Maléimide Alexa Fluor™ 488 C5
Maléimide Alexa Fluor&trade; 488 C<sub>5</sub>
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Invitrogen™

Maléimide Alexa Fluor™ 488 C5

Alexa Fluor™ 488 est un colorant vert brillant et fluorescent, avec un niveau d’excitation parfaitement adapté à la ligne laserAfficher plus
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RéférenceQuantité
A102541 mg
Référence A10254
Prix (EUR)
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Quantité:
1 mg
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Alexa Fluor™ 488 est un colorant vert brillant et fluorescent, avec un niveau d’excitation parfaitement adapté à la ligne laser de 488 nm. Utilisé pour une génération de signal stable en imagerie et en cytométrie en flux, le colorant Alexa Fluor™ 488 est hydrosoluble et insensible au pH de pH 4 à pH 10. En plus des formulations de colorants réactifs, nous proposons le colorant Alexa Fluor™ 488 conjugué à divers anticorps, peptides, protéines, traceurs et substrats d’amplification optimisés pour le marquage et la détection cellulaires (en savoir plus).

Le dérivé de maléimide Alexa Fluor™ 488 est l’outil le plus utilisé pour conjuguer le colorant à un groupe thiol sur une protéine, un oligonucléotide thiophosphate ou un ligand de faible poids moléculaire. Les conjugués Alexa Fluor™ 488 résultants présentent une fluorescence plus lumineuse et une photostabilité plus élevée que les conjugués d’autres fluorophores similaires sur le plan spectral.

Informations détaillées concernant le maléimide Alexa Fluor™ :

Marqueur fluorophore : colorant Alexa Fluor™ 488
Groupe réactif : maléimide
Réactivité : groupes thiol sur protéines et ligands, oligonucléotide thiophosphates
Ex / Em du conjugué : 493/516 nm
Coefficient d’extinction : 72 000 cm-1M-1
Colorants similaires sur le plan spectral : fluorescéine (FITC), Cy™2
Poids moléculaire : 720,66

Réaction de conjugaison typique
La protéine doit être dissoute à une concentration de 50 à 100 µM dans un tampon approprié (10 à 100 mM phosphate, Tris ou HEPES), pH 7,0 à 7,5. Dans cette plage de pH, les groupes thiols de la protéine sont suffisamment nucléophiles pour réagir presque exclusivement avec le réactif en présence des groupes amines de la protéine, plus nombreux, qui sont protonés et relativement non réactifs. Nous recommandons de réduire tous les ponts disulfures à ce stade, en utilisant un agent réducteur en excès molaire (10X), comme DTT ou TCEP. L’excès de DTT doit être retiré par dialyse et la modification subséquente du groupe thiol doit être effectuée en l’absence d’oxygène pour prévenir la reformation des ponts disulfures ; ces précautions ne sont pas nécessaires lorsque le TCEP est utilisé avant la conjugaison du maléimide.

Le maléimide Alexa Fluor™ est généralement dissous dans du diméthylsulfoxyde anhydre (DMSO) de haute qualité à une concentration de 1 à 10 mM immédiatement avant l’utilisation, et les solutions mères doivent être protégées de la lumière autant que possible. Généralement, cette solution de réserve est ajoutée à la solution de protéines au goutte à goutte, en agitant, pour produire environ 10 à 20 moles de réactif par mole de protéine ; la réaction se déroule à température ambiante pendant 2 heures ou à 4°C la nuit, à l’abri de la lumière. Tout réactif qui n’a pas réagi avec le groupe thiol peut être consommé en ajoutant un excès de glutathion, de mercaptoéthanol, ou d’autres molécules solubles de faible poids moléculaire dotées d’une fonction thiol.

Purification des conjugués
Les anticorps marqués sont généralement séparés du colorant Alexa Fluor™ libre à l’aide d’une colonne de filtration sur gel, comme la colonne Sephadex™ G-25, la colonne BioGel™ P-30 ou une colonne équivalente. Pour des protéines beaucoup plus grandes ou plus petites, sélectionnez un milieu de filtration sur gel ayant un seuil de poids moléculaire approprié ou purifiez par dialyse. Nous proposons plusieurs kits de purification optimisés pour différentes quantités de conjugués d’anticorps :
kit de purification de conjugués d’anticorps pour 0,5 à 1 mg (A33086)
kit de purification de conjugués d’anticorps pour 20 à 50 µg (A33087)
kit de purification de conjugués d’anticorps pour 50 à 100 µg (A33088)

En savoir plus sur le marquage des protéines et des anticorps
Nous offrons une large sélection de kits de marquage d’anticorps et de protéines de Molecular Probes™ pour convenir à votre produit de départ et à votre configuration expérimentale. Consultez nos kits de marquage d’anticorps ou utilisez notre outil de sélection de chimie de marquage pour d’autres choix. Pour en savoir plus sur nos kits de marquage, lisez Kits de marquage des protéines et des acides nucléiques, section 1.2 dans le manuel Molecular Probes™.

Nous vous préparerons un conjugué sur mesure
Si vous ne trouvez pas ce que vous cherchez dans notre catalogue en ligne, nous vous préparerons un conjugué d’anticorps ou de protéines sur mesure. Notre service de conjugaison personnalisé est efficace et confidentiel, et nous croyons en la qualité de notre travail. Nous sommes certifiés ISO 9001:2000.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Réactivité chimiqueThiol
Émission516 nm
Excitation493 nm
Marqueur ou colorantAlexa Fluor™ 488
Type de produitColorant
Quantité1 mg
Groupement de réactifsMaléimide
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
Type d’étiquetteColorants Alexa Fluor
Gamme de produitsAlexa Fluor
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conserver au congélateur (-5 à -30°C) à l’abri de la lumière.

Foire aux questions (FAQ)

What are the signal intensity differences between Alexa Fluor 350 dye and Alexa Fluor 488 dye?

In general, blue fluorescent dyes are not as bright as other dyes further along the color spectrum. Blue dyes are structurally smaller and have lower extinction coefficients, so they are typically not as bright compared to the green, red, and far red dyes.
When using an Alexa Fluor 350 secondary antibody, we recommend that you use it for highly expressed targets and at a higher concentration than what is typically required for green or red secondary antibodies.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

Citations et références (100)

Citations et références
Abstract
Authors:
Journal:
PubMed ID:11114349
Distance measurements within a concatamer of the plasma membrane Cl?/HCO3? exchanger, AE1.
Authors:Basu A, Mazor S, Casey JR,
Journal:Biochemistry
PubMed ID:20828148
'AE1, which exists in the erythrocyte plasma membrane as a noncovalent dimer, facilitates transmembrane Cl?/HCO3? exchange. Here a concatamer of AE1 (two AE1 monomers fused via a two-residue linker to form an intramolecular dimer) was designed to facilitate fluorescence resonance energy transfer (FRET) studies. The concatameric protein (AE1·AE1) was expressed ... More
Interaction of arginine-rich peptides with membrane-associated proteoglycans is crucial for induction of actin organization and macropinocytosis.
Authors:Nakase I, Tadokoro A, Kawabata N, Takeuchi T, Katoh H, Hiramoto K, Negishi M, Nomizu M, Sugiura Y, Futaki S
Journal:Biochemistry
PubMed ID:17209559
'Arginine-rich peptides, including octaarginine (R8), HIV-1 Tat, and branched-chain arginine-rich peptides, belong to one of the major classes of cell-permeable peptides which deliver various proteins and macromolecules to cells. The importance of the endocytic pathways has recently been demonstrated in the cellular uptake of these peptides. We have previously shown ... More
Exocytotic insertion of calcium channels constrains compensatory endocytosis to sites of exocytosis.
Authors:Smith RM, Baibakov B, Ikebuchi Y, White BH, Lambert NA, Kaczmarek LK, Vogel SS
Journal:J Cell Biol
PubMed ID:10684256
'Proteins inserted into the cell surface by exocytosis are thought to be retrieved by compensatory endocytosis, suggesting that retrieval requires granule proteins. In sea urchin eggs, calcium influx through P-type calcium channels is required for retrieval, and the large size of sea urchin secretory granules permits the direct observation of ... More
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Authors:Kelly AE, Kranitz H, Dötsch V, Mullins RD
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:16403731
'The Arp2/3 complex nucleates and cross-links actin filaments at the leading edge of motile cells, and its activity is stimulated by C-terminal regions of WASP/Scar proteins, called VCA domains. VCA domains contain a verprolin homology sequence (V) that binds monomeric actin and central (C) and acidic sequences (A) that bind ... More