Kit d’analyse de cytométrie en flux Click-iT™ Plus EDU Alexa Fluor™ 647, 50 réactions
Invitrogen™

Kit d’analyse de cytométrie en flux Click-iT™ Plus EDU Alexa Fluor™ 647, 50 réactions

Le kit de dosage de cytométrie en flux Click-iT® Plus à l’EdU Alexa Fluor® 647 offre un test simplifié etAfficher plus
Have Questions?
RéférenceQuantité
C1063450 dosages
Référence C10634
Prix (EUR)
802,00
Each
Quantité:
50 dosages
Prix (EUR)
802,00
Each
Le kit de dosage de cytométrie en flux Click-iT® Plus à l’EdU Alexa Fluor® 647 offre un test simplifié et plus fiable pour analyser la réplication de l’ADN dans les cellules en prolifération par rapport aux méthodes au BrdU traditionnelles. L’ADN nouvellement synthétisé est analysé avec le laser du cytomètre en flux à 647 nm. La formule Click-iT® Plus est compatible avec les fluorophores standard, y compris les R-PE et tandems R-PE, ainsi que les protéines fluorescentes.

• Multiplexable—compatible avec les R-PE (et tandems) et protéines fluorescentes
• Précis—résultats supérieurs par rapport aux dosages BrdU
• Rapide—résultats en moins de 60 minutes

Consultez le guide de sélection de tous les dosages Click-iT™ EdU et Click-iT™ Plus EdU pour la cytométrie en flux.

Multiplexable
La formulation Click-iT® Plus apporte des capacités de multiplexage améliorées par rapport aux dosages de cytométrie en flux Click-iT® EdU d’origine. Les immunodosages Click-iT® Plus à l’EdU peuvent être utilisés conjointement avec les R-PE et tandems R-PE, ainsi qu’avec les protéines fluorescentes telles que GFP et mCherry, sans perte de précision ni de vitesse par rapport au test Click-iT® à l’EdU d’origine.

Une méthode de pointe qui vous donne des résultats supérieurs au BrdU
La méthode la plus précise pour analyser la prolifération consiste à mesurer directement la synthèse de l’ADN. À l’origine, ceci était effectué en incorporant des nucléosides radioactifs. Cette méthode a été remplacée par la détection à base d’anticorps de l’analogue de nucléoside, bromodésoxyuridine (BrdU). L’essai de cytométrie de flux Click-iT® Plus EdU est une alternative innovante à l’essai BrdU. L’EdU (5-éthynyl-2´-désoxyuridine) est un analogue de la thymidine qui est incorporé à l’ADN lors de la synthèse active de l’ADN. La détection se base sur la chimie clic qui est une réaction covalente entre un azide et un alcyne catalysée par le cuivre. Dans cette application, l’alcyne se trouve dans la fraction éthynyle de l’EdU, alors que l’azide est couplé au colorant Alexa Fluor®. Les méthodes traditionnelles de cytométrie de flux sont utilisées pour déterminer le pourcentage de cellules en phase S dans la population.

Des conditions non agressives permettent une utilisation avec les anticorps et colorants de cycle cellulaire
La petite taille du colorant azoture permet de détecter efficacement l’EdU incorporé en utilisant des conditions douces, tandis que la fixation standard à base d’aldéhyde et la perméabilisation du détergent suffisent pour que le réactif de détection Click-iT® Plus puisse accéder à l’ADN. Par comparaison, les essais BrdU exigent de dénaturer l’ADN (à l’aide de HCl, de chaleur ou de digestion avec DNase) pour exposer le BrdU afin qu’il puisse être détecté avec un anticorps anti-BrdU. Le traitement des échantillons en vue d’un essai BrdU peut entraîner l’altération de signal de la distribution du cycle cellulaire, ainsi que la destruction des sites de reconnaissance d’antigènes lorsque la méthode HCl est utilisée. Par comparaison, l’essai Click-iT® Plus EdU est facile d’emploi et compatible avec les colorants de cycles cellulaires. Le dosage Click-iT® Plus EDU peut également être multiplexé avec des anticorps contre des marqueurs de surface et intracellulaires, ainsi que des conjugués marqués par des fluorophores standard tels que les R-PE, les tandems R-PE et les protéines fluorescentes (GFP et mCherry).

Protocole rapide et simple
Le protocole Click-iT® Plus EdU est basé sur la fixation de l’aldéhyde et les étapes de perméabilisation du détergent pour le marquage immunohistochimique des anticorps. Cependant, l’EdU est compatible avec d’autres agents de fixation / perméabilisation, dont la saponine et le méthanol. Vous serez prêt à analyser vos données de prolifération cellulaire après seulement cinq étapes :

1. Traitez les cellules avec EdU.
2. Fixez et perméabilisez les cellules.
3. Détectez les cellules en phase S avec le cocktail de détection Click-iT® Plus pendant 30 min.
4. Lavez une fois.
5. Analysez.

Les résultats sont obtenus en seulement 60 minutes dans certains cas, mais nous recommandons 90 minutes pour toutes les applications.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Méthode de détectionFluorescence
Type de colorantAlexa Fluor™ 647
FormatTube(s)
Quantité50 dosages
Conditions d’expéditionTempérature ambiante
Emission650⁄670
À utiliser avec (équipement)Cytomètre en flux
Gamme de produitsClick-iT
Type de produitKit de test pour cytométrie en flux
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Contient de l’EdU (5-éthynyl-2’-désoxyuridine), de l’azoture de picolyle Alexa Fluor™ 647, du diméthylsulfoxyde anhydre (DMSO), du fixateur Click-iT™, du tampon de perméabilisation et de lavage à base de saponine Click-iT™ et de l’additif de tampon Click-iT™ EdU.
  • Stocker de 2°C à 8°C
  • À déshydrater et à tenir à l’abri de la lumière.

    Foire aux questions (FAQ)

    What is the fluorescence excitation and emission maxima of Alexa Fluor 647 dye?

    Alexa Fluor 647 has an excitation/emission maxima of 650/670 nm.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    What are the main characteristics of a Click-iT reaction?

    Click reactions have several general characteristics: the reaction is efficient, no extreme temperatures or solvents are required, the reaction is complete within 30 minutes, the components of the reaction are bio-inert, and perhaps most importantly, no side reactions occur-the label and detection tags react selectively and specifically with one another. This final point is a key advantage of this powerful detection technique; it is possible to apply click chemistry-labeled molecules to complex biological samples and detect them with unprecedented sensitivity due to the extremely low background of the reaction.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    I will be performing a cell proliferation assay using Click-iT EdU kit. At what point can I stop overnight, or do I have to perform all the steps continuously?

    One may store the sample after fixation overnight in PBS at 4oC. For longer storage (<1 week) , store in buffer with 1-2% formaldehyde or in formalin to limit microbial growth. If you use sodium azide as a microbial inhibitor, it must be completely removed prior to the Click-iT reaction.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Viability, Proliferation, Cryopreservation, and Apoptosis Support Center.

    Can I combine Click-iT or Click-iT Plus reactions with phalloidin conjugates used for actin staining?

    We do not recommend using phalloidin conjugates for staining actin in combination with traditional Click-iT or Click-iT Plus reactions since phalloidin is extremely sensitive to the presence of copper.

    For staining actin in combination with traditional Click-iT or Click-iT Plus reactions, we recommend using anti-α-actin antibodies for staining actin in the cytoskeleton. You can find a list of our actin antibodies here.

    Another option would be to use the Click-iT Plus Alexa Fluor Picolyl Azide Toolkit (Cat. Nos. C10641, C10642, C10643). These Click-iT Plus toolkits provide Copper and Copper protectant separately which makes it easier to titrate the copper concentration to obtain optimal labeling with minimal copper-mediated damage. You may need to optimize the click reaction with the lowest possible concentration of copper and then perform the phalloidin staining.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    With the Click-iT Plus EdU flow cytometry kits, my live-cell sample includes EDTA in the buffer/medium. Would this cause any problems with EdU incorporation or the click reaction?

    The presence of EDTA in the cell buffer/media would not be an issue for EdU incorporation and it should be mostly gone from the sample after fixation and permeabilization. EDTA must not be present during the click reaction.

    Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Cell Analysis Support Center.

    Citations et références (12)

    Citations et références
    Abstract
    miR-142 regulates the tumorigenicity of human breast cancer stem cells through the canonical WNT signaling pathway.
    Authors:Isobe T, Hisamori S, Hogan DJ, Zabala M, Hendrickson DG, Dalerba P, Cai S, Scheeren F, Kuo AH, Sikandar SS, Lam JS, Qian D, Dirbas FM, Somlo G, Lao K, Brown PO, Clarke MF, Shimono Y,
    Journal:
    PubMed ID:25406066
    'MicroRNAs (miRNAs) are important regulators of stem and progenitor cell functions. We previously reported that miR-142 and miR-150 are upregulated in human breast cancer stem cells (BCSCs) as compared to the non-tumorigenic breast cancer cells. In this study, we report that miR-142 efficiently recruits the APC mRNA to an RNA-induced ... More
    A Genome-Wide Analysis Identifies a Notch-RBP-J?-IL-7Ra Axis That Controls IL-17-Producing ?d T Cell Homeostasis in Mice.
    Authors:Nakamura M, Shibata K, Hatano S, Sato T, Ohkawa Y, Yamada H, Ikuta K, Yoshikai Y,
    Journal:
    PubMed ID:25429074
    Notch signaling is an important regulator for the development and function of both aß and ?d T cells, whereas roles of Notch signaling in T cell maintenance remain unclear. We reported previously that the Notch-Hes1 pathway was involved in the intrathymic development of naturally occurring IL-17-producing (IL-17(+)) ?d T cells. ... More
    ZUFSP Deubiquitylates K63-Linked Polyubiquitin Chains to Promote Genome Stability.
    Authors:Haahr P, Borgermann N, Guo X, Typas D, Achuthankutty D, Hoffmann S, Shearer R, Sixma TK, Mailand N,
    Journal:Mol Cell
    PubMed ID:29576528
    'Deubiquitylating enzymes (DUBs) enhance the dynamics of the versatile ubiquitin (Ub) code by reversing and regulating cellular ubiquitylation processes at multiple levels. Here we discovered that the uncharacterized human protein ZUFSP (zinc finger with UFM1-specific peptidase domain protein/C6orf113/ZUP1), which has been annotated as a potentially inactive UFM1 protease, and its ... More
    FZD4 Marks Lateral Plate Mesoderm and Signals with NORRIN to Increase Cardiomyocyte Induction from Pluripotent Stem Cell-Derived Cardiac Progenitors.
    Authors:Yoon C, Song H, Yin T, Bausch-Fluck D, Frei AP, Kattman S, Dubois N, Witty AD, Hewel JA, Guo H, Emili A, Wollscheid B, Keller G, Zandstra PW,
    Journal:Stem Cell Reports
    PubMed ID:29249665
    'The identification of cell surface proteins on stem cells or stem cell derivatives is a key strategy for the functional characterization, isolation, and understanding of stem cell population dynamics. Here, using an integrated mass spectrometry- and microarray-based approach, we analyzed the surface proteome and transcriptome of cardiac progenitor cells (CPCs) ... More
    Effects of Low-level Brodifacoum Exposure on the Feline Immune Response.
    Authors:Kopanke JH, Horak KE, Musselman E, Miller CA, Bennett K, Olver CS, Volker SF, VandeWoude S, Bevins SN,
    Journal:Sci Rep
    PubMed ID:29802369
    'Anticoagulant rodenticides have been implicated as a potential inciting factor in the development of mange in wild felids, but a causative association between anticoagulant rodenticide exposure and immune suppression has not been established. Specific-pathogen-free domestic cats were exposed to brodifacoum over a 6-week period to determine whether chronic, low-level exposure ... More