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T-REx™ Core Kit, with pcDNA™4/TO Vector

Système d’expression régulé par tétracycline sans transactivateurs virauxLe système T-REx™ fournit des niveaux d’expression induite plus élevés que tout autreAfficher plus
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RéférenceQuantité
K102002
également connu sous le numéro K1020-02
1 kit
Référence K102002
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Prix (EUR)
1 966,00
Each
Quantité:
1 kit
Prix (EUR)
1 966,00
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Système d’expression régulé par tétracycline sans transactivateurs viraux
Le système T-REx™ fournit des niveaux d’expression induite plus élevés que tout autre système d’expression de cellules de mammifères régulé. Il utilise le promoteur CMV complet et ajoute des éléments de contrôle provenant de l’opéron de résistance à la tétracycline bactérienne pour réprimer et déréprimer efficacement la transcription d’une des séquences de promoteur de mammifères les plus fortes connues (1,2).

Activation spécifique
Le système T-REx™ utilise un mécanisme répresseur qui bloque la transcription du puissant promoteur CMV en l’absence de tétracycline. Comme les éléments du système T-REx™ n’utilisent pas de transactivateurs viraux, vous pouvez obtenir une expression de haut niveau à partir du promoteur CMV complet sans activation secondaire et non spécifique des gènes hôtes.

Le mécanisme T-REx™
Les éléments de contrôle transcriptionnel T-REx™ sont illustrés à la Figure 1. Deux séquences d’opérateurs de tétracycline (TetO2) ont été insérées entre la boîte TATA du promoteur CMV et le site de départ transcriptionnel. La séquence TetO2 elle-même n’a aucun effet sur l’expression. Lorsque la protéine répresseur de tétracycline (TR) est présente, elle lie efficacement les sites TetO2 et bloque l’initiation de la transcription. La tétracycline ajoutée au milieu de culture se lie à la protéine TR et modifie la conformation de cette protéine. Cette modification entraîne la libération de la protéine TR aux sites TetO2, déréprimant ainsi la transcription du promoteur CMV. Le résultat est une expression de haut niveau du gène d’intérêt (Figure 2). Les niveaux d’expression peuvent être modulés en fonction de la concentration de tétracycline et peuvent être induits à des niveaux atteints avec des vecteurs d’expression CMV constitutive.

T-REx™ est un puissant système d’expression de cellules de mammifères inductible qui vous permet de réguler l’expression à partir de l’activateur-promoteur de cytomégalovirus humain (CMV) complet. Les vecteurs d’expression inductibles T-REx™ offrent les caractéristiques suivantes :

• Séquence d’activateur-promoteur CMV complète contenant deux copies de la séquence TetO2 de l’opérateur tétracycline pour une expression régulée de haut niveau
• Gène de résistance à l’hygromycine ou Zeocin™ pour une sélection efficace de lignées de cellules de mammifères stables
• Grand site de clonage multiple pour simplifier le clonage

En outre, le pcDNA™4 / TO / myc-His offre un épitope c-myc pour la détection rapide de la protéine recombinante avec un anticorps anti-myc et une séquence de polyhistidine (6xHis) pour la purification simple de protéines recombinantes avec de la résine de chélation du nickel et la détection avec un anticorps anti-His(C-term).

Le vecteur régulateur, le pcDNA™6 / TR, est fourni pour l’expression de haut niveau de la protéine répresseur de tétracycline (TR). Ce vecteur exprime le gène de résistance à la blasticidine pour une sélection rapide des lignées de cellules de mammifères qui expriment de façon stable la protéine TR.
Usage exclusivement réservé à la recherche. Ne pas utiliser pour des procédures de diagnostic.
Spécifications
Système constitutif ou inductibleInductible
Type de livraisonTransfection
À utiliser avec (application)Expression régulée
Agent d’inductionTétracycline
Type de produitKit de clonage de noyau T-Rex avec vecteur
Quantité1 kit
Agent de sélection (eucaryotique)Zeocin™, blasticidine
VecteurpcDNA
Méthode de clonageEnzyme de restriction / MCS
Gamme de produitsGateway, T-REx, pcDNA
AccélérateurCMV / TO
Marqueur de protéineNon étiqueté
Unit SizeEach
Contenu et stockage
Le kit principal T-REx™ comprend 20 µg de pcDNA™4 / TO ou 20 µg chacun de pcDNA™4 / TO/myc-His A, B et C ; un vecteur de contrôle positif, pcDNA™6 / TR et des amorces de séquençage sens et antisens.

Tous les vecteurs sont superenroulés et lyophilisés.

Conserver tous les composants à -20°C. La stabilité de tous les composants est garantie pendant 6 mois lorsqu’ils sont correctement conservés.

Foire aux questions (FAQ)

Why is sequential transfection recommended over co-transfection in the T-REx and GeneSwitch systems?

When a co-transfection is performed, there is no way of testing the double stable cell line for functional TetR or GeneSwitch protein, respectively. On the other hand, when sequential transfection is performed, one can functionally test the generated T-REx or GeneSwitch cell line by transiently transfecting the lacZ expression control plasmid and then picking a clone that shows the lowest basal level of expression of lacZ in the absence of the inducer, and the highest level of lacZ in the presence of the inducer. This clone can then be expanded and used to transfect the T-REx or GeneSwitch expression construct, as the case may be.

What is the main advantage of the GeneSwitch system over the T-REx system? And what is its main disadvantage?

With the GeneSwitch system, it is possible to have the absolute lowest basal levels of expression of the gene of interest, whereas the T-REx system may be a little leaky due to the inevitable presence of tetracycline in FBS. The induced level of expression in the GeneSwitch system can be even higher than that seen with the CMV promoter. The disadvantage of the GeneSwitch system is that the expression does not appear to switch off very easily in culture, although it has been demonstrated to function beautifully in transgenics. The T-REx system, on the other hand, can be switched on and off by the addition and removal of the inducer.

What is the advantage of the Flp-In T-REx system over the T-REx system?

The Flp-In T-REx system combines the targeted integration offered by the Flp-In system with the powerful inducible expression offered by the T-REx system. It allows generation of isogenic, inducible, stable cell lines and permits polyclonal selection of these cell lines. Once the Flp-In T-REx host cell line containing an integrated FRT site has been created, subsequent generation of Flp-In T-REx cell lines expressing the gene(s) of interest is rapid and efficient.

Can I use doxycycline instead of tetracycline as an inducer in the T-REx system?

Doxycycline may be used as an alternative inducing agent in the T-REx system. It is similar to tetracycline in its mechanism of action, and exhibits similar dose-response and induction characteristics as tetracycline in the T-REx system. Doxycycline has been shown to have a longer half-life than tetracycline (48 hours vs. 24 hours, respectively). We do not offer doxycycline, but it may be obtained from Sigma (Cat. No. D9891).

I am planning to generate a T-REx cell line using pcDNA6/TR. Can I perform a western blot using antibodies to TetR to assess whether the cell line is expressing enough of TetR? Do you offer an antibody to TetR?

We do not offer an anti-TetR antibody. Even though a western using an anti-TetR antibody can be used to screen out clones that do not express any TetR protein, it would not be the optimal way to screen for functional clones. Functional testing by performing a transient transfection with the lacZ expression control plasmid is recommended for this purpose, followed by picking a clone that shows lowest basal levels of expression of beta-galactosidase in the absence of tetracycline, and highest levels of beta-galactosidase expression upon addition of tetracycline.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Expression Support Center.

Citations et références (4)

Citations et références
Abstract
Comparison of seven different heterologous protein expression systems for the production of the serotonin transporter.
Authors:Tate CG, Haase J, Baker C, Boorsma M, Magnani F, Vallis Y, Williams DC,
Journal:Biochim Biophys Acta
PubMed ID:12586388
'The rat serotonin transporter (rSERT) is an N-glycosylated integral membrane protein with 12 transmembrane regions; the N-glycans improve the ability of the SERT polypeptide chain to fold into a functional transporter, but they are not required for the transmembrane transport of serotonin per se. In order to define the best ... More
Effect of some aldoses on growth of Saccharomyces cerevisiae inhibited with molybdenum.
Authors:Zemek J, Bílik V, Zákutná L,
Journal:Folia Microbiol (Praha)
PubMed ID:285
The inhibitory effect of molybdenum ions on growth of yeasts at pH 5.5 was found to be decreased by aldoses in the following order: D-talose greater than L-mannose greater than L-ribose greater than D-lyxose greater than L-galactose greater than L-arabinose greater than L-glucose greater than L-xylose. Increased concentrations of molybdenum ... More
Human TRPC5 channel activated by a multiplicity of signals in a single cell.
Authors:Zeng F, Xu SZ, Jackson PK, McHugh D, Kumar B, Fountain SJ, Beech DJ,
Journal:J Physiol
PubMed ID:15254149
Here we explore the activation mechanisms of human TRPC5, a putative cationic channel that was cloned from a region of the X chromosome associated with mental retardation. No basal activity was evident but activity was induced by carbachol stimulation of muscarinic receptors independently of Ca2+ release. This is 'receptor activation', ... More
The gamma -secretase-cleaved C-terminal fragment of amyloid precursor protein mediates signaling to the nucleus.
Authors: Gao Y; Pimplikar S W;
Journal:Proc Natl Acad Sci U S A
PubMed ID:11742091
Sequential processing of the amyloid precursor protein (APP) by beta- and gamma-secretases generates the Abeta peptide, a major constituent of the senile plaques observed in Alzheimer's disease. The cleavage by gamma-secretase also results in the cytoplasmic release of a 59- or 57-residue-long C-terminal fragment (Cgamma). This processing resembles regulated intramembrane ... More