électrophorèse sur gel afin de confirmer que les chaînes hybrident correctement. Le résultat est un ARNic de première qualité qui est purifié et prêt à l’emploi.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
À utiliser avec (application)ARNi, Transfection
Marqueur ou colorantNon conjugué(e)
Gamme de produitsSilencer, Silencer Select, Ambion
Type de produitARNsi
PuretéHPLC
Quantité5 nmol
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
Type de contrôleContrôle négatif
RNAi TypesiARN
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Contient des ARNsi lyophilisés à (5 nmol) et de l’eau exempte de nucléase (1,75 ml), expédié à température ambiante. Dès réception, conserver les ARNsi dans un congélateur sans système de dégivrage à une température inférieure ou égale à -20°.

Foire aux questions (FAQ)

What are the benefits of using a vector to deliver RNAi?

Vector technologies allow you to:

Achieve transient or stable target knockdown
Perform RNAi in any cell type, even hard-to-transfect, primary, and non-dividing cells
Regulate gene inhibition with inducible siRNA expression
Select for a pure population of cells stably expressing an siRNA sequence
Control gene expression in vivo with tissue-specific promoters

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our RNAi Support Center.

Why are my cells dying after transfection?

We would suggest running a transfection reagent control only to determine if your cells are sensitive to the transfection reagent. Additionally, you can try using different cell densities and siRNA concentrations to diminish any toxic effects from the transfection itself.

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I transfected my siRNA and the mRNA levels are down, but the protein is not. Why is that?

In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down. Additionally, a longer time course may be needed to see an effect on protein compared to mRNA.

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I am not getting my target knockdown. What could be the cause of this?

Please see the following possibilities and suggestions:

- How many siRNA did you test? Is there any knockdown? If there is no knockdown (<10%) in any of the siRNA, then the assay is likely the problem. Try using a different qRT-PCR assay to assess knockdown.
- What was the positioning of the qRT-PCR assay target site relative to the cut site for the siRNA? If greater than 3,000 bases away, the problem could be alternative splice transcripts.
- What are the Cts for the experiment? They should be below 35 in a 40-cycle qRT-PCR experiment.
- Did you confirm the siRNA got into the cell? We recommend using a validated positive control siRNA to check the transfection efficiency.

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I am not getting any knockdown with my siRNA. What do you suggest I try?

Please see the following possibilities and suggestions:

- Were the mRNA levels checked? The most reliable method is real-time PCR. In some cases, knockdown of a protein can be affected by other variables, such as protein turnover rate, even though the RNA is knocked down.
- How is the RNA being isolated? Has the quality of the isolated RNA been checked? Ensure that the RNA has not been degraded.
- Was a positive control used? This can help to determine whether the reagents are working and whether the siRNA was delivered correctly to the cell. Run your experiment in parallel with the positive control siRNA.
- Was a transfection control used? What is the percentage of transfected cells?
- Was a time course used? Generally, gene silencing can be assessed as early as 24 hours posttransfection. However, the duration and level of knockdown are dependent on cell type and concentration of siRNA.
- Was optimization of transfection conditions performed? You can try using different cell densities and siRNA concentrations.
- Which concentration of siRNA did you use? We recommend testing multiple concentrations between 5 nM and 100 nM.

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