FluoSpheres™ Sulfate-Modified Microspheres, 0.02–4.0 μm
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FluoSpheres™ Sulfate-Modified Microspheres, 0.02–4.0 μm

Réalisez la cytométrie en flux, la microscopie, l’HTS et l’HCS avec nos microsphères au sulfate modifié FluoSpheres, disponibles dans différents diamètres de microbilles.
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RéférenceDiamètre (métrique)Couleur
F88584 μmRouge
F8851
également connu sous le numéro F-8851
1 μmCouleur rouge
F8845
également connu sous le numéro F-8845
0,02 μmJaune-vert
F88480,20 μmJaune-vert
F88521 μmJaune-vert
F88532 μmJaune-vert
F88594 μmJaune-vert
Référence F8858
Prix (EUR)
658,00
Each
Diamètre (métrique):
4 μm
Couleur:
Rouge
Prix (EUR)
658,00
Each
Réalisez facilement la cytométrie en flux, la microscopie, l’HTS, l’HCS et d’autres applications de laboratoire en utilisant notre vaste sélection de microsphères au sulfate modifié FluoSpheres. Ces microsphères peuvent être utilisées dans l’adsorption passive ou le couplage actif et covalent de protéines, d’acides nucléiques et de biomolécules pour les applications de capture de particules.

Les microsphères FluoSphere au sulfate modifié sont chargées avec nos colorants fluorescents exclusifs, ce qui en fait les microsphères les plus lumineuses disponibles. Comme les molécules de colorants fluorescents sont contenues dans chaque microsphère en PS au lieu de ne se trouver qu’à leur surface, les molécules de colorants sont protégées contre de nombreux effets environnementaux qui provoquent l’extinction ou le photoblanchiment des fluorophores exposés. La stabilité, l’uniformité et la reproductibilité des microsphères FluoSpheres, ainsi que leur vaste sélection de couleurs, en font les outils préférés pour la recherche et les tests de diagnostic qui utilisent la fluorescence.

Les microsphères FluoSpheres au sulfate modifié sont des particules relativement hydrophobes qui absorbent de manière passive et presque irréversible quasiment toutes les protéines, notamment l’albumine, les IgG, l’avidine et la streptavidine.

Applications clés des microsphères au sulfate modifié FluoSpheres
• Étalonnage des instruments (cytométrie en flux, microscopie, HTS, HCS)
• Tests de flux (microfluides, flux sanguin, flux d’eau et flux d’air)
• Traceurs de biologie cellulaire (différenciation cellulaire et traçage cellulaire)
• Immunodosages (tests d’agglutination, ELISA, capture de particules et réactifs de contraste)

Caractéristiques des microsphères au sulfate modifié FluoSphères pour F8845, F8848, F8852, F8853 et F8859 :
• Étiquette (excitation / émission) : vert jaune (505 / 515)
• Diamètres nominaux des microbilles : 0,02, 0,2, 1,0, 2,0 et 4,0 µm
• Surface de couplage : sulfate
• Matières solides : 2 %

Caractéristiques des microsphères au sulfate modifié FluoSpheres pour F8851 et F8858 :
• Rouge (580 / 605)
• Diamètres nominaux des microbilles : 1,0, 4,0 µm
• Surface de couplage : sulfate
• Matières solides : 2 %

Les microsphères fluorescentes FluoSpheres sont potentiellement plus sensibles que les méthodes colorimétriques dans la plupart, sinon tous, des principaux systèmes de tests de diagnostic basés sur les microsphères actuellement utilisés, y compris les tests d’agglutination par microsphère, les tests de séparation par filtres, les méthodes ELISA de capture de particules et les techniques sandwich à deux particules.

Les microsphères au sulfate modifié FluoSpheres (également appelées microbilles de latex ou particules de latex) sont fabriquées à l’aide de polystyrène ultra-propre de haute qualité et sont chargées avec plusieurs de nos colorants exclusifs pour créer des microbilles hautement fluorescentes présentant généralement pas ou peu de signes de photoblanchiment, même lorsqu’elles sont excitées par l’illumination intense requise pour la microscopie par fluorescence. Toutes les précautions possibles sont prises tout au long du processus de fabrication pour s’assurer que les microparticules sont exemptes d’agents contaminants. Le produit final est vendu sous forme de suspension dans de l’eau ultrapure, dans la plupart des cas contenant 2 mM d’azoture ou 0,02 % de thimérosal comme conservateur.

D’autres modifications de surface sont disponibles pour faciliter le couplage de diverses molécules et protéines à la surface de la microbille, y compris les microsphères FluoSpheres au carboxylate et aux amines modifiés.

Sélection de microsphères non colorées
Nous proposons également des centaines de choix de microsphères exemptes de surfactant ultra-propres pour les applications de recherche et commerciales.

Microsphères personnalisées
Nous préparons des microsphères personnalisées sur demande. Par exemple, les microbilles au sulfate modifié FluoSpheres peuvent être préparées avec des intensités inférieures à celles de notre sélection standard, une caractéristique attrayante dans certaines applications multicolores. Notre service de conjugaison personnalisé est efficace et confidentiel, et nous garantissons la qualité de notre travail. Nous sommes certifiés ISO 9001:2000.

For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.
Spécifications
Gamme de produitsFLUOSPHERES
Quantité2 mL
Conditions d’expéditionTempérature ambiante, Température ambiante
Modification de surfaceSulfate, Sulfate
Volume (métrique)2 mL
CouleurRouge
Diamètre (métrique)4 μm
À utiliser avec (application)Analyse cellulaire
MatériauPolystyrène
Type de produitMicrosphère
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Conserver au réfrigérateur (2–8 °C) et à l’abri de la lumière.

Foire aux questions (FAQ)

I have some FluoSpheres polystyrene microspheres, with 20 nm diameter. They are aggregating a lot. What can I do about it?

The smaller the microspheres, the greater the propensity to aggregate. But the aggregation is not irreversible. Sonicate in a bath sonicator or vortex to disperse, just prior to use. You can also add a small concentration of Tween-20 or Triton X-100 (unless you are using them in a live-cell system).

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I sonicated my 2.0 µm carboxylate-modified microspheres, as recommended, but saw foaming (bubbles) on top of the solution. Should I be concerned?

Use of a bath sonicator is recommended to help break up any aggregated microspheres. The foaming is from Tween-20, which is in the stock solution to help prevent aggregation. It is normal and expected to see bubbles from this. Do not use a probe sonicator, which would cause damage to the microspheres (as well as much more bubbling).

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What is the warranty for FluoSpheres microspheres?

The warranty period for FluoSpheres microspheres is 1-year from the date of shipment.

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After washing and centrifugation, there was only a very small pellet left of my microsphere beads and the solution was transparent. Why is this?

Centrifugation is not an effective way to collect smaller microspheres; many particles remain in the solution even if you can visualize a small pellet. For beads less than 1 µm in diameter, we recommend washing by either:

Cross-flow filtration, as these particles have a very high compression modulus and can withstand high g-forces without risk of harm or dialysis with a 500 kDa MWCO
Note: Microspheres greater than 1 µm in diameter can be centrifuged at 1,300 rpm.

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I've had my microspheres for over a year, and I'm wondering if they're still good to use. What are some good ways to check their functionality?

Bacterial contamination is the most common cause of microspheres becoming unusable. Many of our particles are supplied with a low level of sodium azide to prevent bacterial contamination, but sometimes this can still occur. Bacterial contamination is best assessed by plating on appropriate growth medium and checking the plates after 72 hr.

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Citations et références (2)

Citations et références
Abstract
Estimated functional diameter of alveolar septal microvessels in zone 1.
Authors:Conhaim RL, Rodenkirch LA
Journal:Am J Physiol
PubMed ID:8853334
'To estimate the functional diameter of alveolar septal microvessels in zone 1, we perfused isolated rat lungs with fluorescent latex particles of specific diameters (0.24, 0.49, 1.05, or 4.0 microns) at pulmonary artery pressures (Ppulmart) that were either 5 or 10 cmH2O less than the air inflation pressure (Pinflat, 25 ... More
Improved protocol for a microsphere-adhesion assay on living tissue slices.
Authors:Förster E, Kaltschmidt C
Journal:Biotechniques
PubMed ID:10090988
Here, we describe a simple microsphere-adhesion assay to characterize adhesive cues on living tissue slices, which we use to study pattern formation in neural tissue. This assay was developed by modifying a cell-adhesion assay on living tissue slices. We replaced dissociated cells by fluorescent microspheres and then coated the microspheres ... More