Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 Protein Synthesis Assay Kit
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Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 Protein Synthesis Assay Kit

Le kit de dosage de synthèse de protéines Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 fournit une méthode rapide, sensible, non toxiqueAfficher plus
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RéférenceQuantité
C104281 kit
Référence C10428
Prix (EUR)
880,00
Each
Quantité:
1 kit
Prix (EUR)
880,00
Each
Le kit de dosage de synthèse de protéines Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 fournit une méthode rapide, sensible, non toxique et non radioactive pour la détection de la synthèse de protéines naissantes à l’aide de la microscopie par fluorescence, de l’imagerie à contenu élevé ou de la cytométrie en flux. Le kit comprend de la L-homopropargylglycine (HPG), un acide aminé analogue à la méthionine contenant une fraction d’alcyne et de l’azoture Alexa Fluor™ 488. La HPG est administrée aux cellules de culture et incorporée dans les protéines au cours de la synthèse des protéines actives. L’ajout de l’azoture Alexa Fluor™ 488 conduit à une ligature chimiosélective ou à une réaction de “clic” entre l’azoture vert fluorescent et l’alcyne, permettant ainsi de détecter les protéines modifiées par une analyse basée sur des images.

Alternative en alternance non radioactive—à la 35S-méthionine traditionnelle
Visualisation des dynamiques de protéines en vrac—le marquage fluorescent des protéines permet de déterminer leur localisation, y compris l’agrégation
Spécificité—réaction spécifique et sélective entre le marquage et les balises de détection
Stabilité —le produit contient une liaison covalente irréversible
Activé en multiplex—utilisation conjointe à l’AHA (acide aminé d’azoture et colorant d’alcyne) Click™-iT pour détecter les différences spatiales et temporelles
Applicabilité aux échantillons biologiques—détection simple ; sensibilité élevée et faible bruit de fond, quelle que soit la complexité

Le kit de dosage de synthèse des protéines HPG Alexa Fluor™ 488 Click-iT™ a été testé avec succès dans les cellules HeLa, A549 et U-2 OS avec une variété de réactifs qui inhibent la synthèse des protéines, notamment la cycloheximide et l’anisomycine. L’applicabilité de ces sondes pour surveiller la dégradation des protéines a également été démontrée à l’aide d’inhibiteurs du protéasome (MG132 et bortézomib) et de bloqueurs d’autophagie (chloroquine) dans les cellules HeLa.

En outre, en raison des différences dans la chimie Click-iT™ entre le kit de test de synthèse protéique Click-iT™ HPG Alexa Fluor™ 488 et Click™-iT AHA avec l’alcyne Alexa Fluor™ 594, ces réactifs peuvent être utilisés conjointement pour la détermination spatiale ou temporelle des différences de synthèse des protéines naissantes.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Méthode de détectionFluorescent, Fluorescence
Type de colorantProtéines (naissantes)
FormeLiquide
Quantité1 kit
CouleurVert
EmissionVisible
À utiliser avec (application)Dosage de protéosynthèse
À utiliser avec (équipement)Microscope à fluorescence, Imageur fluorescent
Gamme de produitsAlexa Fluor, Click-iT
Type de produitKits de dosage de protéosynthèse
Unit SizeEach
Contenu et stockage
  • Stocker de 2°C à 6°C
  • NE PAS CONGELER
  • Protéger les matériaux contre l’exposition à long terme à la lumière ; ils peuvent toutefois être exposés à la lumière pendant de courtes périodes

Citations et références (5)

Citations et références
Abstract
Selective identification of newly synthesized proteins in mammalian cells using bioorthogonal noncanonical amino acid tagging (BONCAT).
Authors:Schuman EM
Journal:Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America
PubMed ID:16769897
In both normal and pathological states, cells respond rapidly to environmental cues by synthesizing new proteins. The selective identification of a newly synthesized proteome has been hindered by the basic fact that all proteins, new and old, share the same pool of amino acids and thus are chemically indistinguishable. We ... More
In situ visualization and dynamics of newly synthesized proteins in rat hippocampal neurons.
Authors:Schuman EM
Journal:Nature neuroscience
PubMed ID:20543841
Protein translation has been implicated in different forms of synaptic plasticity, but direct in situ visualization of new proteins is limited to one or two proteins at a time. Here we describe a metabolic labeling approach based on incorporation of noncanonical amino acids into proteins followed by chemoselective fluorescence tagging ... More
Two-color labeling of temporally defined protein populations in mammalian cells.
Authors:Tirrell DA
Journal:Bioorganic & medicinal chemistry letters
PubMed ID:18774715
The proteome undergoes complex changes in response to disease, drug treatment, and normal cellular signaling processes. Characterization of such changes requires methods for time-resolved protein identification and imaging. Here, we describe the application of two reactive methionine (Met) analogues, azidohomoalanine (Aha) and homopropargylglycine (Hpg), to label two protein populations in ... More
Fluorescence visualization of newly synthesized proteins in mammalian cells.
Authors:Tirrell DA
Journal:Angewandte Chemie (International ed. in English)
PubMed ID:17036290
Noncanonical amino acid tagging enables the selective fluorescent visualization of newly synthesized proteins in mammalian cells (see the picture). Susceptibility to tagging is determined by the spatial and temporal character of the protein synthesis, thus providing a complement to methods which identify relevant members of the proteome. ... More
Spatial coupling of mTOR and autophagy augments secretory phenotypes.
Authors:Narita M., et al
Journal:Science (New York, N.Y.)
PubMed ID:21512002
Protein synthesis and autophagic degradation are regulated in an opposite manner by mammalian target of rapamycin (mTOR), whereas under certain conditions it would be beneficial if they occurred in unison to handle rapid protein turnover. We observed a distinct cellular compartment at the trans side of the Golgi apparatus, the ... More